Adaptado de un estudio previo.
1. La conjugación de Anexina V a SPIO
- Oxidar partículas Spio (Mar Nanotech Inc., 5 mg / ml) durante 1 hora a 20 ° C en la oscuridad en solución con 0,15 M de peryodato de sodio (NaIO 4) (04:01 peso: peso) 2.
- Incubar el SPIO oxidado durante 12 horas con la proteína purificada ANX (relación 1:1, el peso: peso) en 0,15 M de borato de sodio (Na 2 B 4 O 7 10H 2 O) a 20 ° C.
- Reducir la mezcla durante 1 hora más con borohidruro sódico (NaBH 4) bajo la campana de humos y después se apaga con 0,15 M de Tris-HCl.
- Separar la ANX libre de ANX-SPIO por centrifugación a 14.000 xg (75 micras de poro Microcon filtro, Millipore, Billerica, MA).
- Además refinar el compuesto mediante la eliminación de impurezas no unidas mediante un dispositivo separador magnético (Mar Nanotech, Inc.).
- Cuantificar el filtro retenido (ANX-SPIO) los niveles de proteínapor ensayo de proteínas Bradford y almacenar a -80 ° C a 2 mg / ml en 0,1 M Tris-HCl con 1% de suero de albúmina inhibidores de la proteasa y (inhibidor de la proteasa Alto, Thermo Scientific, 1-50 mg / ANX mg).
2. Dispersión de luz dinámica
- Separadamente diluir la SPIO y ANX SPIO-en PBS a una densidad óptica de 0,1 y analizar por dispersión dinámica de luz en una máquina Zetasizer nano DLS (Malvern Inc., Worcestershire, Reino Unido) 3.
- Obtener picos monomodales (idealmente) para el compuesto, con un tamaño de partícula promedio Z y el índice de polidispersidad (PDI). Comparar este tamaño al tamaño DLS-medida de la nanopartícula de óxido de hierro solo. ANX-DLS Spio resultados mostraron un diámetro de partícula hidrodinámico conjugado de 78 nm con un PDI de 0,13 1, lo que refleja un homogéneos Spio ANX especies 3.
3. Cultivo celular, la inducción de la apoptosis en cultivos, y la resonancia magnética de las células cultivadas
- Cultura ratón adulto de médula ósea mesenquimales scélulas TEM (MMSCs) en DMEM suplementado con FBS al 10% y 1% de penicilina-estreptomicina (Invitrogen, Inc.), preferiblemente en pasaje 4 20-30.
- Inducir la apoptosis en las células de cultivo mediante el tratamiento de diferentes tiempos a 37 ° C con DOX (Sigma, 1 mM en solución salina al 0,9%, 1 mM de concentración en los medios de comunicación) 12.
- Cuantificar la cantidad de apoptosis en cultivos utilizando resonancia magnética con ANX-SPIO (descrito en el punto 3.4 más adelante) o utilizando un microscopio después de la tinción de TUNEL (APO-BrdUTM Kit de ensayo de TUNEL, Molecular Probes / Invitrogen, Eugene, OR) o después de la tinción con ANX-FITC (Roche, Suiza).
- Etiquete las células con ANX-SPIO (10 mg de proteína / ml de medio excepto como se indica), o con un peso equivalente de libre SPIO (5 mg), durante 15 min a 37 ° C. Lavar 4 veces con PBS, y de superposición con 1 ml de agarosa al 1% para evitar la difusión de las nanopartículas Spio. Realizar resonancia magnética de los platos (descrito más adelante). Alternativamente, se lavan las células y después trypsinize DOX y etiquetado ANX-SPIO, a continuación, permitir que las célulasformar gránulos en tubos Eppendorf.
4. In vitro RM
- Use un 1,5 o 3 Tesla GE Signa Excite escáner con la batería estándar de rodilla para el receptor in vitro análisis de resonancia magnética.
