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Artículo de método

Ensayo para determinar la dosis infecciosa del virus Drosophila C en células de insectos cultivadas

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8 de julio de 2025

En este artículo

Resumen

Fuente: Yang, S. et al., Establecimiento de la infección viral y análisis de la interacción huésped-virus en Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (2019)

En este video, demostramos el ensayo de efecto citopático para determinar la dosis viral infecciosa de cultivo de tejidos del virus Drosophila C en células Drosophila S2*. Se utiliza una variedad de concentraciones virales para infectar las células cultivadas. Se determina la proporción de células que presentan cambios estructurales y estos datos se utilizan para calcular la dosis infectiva del cultivo de tejidos.

Protocolo

1. Medición de la carga del virus de Drosophila C mediante ensayo CPE

  1. Elija 5 tubos aleatorios que contengan virus para determinar la dosis infectiva promedio de cultivo de tejido viral (TCID50) mediante un ensayo de efecto citopático (CPE) (1 unidad de TCID50 = 0,7 unidad formadora de placa [PFU]).
    nota: La CPE se refiere a los cambios estructurales en las células huésped causados por la invasión viral. El virus infeccioso causa lisis de la célula huésped o cuando la célula muere sin lisis debido a la incapacidad de reproducirse.
  2. El día 1, recoja las células S2* preparadas mediante pipeteo. Cuente el número de celda. Centrifugar las celdas durante 300 x g durante 4 min y desechar el sobrenadante. Diluya las células hasta la densidad de 1 x 106 células/ml con un medio completo para células S2*.
  3. Siembre 1 x 105 celdas S2* (100 μL) por pocillo hasta la placa de fondo plano de 96 pocillos (~30% de confluencia).
  4. Realice diluciones en serie de 10 veces el stock de DCV con medio completo para células S2*. Agregue diluciones de 50 μL en el pocillo. Añadir 50 μL de medio de cultivo sin virus al pocillo clasificado como pocillo testigo negativo.
    nota: Para cada tasa de dilución se utilizaron 8 pocillos. Como el rendimiento típico de DCV es de alrededor de 108-10 9 PFU/mL, la dilución debería cubrir al menos ~10-5-10-10.
  5. El día 4, observe la EPC con un microscopio de campo claro con un objetivo de 20X o 40X. Clasifique un pocillo en el que las células se ven borrosas y el medio está lleno de fragmentos como un "pozo positivo", y un pocillo en el que la morfología celular es normal como un "pozo negativo".
  6. Marque los pozos positivos o negativos de CPE con + o –, respectivamente. Calcular el virus TCID50 por el método de Reed y Muench.

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Divulgaciones

No se han declarado conflictos de interés.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Tubos de microcentrífuga de 1,5 mlmarca352070
Plato de cultivo celular de 10 cmsigmaCLS430167cultivo celular
Incubadora de célulasSanyoMIR-553
centrífugaEppendorf5810R
centrífugaEppendorf5424R
Incubadora Drosophila PercivalI-41NLCrianza de Drosophila
FBSInvitrogen12657-029cultivo celular
Medio para insectos de SchneidersigmaS9895cultivo celular
Software estadísticoPrisma GraphPad 7
Placa de 96 pocillos de fondo planosigmaCLS3922cultivo celular
Incubadora de célulasSanyoMIR-553
microscopioOlimpoCKX41

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