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En este estudio, describimos un protocolo eficaz para su uso en un microarray de anticuerpos multiplexado de alto rendimiento con detección de proteínas de unión a glicanos que permite el perfil de glicosilación de proteínas específicas. La glicosilación de las proteínas es la modificación postraduccional más prevalente que se encuentra en las proteínas y conduce a diversas modificaciones de las propiedades físicas, químicas y biológicas de las proteínas. Debido a que la maquinaria de glicosilación es particularmente susceptible a la progresión de la enfermedad y a la transformación maligna, la glicosilación aberrante ha sido reconocida como biomarcadores de detección temprana para el cáncer y otras enfermedades. Sin embargo, los métodos actuales para estudiar la glicosilación de proteínas suelen ser demasiado complicados o costosos para su uso en la mayoría de los entornos clínicos o de laboratorio normales, y se necesita un método más práctico para estudiar la glicosilación de proteínas. El nuevo protocolo descrito en este estudio hace uso de un microarray de anticuerpos bloqueados químicamente con detección de proteínas de unión a glicanos (GBP) y reduce significativamente el tiempo, el costo y los requisitos de equipo de laboratorio necesarios para estudiar la glicosilación de proteínas. En este método, se imprimen múltiples anticuerpos específicos de glicoproteína inmovilizados directamente en los portaobjetos del microarray y se bloquean los N-glicanos de los anticuerpos. Los anticuerpos específicos de glicoproteína bloqueados e inmovilizados son capaces de capturar y aislar glicoproteínas de una muestra compleja que se aplica directamente sobre los portaobjetos de microarrays. La detección de glicanos se puede realizar mediante la aplicación de lectinas biotiniladas y otras GBP al portaobjetos de microarray, mientras que los niveles de unión se pueden determinar utilizando Dylight 549-Streptavidin. Mediante el uso de un panel de anticuerpos y el sondaje con múltiples lectinas biotiniladas, este método permite desarrollar un perfil de glicosilación eficaz de las diferentes proteínas que se encuentran en una determinada muestra humana o animal.
Introducción
La glicosilación de una proteína, que es la modificación postraduccional más ubicua en las proteínas, modifica las propiedades físicas, químicas y biológicas de una proteína, y desempeña un papel fundamental en varios procesos biológicos1-6. Debido a que la maquinaria de glicosilación es particularmente susceptible a la progresión de la enfermedad y a la transformación maligna, la glicosilación aberrante ha sido reconocida como biomarcadores de detección temprana para el cáncer y otras enfermedades 7-12. De hecho, la mayoría de los biomarcadores actuales del cáncer, como la fracción L3 de la fetoproteína α-1 (AFP) para el carcinoma hepatocelular 13-15 y el CA199 para el cáncer de páncreas 16, 17, son todos fracciones de glicanos aberrantes en las glicoproteínas. Sin embargo, los métodos para estudiar la glicosilación de proteínas han sido complicados y no son adecuados para entornos clínicos y de laboratorio de rutina. Chen et al. han inventado recientemente un microarray de anticuerpos químicamente bloqueados con un método de detección de proteínas de unión a glicanos (GBP) para la glicosilación de alto rendimiento y perfil multiplexado de glicoproteínas nativas en una muestra compleja 18. En este método de microarrays basado en la afinidad, múltiples anticuerpos específicos de glicoproteínas inmovilizados capturan y aíslan glicoproteínas de la mezcla compleja directamente en el portaobjetos de microarrays, y los glicanos de cada proteína capturada individual se miden en GBP. Debido a que todos los anticuerpos normales contienen N-glicanos que podrían ser reconocidos por la mayoría de los GBP, el paso crítico de este método es bloquear químicamente los glicanos de los anticuerpos para que no se unan a GBP. En el procedimiento, los grupos ci s-diol de los glicanos de los anticuerpos se oxidaron primero a grupos aldehído mediante el uso de NaIO4 en tampón de acetato de sodio evitando la luz. A continuación, los grupos aldehído se conjugaron con el grupo hidrazida de un reticulante, el ácido 4-(4-N-Maleimidofenil)butírico hidrazida HCl (MPBH), seguido de la conjugación de un dipéptido, Cys-Gly, con el grupo maleimida del MPBH. Por lo tanto, los grupos cis-diol en los glicanos de los anticuerpos se convirtieron en grupos no hidroxilo voluminosos, lo que dificultó la unión de las lectinas y otras GBP a los anticuerpos de captura. Este procedimiento de bloqueo hace que las GBP y las lectinas se unan solo a los glicanos de las proteínas capturadas. Después de este bloqueo químico, las muestras de suero se incubaron con el microarray de anticuerpos, seguido de la detección de glicanos mediante el uso de diferentes lectinas biotiniladas y GBPs, y se visualizaron con Cy3-estreptavidina. El uso paralelo de un panel de anticuerpos y el sondaje de múltiples lectinas proporciona perfiles de glicosilación discretos de múltiples proteínas en una muestra dada 18-20. Este método se ha utilizado con éxito en múltiples laboratorios diferentes 1, 7, 13, 19-31. Sin embargo, la estabilidad de MPBH y Cys-Gly, procedimiento complicado y prolongado en este método, afecta la reproducibilidad, efectividad y eficiencia del método. En este nuevo protocolo, reemplazamos tanto MPBH como Cys-Gly con un reactivo hidrazida de ácido glutámico mucho más estable (Glu-hydrazide), lo que mejoró significativamente la reproducibilidad del método, simplificó y acortó todo el procedimiento para que pueda completarse en un día hábil. En este nuevo protocolo, describimos el procedimiento detallado del protocolo que puede ser fácilmente adoptado por los laboratorios normales para el estudio rutinario de la glicosilación de proteínas y las técnicas que son necesarias para obtener resultados reproducibles y repetibles.