Artículo de método

Ensayo de coincubación para estudiar interacciones competitivas entre cepas bacterianas

26 de septiembre de 2025

En este artículo

Resumen

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Fuente: Speare, L., et al. Ensayo de coincubación para cuantificar las interacciones competitivas entre aislados de Vibrio fischeri . J. Vis. Exp. (2019)

Este video muestra un ensayo de coincubación utilizado para estudiar cómo compiten las cepas bacterianas en un entorno compartido. Se aplica ampliamente en microbiología para identificar mecanismos, como la muerte dependiente o independiente del contacto, que impulsan estas interacciones.

Protocolo

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Cepas en coincubación (Figura 1B, C)
    1. Mezcle la cepa de referencia y la cepa de la competencia en una proporción de 1:1 (v/v) agregando 100 μL de cada cepa (normalizada a OD 1.0) a un tubo de centrífuga marcado de 1.5 ml. Como control, mezcle la cepa de referencia con una versión etiquetada diferencialmente de sí misma (cepa de referencia pVSV102 + cepa de referencia pVSV208). Este control es necesario para un análisis estadístico posterior para determinar si la presencia de una cepa competidora afecta el crecimiento de la cepa de referencia. Agite el cultivo de cepas mixtas durante 1-2 s.
      NOTA: Este paso puede requerir optimización, ya que la relación inicial puede afectar significativamente los resultados y es posible que deba ajustarse.
    2. Repita el paso 1 para cada réplica biológica. Después de completar este paso, debe haber un total de ocho tubos de cepas mixtas: cuatro réplicas biológicas con cepas de referencia marcadas diferencialmente (control) y cuatro réplicas biológicas con cepas de referencia y competidoras marcadas diferencialmente (experimental).
    3. Detectar 10 μL de cada mezcla experimental y de control en placas de Petri que contengan agar LBS; Estos puntos de cultivo se utilizarán para microscopía de fluorescencia después de la incubación.
    4. Deje que las manchas se sequen completamente en el banco hasta que todo el líquido haya sido absorbido por el agar e incube las placas de Petri a 24 ° C durante 24 h. Se requiere un mínimo de 15 h para que las cepas de V. fischeri marcadas con pVSV102 y pVSV208 crezcan a una densidad celular lo suficientemente alta como para visualizar la proteína fluorescente verde (GFP) y la proteína fluorescente roja (RFP), respectivamente, a nivel de población utilizando un microscopio de disección de fluorescencia. Aquí, utilizamos una incubación de 24 h para obtener imágenes de puntos mixtos.
      NOTA: Es importante utilizar platos que no estén demasiado húmedos ni demasiado secos. Si las placas están demasiado húmedas, las manchas de coincubación no serán absorbidas por la placa de agar; Evite usar platos vertidos el mismo día. Si las placas están demasiado secas, se pueden formar pequeñas ondas o grietas en la superficie del agar, lo que hace que las manchas de coincubación tengan una forma irregular.

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Resultados

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
figure-results-1

Figura 1: Diagrama de flujo que ilustra el ensayo de coincubación. (A) Las cepas bacterianas que albergan pVSV102 (cepa de referencia indicada Ref. Strain o R.S.) o pVSV208 (cepa de la competencia indicada Comp. Strain o C.S.) se cu...

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Tubos de microcentrífuga de 1,5 mlPescador05-408-129 
Pipeta multicanal de 10 μL   
Pipeta multicanal de 100 μL   
Pipeta multicanal de 300 μL   
Pipeta monocanal de 10 μL   
Pipeta monocanal de 20 μL   
Pipeta monocanal de 200 μL   
Pipeta monocanal de 1000 μL   
Placas de 24 pocillosPescador07-200-84estéril con tapa
Placas de PetriPescadorFB0875713estéril con tapa
Sistema de arranque TipOne de 0,1-10 μlUSA Científico1111-350010 bastidores
Sistema de arranque TipOne de 200 μlUSA Científico1111-50010 bastidores
Sistema de arranque TipOne de 1000 μlUSA Científico1111-252010 bastidores
Medios LBS
Tampón Tris de 1 M (pH ~7,5)  50 ml de tampón de 1 M (62 ml de HCl, 938 ml de agua desionizada, 121 g de base de Trizma)
Agar-agarTécnico FisherDF0812-17-915 g (Añadir solo para platos)
Agua desionizada  950 ml
Cloruro de sodioPescadorS640-320 gramos
TriptonaPescadorBP9726510 gramos
Extracto de levaduraPescadorBP9727-25 gramos

Reimpresiones y permisos

Solicitar permiso para reutilizar el texto o las figuras de este artículo de JoVE

Solicitar permiso

Etiquetas

Competencia bacterianamarcadores fluorescentesmuerte dependiente de contactomuerte independiente de contactomicroscop a de fluorescenciaincubaci n en placas de agaridentificaci n de cepas

Artículos relacionados