1. Generación de BMM
- Siembre 1 x 107 células/10 mL en una placa de cultivo de 10 cm y agregue M-CSF 100 ng/mL. La concentración final de M-CSF es de 100 ng/mL de medio de cultivo. Incubar el cultivo a 37 °C, 5% de CO2 durante 3 días.
- Después de 3 días, retire el medio de cultivo, lave las células enérgicamente con 10 mL de solución salina tamponada con fosfato (PBS) dos veces para eliminar las células no adherentes, agregue 5 mL de tripsina-EDTA al 0,02% a temperatura ambiente en PBS e incube a 37 °C, 5% CO2 durante 5 min.
- Separe las células mediante un pipeteo minucioso. Asegúrese de que las células se hayan desprendido observando el cultivo bajo un microscopio (las células deben aparecer redondeadas y flotando en el medio). Si las células permanecen adheridas, repita el pipeteo a fondo para separarlas. Cuando las células se hayan desprendido, agregue 5 mL de α-MEM para inactivar la reacción.
- Recoja las células en un tubo cónico de 50 mL y centrifugue a 300 x g durante 5 min. Deseche el sobrenadante y lave con 5 mL de α-MEM.
- Centrifugar a 300 x g durante 5 min y resuspender el pellet en 10 mL de α-MEM.
- Realice un recuento de células.
- Siembre 1 x 106 células/10 mL en una placa de cultivo de 10 cm y agregue M-CSF 100 ng/mL. La concentración final de M-CSF es de 100 ng/mL de medio de cultivo. Incubar el cultivo a 37 °C, 5% de CO2 durante 3 días.
>2. Generación de Osteoclastos a partir de BMM como Precursores de Osteoclastos
- Después de 3 días, recoja las células adheridas que representan BMM como precursores de osteoclastos, siguiendo los pasos 1.2-1.7.
- Siembre BMM en 5 x 104 celdas/200 μL de α-MEM en una placa de 96 pocillos. Agregue RANKL para una concentración final de 50 ng/mL o TNF-α para una concentración final de 100 ng/mL. Agregue M-CSF para obtener una concentración final de 100 ng/mL a cada pocillo.
- Agregue el anticuerpo anti-c-fms (concentraciones finales de 0, 1, 10, 100, 1000 ng/mL) a cada pocillo.
- Incubar a 37 °C, 5% de CO2 durante 4 días. Cambie los medios cada dos días durante 4 días.
>3. Tinción de fosfatasa ácida resistente al tartrato (TRAP)
- Después de 4 días de incubación, aspire suavemente el medio de cultivo de cada pocillo. Lave cada pocillo una vez con 200 μL de temperatura ambiente 1x PBS.
- Añadir 200 μL de formalina al 10% a cada pocillo para su fijación e incubar durante 1 h a temperatura ambiente. Aspirar el formol y lavar cada pocillo 3 veces con agua desionizada.
- Añadir 200 μL de Triton X-100 al 0,2% en PBS a cada pocillo para la permeabilización e incubar durante 1 h a temperatura ambiente. Aspire el Triton X-100 y lave cada pocillo 3 veces con agua desionizada.
- Agregue 200 μL de solución de tinción TRAP a cada pocillo. Visualiza la mancha bajo el microscopio. La mancha tardará entre 10 y 30 minutos en desarrollarse correctamente.
- Aspire la mancha y lave cada pozo con agua desionizada 3 veces, y seque al aire. Manténgalo a temperatura ambiente para usarlo en observaciones posteriores.