>1. Injerto de grupos funcionales de amina en discos de papel de celulosa
- Prepare una hoja de papel cuadrado con una dimensión de 1 cm × 1 cm, y 100 discos de papel hechos de papel de celulosa de grado No. 1 con un diámetro de 6,0 mm (papel de filtro de flujo medio) con una perforadora.
- Para obtener los grupos -NH2 en los discos de papel, mezcle 1 ml de 3-aminopropiltrimetoxisilano (APS) y 10 ml de acetona en un frasco de vidrio de 50 ml en la campana extractora. Añada discos de papel a la mezcla de reactivos APS recién preparada e incube durante 5 horas con agitación orbital (200 rpm) a temperatura ambiente.
cautela: Manipule APS y acetona en la campana extractora.
- Decantar el exceso de solución de la botella de vidrio de 50 ml en un contenedor de residuos orgánicos.
- Agregue 10 ml de acetona a la botella de vidrio, mezcle bien y decante completamente para eliminar cualquier APS no reaccionado y otras impurezas. Repita este paso dos veces.
- Extienda los discos de papel sobre la toalla de papel y colóquelos en un horno a 110 °C durante 3 horas. Deje que los discos de papel se enfríen. Guarde los discos en un tubo de centrífuga de 50 ml a temperatura ambiente.
- Utilice la espectroscopia infrarroja por transformada de Fourier (FTIR) para comprobar el injerto de grupos amina en el papel cuadrado de celulosa, como se describe a continuación (Figura 1A).
- Encienda la computadora y abra el instrumento de espectroscopia FTIR.
- Abra el software para la espectroscopia FTIR.
- Vaya a 'Medición → inicializar'. Los rectángulos de 'BS: KBr', 'Lamp: Infrared' y 'Laser' se volverán verdes cuando finalice la inicialización.
- Elija 'Datos' debajo de los rectángulos y seleccione '%Transmitancia', 'Happ-Genzel', '45', '4.0' y 'Mín.: 400, Máx.: 4000' para 'Modo de medición', 'Apodización', 'N.º de escaneos', 'Resolución' y 'Rango (cm-1)'.
- Haga clic en 'Medir'.
- Seleccione 'Archivo de datos' para los datos en segundo plano. Escribe los comentarios.
- Haga clic en 'BKG' para obtener la línea de base para el fondo.
- Fije el papel cuadrado en el portamuestras de película.
- Seleccione 'Archivo de datos' para los datos de muestra. Escribe los comentarios.
- Haga clic en 'Muestra' para obtener los espectros de la muestra.
- Cierre la aplicación de espectroscopia FTIR y apague el equipo.
- Repita los pasos anteriores (pasos 1.1 a 1.6) para preparar papel y discos cuadrados de celulosa de grado n.º 113 funcionalizados con aminas (papel de filtro de flujo rápido) y obtenga los espectros FTIR para el papel cuadrado de grado n.º 113 (Figura 1B).
>2. Ensayo de inmunoabsorción enzimática (ELISA) basado en papel para la detección de inmunoglobulina G (IgG)
- Añadir 5 ml de solución de glutaraldehído al 0,05% (preparada en tampón PBS de 50 mM, pH 7,4) a un frasco de vidrio de 20 ml. Sumerja 15 discos de papel de filtro de flujo medio funcionalizados con aminas en esta solución y manténgalos durante 1 hora agitándolos a temperatura ambiente.
- Al mismo tiempo, repita el paso 2.1 para preparar otros 15 discos de papel de filtro de flujo rápido funcionalizados con aldehído.
cautela: Manipule el glutaraldehído en la campana extractora.
- Para eliminar el glutaraldehído no reaccionado de los discos de papel, coloque los 15 discos de papel de filtro de flujo medio en un tubo de centrífuga de 15 ml y los 15 discos de papel de filtro de flujo rápido en otro tubo de centrífuga de 15 ml. Agregue 5 ml de agua desionizada a cada tubo y agite los tubos durante 10 segundos. Retire el agua aspirando con una pipeta. Repita dos veces para eliminar el glutaraldehído que no haya reaccionado.
- Seque los discos de papel en un horno a 37 °C.
- Añadir 5 μl y 8 μl de fragmentos de anticuerpos IgG-Fc de ratón de 0,025 mg/ml a cada uno de los discos de papel de filtro de flujo medio y de flujo rápido, respectivamente, e incubar durante 20 min.
- Añadir 10 μl de 50 mM de PBS (pH 7,4) a cada disco de papel sin eliminar los anticuerpos e incubar durante 40 min para la reacción de aldehído de amina.
- Lave los discos de papel con 0,2 ml de tampón de lavado encima de una toalla de papel. Repite el lavado tres veces.
- Seque los discos de papel en un horno a 37 °C.
- Bloquee los discos de papel con 15 μl de tampón de bloqueo durante 10 minutos a temperatura ambiente.
- Lave cada disco de papel con 0,2 ml de tampón de lavado encima de una toalla de papel. Repite el lavado tres veces.
- Ejecutar estándares de IgG.
- Cargue 10 μl de varias concentraciones de IgG (por ejemplo, 0, 10, 125, 250 y 500 ng/ml en PBS) en cada disco por triplicado. Incubar durante 1 hora a temperatura ambiente.
- Lave los discos de papel con 0,2 ml de tampón de lavado encima de una toalla de papel. Repite el lavado tres veces.
- Cargue 10 μl de anticuerpos IgG-Fc de ratón conjugados con HRP (1:10.000, 10 mM PBS, pH 7,4) e incube durante 1 hora a temperatura ambiente.
- Lave los discos de papel con 0,2 ml de tampón de lavado encima de una toalla de papel. Repita el lavado tres veces.
nota: No es necesario quitar el tampón de lavado, ya que los resultados no se ven afectados por la presencia de tampón.
- Cargue una mezcla de 10 μl de TMB y peróxido de hidrógeno en cada disco.
- Tome imágenes de todos los discos de papel con una cámara digital o un teléfono inteligente después de 5 minutos de incubación><.
nota: En la figura 2A, '0' representa los discos de papel tratados con inmovilización de anticuerpos de captura y la solución de anticuerpos-HRP/TMB sin suero de IgG.
- Analice la intensidad de cada disco de papel en la imagen de la Imagen J.
- Convierta las imágenes tomadas en el paso 3.15 al formato '.tif'.
- Abra el software 'Image J'.
- Vaya a 'Archivo → abrir', elija la imagen a analizar.
- Elija el botón de forma 'Óvalo'.
- Vaya a 'Tipo de imagen → → 32 bits'.
- Ve a 'Editar → invertir'.
- Ve a 'Analizar → medir'.
- Copie y analice los datos en una hoja de cálculo.