Todos los procedimientos que involucran participantes humanos se han realizado de acuerdo con las pautas institucionales, nacionales e internacionales para el bienestar humano y han sido revisados por la junta de revisión institucional local
1. Aislamiento y purificación de células B de sangre periférica humana
- Extraiga ~ 10 mL de sangre de la vena cubital mediana (en la fosa cubital anterior al codo) en un tubo de 15 mL que contenga K2EDTA (1.5 a 2.0 mg/mL de sangre) e invierta inmediatamente el tubo varias veces para prevenir la formación de coágulos.
- Añadir 35 mL de tampón de lisis de glóbulos rojos (RBC) esterilizado en autoclave (121 °C, 15 min) (150 mM NH4Cl, 10 mM KHCO3 y 1 mM EDTA; pH 7,4) al tubo que contiene la muestra de sangre fresca (≥ 3:1 vol/vol) e incubar a temperatura ambiente (RT) durante no más de 5 min.
nota: La aparición de la transmisión de luz a través del tubo indica la finalización de la lisis de los glóbulos rojos.
- Centrifugar a 600 x g a RT durante 5 min. Asegúrese de que el pellet sea de color blanco.
- Vuelva a suspender el pellet con 10 mL de solución salina tamponada con fosfato esterilizada en autoclave (PBS, 137 mM de NaCl, 2,7 mM de KCl, 4,3 mM deNa2HPO4 y 1,47 mM de KH2PO4; pH 7,4) y centrifugar como en el paso 1.3.
- Deseche el sobrenadante, vuelva a suspender el pellet con 10 mL de medio RPMI 1640 (suplementos: 10% de suero fetal de ternero, 100 U/mL de penicilina/estreptomicina, 0,25 μg/mL de anfotericina B y 2 mM de L-glutamina) y luego coloque las células en una placa de cultivo de 10 cm (10 mL de sangre por placa). Coloque la placa en una incubadora a 37 °C con 5% de CO2 durante 30 min.
- Agite suavemente la placa de cultivo unas cuantas veces y coloque el medio de cultivo (células de suspensión) en tubos cónicos de plástico de 15 ml. Deseche las células adherentes (principalmente macrófagos) en las placas de cultivo.
- Centrifugar a 600 x g a RT durante 5 min. Deseche el sobrenadante.
- Vuelva a suspender el pellet con 1 mL de medio RPMI 1640. Cuente el número de células con un hemocitómetro o un contador de células automatizado.
nota: La viabilidad de los leucocitos aislados es normalmente superior al 90% por exclusión del azul de tripano.
- Centrifugar como en el paso 1.7 y resuspender las células en ~ 200 μL de tampón PBS frío (0,5% de albúmina sérica bovina (BSA) y 2 mM de EDTA) a la concentración de 5 - 10 x 106 células/mL.
- Añadir 5 μL de cóctel Ab biotinilado anti-humano específico para células sanguíneas (para la selección negativa de células B) por cada 106 células e incubar en hielo durante 30 min.
nota: El cóctel anti-Ab humano debe incluir al menos Abs específicos para CD2 (o CD3), CD14 y CD16.
- Agregue un volumen 10 veces superior de PBS estéril a las células, centrifugue a 600 x g durante 5 minutos y deseche el sobrenadante.
- Agregue cantidades iguales de microperlas conjugadas con estreptavidina (5 μL por 10a 6 células) al pellet y mezcle bien.
- Incubar en hielo durante 30 min en un tubo cónico de plástico de 15 mL.
- Agregue 2 mL de tampón PBS en el tubo.
- Coloque el tubo en un soporte magnético e incube a RT durante 8 min. Las microperlas marrones se adherirán gradualmente a la pared del tubo junto al imán.
- Con el tubo restante en el soporte magnético, transfiera con cuidado el sobrenadante a un nuevo tubo estéril de 15 ml.
- Repita los pasos 1.14 a 1.16 y combine los dos sobrenadantes que contienen las células B intactas. Deseche las microperlas.
- Centrifugar a 600 x g a RT durante 5 min. Deseche el sobrenadante.
- Vuelva a suspender el pellet en el medio RPMI 1640 para experimentos posteriores.
nota: Por lo general, se pueden aislar 1 - 5 x 105 células B con una pureza superior al 95% a partir de 10 mL de sangre periférica.