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Artículo de método

Generación de las células troncales nerviosas de desechados Humanos tejido cortical fetal

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DOI:

10.3791/2681

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25 de mayo de 2011

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En este artículo

Resumen

Un método sencillo y fiable en el aislamiento y cultivo de células madre neurales en humanos descartados tejido cortical fetal se describe. Cultivos derivados de enfermedades neurológicas conocidas humanos pueden ser utilizados para la caracterización de los patológicos procesos celulares y moleculares, así como ofrecer una plataforma para evaluar la eficacia farmacológica.

Resumen

Las células madre neurales (NSC) residen en la zona ventricular neuroepitelio durante el desarrollo de la placa cortical. Estos primeros progenitores en última instancia, dan lugar a los progenitores intermedios y más tarde, los diferentes subtipos de células neuronales y gliales que forman la corteza cerebral. La capacidad de generar y ampliar NSCs humanos (los llamados neuroesferas) a partir de tejido fetal normal descarta proporciona un medio con el cual estudiar directamente los aspectos funcionales de la normalidad del desarrollo humano NSC 1.5. Este enfoque también puede ser dirigido hacia la generación de NSCs de trastornos neurológicos conocidos, ello se traduzca en la oportunidad de identificar los procesos de enfermedad que altera la proliferación de progenitores, la migración y la diferenciación de 6-9. Nos hemos centrado en la identificación de los mecanismos patológicos en humanos NSCs síndrome de Down que pueden contribuir a acelerar el fenotipo de la enfermedad de Alzheimer 10,11. Ni en vivo ni in vitro modelos de ratón se puede replicar el repertorio idéntico de genes localizados en el cromosoma humano 21.

Aquí se utiliza un método sencillo y fiable para aislar el síndrome de Down NSCs de corteza fetal humano abortado y crecer en cultivo. La metodología ofrece aspectos específicos de la recolección de los tejidos, la disección con puntos de referencia anatómicos limitado, separación celular, placas y pases de NSCs humanos. También proporcionamos algunos protocolos básicos para inducir la diferenciación de las NSCs humanos en subtipos de células más selectivo.

Protocolo

1. Preparación de soluciones y materiales para la disección y el mantenimiento de la cultura de células madre neurales

  1. Prepare 100 ml medio de disección (KNOCKOUT DMEM/F12, Invitogen) antes de tiempo y refrigere.
  2. Prepare100 ml medio de cultivo (Stem Pro NSC SFM, Invitrogen) y mantener a 37 ° C en un baño de agua.
  3. Prepare la celda del punto de congelación medio (KNOCKOUT DMEM/F12 10% de SFB + 5% de DMSO) para la crioconservación a largo plazo de las células.
  4. Si lo desea, prepare un 4% de paraformaldehído (PFA) para la fijación del tejido.
  5. Pinzas esterilizadas, autoclave y hojas de bisturí con mango se utiliza para la ....

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Discusión

Existen varios enfoques hacia el cultivo de tejidos frescos y la producción de líneas celulares humanas. Históricamente, el tejido fresco ha sido cosechados y cultivados de inmediato para generar diversos tipos de células en el sistema nervioso central. Esta estrategia, sin embargo está claramente limitado por el número de muestras que se pueden obtener, que en el caso de muestras humanas, suele ser bastante pequeña. Teniendo en cuenta el grado mínimo de la manipulación, las células neuronales cultivadas recién dotar al.......

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Divulgaciones

No hay conflictos de interés declarado.

Agradecimientos

Este trabajo fue apoyado en parte por los Institutos Nacionales de Salud: HD054347 y NS063997-01 de VLS. Este trabajo también fue apoyado en parte por el Fondo Empire State de células madre a través del Estado de Nueva York Departamento de Salud Contrato # C024324 de VLS. Las opiniones expresadas aquí son de exclusiva responsabilidad del autor y no reflejan necesariamente el parecer de la Junta del Empire State de Células Madre, el Estado de Nueva York Departamento de Salud, o el Estado de Nueva York. VLS es un Doris Duke destinatario científico clínico Premio del Desarrollo. También agradecemos el profesor Timothy Vartanian por su don de Anti-O1, O4 Anti-anticuerpos....

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Nombre del reactivo Empresa Número de catálogo Comentarios (opcional)
KNOCKOUT DMEM/F12 Invitrogen 12660-012 Disociación medio
Madre Pro NSC SFM Invitrogen A10509-01 Medio de cultivo
De suero fetal bovino Invitrogen 10091-148 Medio congelados
Hanks solución (-Ca 2 +, Mg 2 +) Invitrogen 14175-095 Disociación medio
DMSO Sigma-Aldrich D2650 Medio congelados
EDTA Sigma-Aldrich 431788 Disociación medio
Paraformaldehído Sigma-Aldrich 158127 La fijación de una solución
bFGF I + D 234-FSE Diferenciación medio
SHH I + D 1845-SH Diferenciación medio
PDGF-AA I + D 221-AA Diferenciación medio
B27 Invitrogen 17504-044 Diferenciación medio
Ratón anti-MAP2 Sigma-Aldrich M2320 1:200
De conejo anti-DCX Señalización celular 4604s 1:200
De conejo anti-GFAP Dako Z0334 1:200
De conejo anti-S100B Dako Z0311 1:200
De conejo anti-O1 dones del profesor Timothy Vartanian * 01:50
De conejo anti-O4 Regalos del profesor Timothy Vartanian * 01:50
40μm de células colador BD Falcon 352340

* Timothy Vartanian, MD, PhD, Departamento de Neurología y Neurociencia de la Weill Cornell Medical College, Nueva York, EE.UU.

Referencias

  1. Gage, F. H., Ray, J., Fisher, L. J. Isolation, characterization, and use of stem cells from the CNS. Annu. Rev. Neurosci. 18, 159-192 (1995).
  2. Vescovi, A. L., Snyder, E. Y. Establishment and properties of neural stem cell clones: plasticity in vitro and ....

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