1. Consideraciones de seguridad
- El personal debe usar equipo de protección personal (EPP).
- Manipule el patógeno y los macrófagos en una cabina de seguridad biológica de clase II.
>2. Preparación de macrófagos
- Cultive una línea celular de macrófagos murinos, RAW 264.7, en un matraz de tejido que contenga 10 mL de medio Roswell Park Memorial Institute-1640 (RPMI-1640), suplementado con 20 mg/mL de estreptomicina, 2 mM de L-glutamina, 20 U/mL de penicilina y 10% de suero fetal bovino (FBS).
- Coloque el matraz en una incubadora de dióxido de carbono (CO2) al 5% a 37 °C hasta lograr una confluencia del 80 %.
- Raspe suavemente las células con un raspador de células.
- Transfiera las celdas suspendidas a un tubo de centrífuga de 15 mL.
- Utilice la tinción de azul de tripano para determinar la viabilidad celular.
nota: Es preferible una puntuación de viabilidad superior al 85%.
Utilice un hemocitómetro para ajustar la concentración celular de macrófagos a 1 × 105 células/mL utilizando una solución de 10 mL de medio RPMI-1640 fresco y estéril. Dispense 100 μL de suspensión de células en pocillos de una placa de microtitulación estéril de fondo plano de 96 pocillos. Incubar la placa durante la noche en una incubadora de CO2 al 5% a 37 °C.
nota: Los medios pasados durante la noche deben aspirarse y reemplazarse con 100 μL de medios RPMI-1640 frescos y estériles antes de su uso.
>3. Preparación de células criptocócicas
- Extienda el organismo de prueba con un asa de inoculación en una placa de agar estéril de levadura-extracto de malta (YM).
- Incubar la placa de agar a 30°C durante 48 h.
- Usando un asa de inoculación, inocule un asa de células en 100 mL de caldo de levadura nitrogenado base (YNB) suplementado con glucosa al 4%.
- Cultive las células (precultivo) durante la noche mientras se agitan a 160 rpm a 30 °C.
- Al día siguiente, inocular 0,1 mL del precultivo en caldo fresco de YNB (cultivo principal) y dejar que las células crezcan hasta la fase exponencial media (en las mismas condiciones de cultivo).
- Lave las células dos veces con una solución tampón de fosfato (PBS).
- Usando un hemocitómetro, estandarice las células a 1 x 105 en PBS.
>4. Tinción de células criptocócicas con la tinción de fagocitosis
- Dispense 999 μL de las células en un tubo de plástico de 1,5 mL.
- Añada 1 μL de la tinción de zimosan A verde pHrodo en el mismo tubo.
- Incubar las células a temperatura ambiente durante 1 h, en la oscuridad, con agitación lenta para reaccionar con la mancha.
- Al final del período de incubación, lave las células tres veces con PBS.
- Dispense una suspensión celular de 100 μL a los pocillos que contengan macrófagos sembrados.
5. Preparación de medicamentos
- Prepare una solución madre de aspirina utilizando 1 mg de aspirina en 1000 mL de etanol absoluto hasta una concentración final de 1000 μg/mL.
- Diluya aún más el compuesto en el medio RPMI-1640 para alcanzar las concentraciones deseadas del fármaco.
nota: La cantidad final de etanol en el medio RPMI-1640 nunca debe exceder el 1%. Prepare una solución madre de ibuprofeno utilizando 1 mg de ibuprofeno en 1000 mL de dimetilsulfóxido (DMSO). Diluya aún más el compuesto en el medio RPMI-1640 para alcanzar las concentraciones deseadas del fármaco.
nota: La cantidad final de DMSO en los medios RPMI-1640 nunca debe exceder el 1%. Prepare una solución de 100 μl de los fármacos preparados al cuádruple de las concentraciones deseadas y dispense en pocillos apropiados que contengan macrófagos sembrados y células criptocócicas.
>6. El efecto de los agentes quimiosensibilizantes sobre la fagocitosis de los macrófagos
- Incubar las placas con células cocultivadas en presencia de agentes quimiosensibilizantes, aspirina o ibuprofeno en una incubadora de CO2 al 5% a 37 °C durante 2 h o 6 h.
- Al final del período de incubación, mida la fluorescencia inducida (ej: 492 nm y em: 538 nm).
nota: La tinción de pHrodo solo emite fluorescencia en ambientes ácidos, como dentro del fagosoma.