- Coloque las placas de cultivo o tubos en un fantasma de agar, y la imagen utilizando una secuencia de eco de gradiente gradiente de mal estado: tiempo de repetición (TR) 550 ms, tiempo de eco (TE) de 10 ms, ángulo de inclinación de 15 °, matriz de 256 x 256, sobre el terreno de vista de 3 cm x 3 cm, grosor de corte de 1,3 mm, el número de promedios (NEX) 2, el espaciado de 0 5 mm. Imagen axialmente a través de la capa de células sobre la placa para la pérdida de señal * T2, utilizando regiones de interés (ROIs) de un área fija (por ejemplo, 0,8 mm 2). Ajustar para obtener el fondo usando la señal de control de retorno de la inversión el fantasma de agar. Medir el ruido de fondo de la señal del aire que rodea al fantasma.
- Calcular la resonancia magnética con contraste-ruido (CNR: [SI-SI retorno de la inversión de la muestra de control de retorno de la inversión] / [SD de SI de ruido de fondo], en la SI es la intensidad de la señal, ySD es la desviación estándar) fue calculada para cada placa de cultivo.
5. Los resultados representativos
Medición de la pérdida de la señal T2 * in vitro requiere un fantasma de agar homogénea y la falta de burbujas de aire, lo que creará artefactos de señal sin efecto. Este artefacto es difícil de distinguir de la verdadera pérdida de la señal T2 * de SPIO, y es fundamental para los resultados interpretables. Por favor, vea la Figura 1 para un ejemplo de un artefacto de aire, así como óxido de hierro auténtica T2 * la pérdida de señal.
Para la formación de imágenes in vitro placa de cultivo, aplicar un volumen apropiado de gel de agar para cada placa de cultivo, de modo que suficientes cortes axiales de resonancia magnética, que son aproximadamente 1 mm de espesor, se pueden hacer de manera adecuada la imagen de la placa entera. Figura 2 ilustra la señal de resonancia magnética esperado a partir de placas de cultivo individuales en agar. Normalmente hay alguna variación de la señal en los bordes de la placa, de modo análisis de las regiones de interest deben evitar estas zonas irregulares.

Figura 1. ANX-SPIO detecta la apoptosis en cultivos de cardiomiocitos de ratas neonatales. Figura 1A muestra una foto de granulados cardiomiocitos neonatales tratados con solución de control (tubo izquierdo), ANX-SPIO (tubo de media), y DOX + ANX-SPIO (tubo de la derecha) . Tenga en cuenta el color marrón de la DOX + ANX-Spio las células tratadas, lo que refleja una mayor retención del compuesto ANX-SPIO en las células apoptóticas. Figura 1B in vitro de imágenes de resonancia magnética muestran la intensa pérdida de la señal T2 * de los DOX + ANX-Spio células. Además, una burbuja de aire se ve entre la 4 ª y 5 ª tubos Eppendorf (vacío pequeña señal de negro), que es similar a la señal de vacío ANX-SPIO, y que puede afectar el análisis de CNR.

Figura 2. ANX-SPIOunión es específica para las células apoptóticas en la cultura. Figura 2A muestra de apoptosis cardiomiocitos de rata neonatal en placas de cultivo, sometidos a cualquiera de ANX-Fluos manchas o ANX-SPIO tinción, con concentraciones bajas y altas (izquierda y derecha, respectivamente) de Ans-SPIO. Tenga en cuenta los diferentes T2 * la pérdida de señal (señal de negro) de las células apoptóticas que fueron tratados con fluorescentes ANX (ANX-Fluos) y niveles bajos en comparación con los altos niveles de ANX-SPIO. El aumento de la pérdida de T2 * señal a la derecha está asociada con una marcada reducción ANX-Fluos señal, que se ha competido por fuera superior Spio ASX-concentraciones. Figura 2B ilustra la unión competitiva de ANX-SPIO versus señal ANX-Fluos y la disociación del constante, K i. El eje X indica la concentración de proteína Anexina en escala logarítmica.
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