1. Anticuerpo Etiquetado (Figura 1)
- Hacer NaHCO3 0,1 M buffer:
- 8,4 g de NaHCO 3
- 29,2 g de NaCl
- 1 litro de H2O
- Llevar el tampón hasta un pH de 8,4 con esta solución (10,6 g de Na 2 CO 3, 29,2 g de NaCl, 1 litro H 2 0).
- Añadir 35 Atto550 NHS mu l a 70 l anti-hnRNPA1 y 500 l NaHCO 3 tampón y girar durante 1 hora a temperatura ambiente. Después de la rotación de una hora de duración, inyectar la mezcla en un dializador y dializar 2 litros de PBS durante la noche.
- El día siguiente, se concentran los dializados Atto550 NHS anti-hnRNPA1 utilizando una columna de centrifugación (Amicon Ultra 0,5).
- Después de que los Atto550 NHS marcado anti-hnRNPA1 anticuerpo se ha concentrado, nano-gota de muestra para determinar la concentración.
2. Anticuerpo transfección (Figura 2)
- Seed 10 5 células / pocillo en 500 l de Dulbecco Medio de Eagle Modificado (DMEM/F12 +10% FBS 1% de antibiótico) en una corredera 8 y 24 horas antes de la transfección. Confluencia celular debe ser de al menos 70%.
- Veinticuatro horas después de la siembra, añadir 2 l de Ab-DeliverIN reactivo en un tubo Eppendorf.
- A continuación, añadir 2 g de Atto550 NHS etiquetados anti-hnRNPA1 de anticuerpos (0,5 mg / l) para el mismo tubo de Eppendorf y se incuban 10-15 min a TA.
- Durante la incubación, aspirar los medios y añadir 394 l de medio DMEM fresco a las células.
Nota: Añadir 500 l DMEM a una cámara de células intactas para actuar como un control.
- Después de la incubación, añadir 100 ml de DMEM a la mezcla de anticuerpo, mezclar pipeteando arriba y abajo, y añadir a las células en DMEM para un volumen total de 500 l.
- Cambie los medios de comunicación después de 48 horas de la entrega de anticuerpos.
Nota: El Protocolo se repitió con FITC Rigg como control positivo.
3. Imágenes en directo y fijo para determinar la eficiencia
- Células de imagen en vivo a las 48 horas con la Cy3 filtro en un microscopio de fluorescencia a la imagen de las transfectadas Atto550 NHS anticuerpos marcados.
- Después de obtención de imágenes en vivo se ha completado, la aspiración de los medios y las células fijas.
- Después de los medios de aspiración, el tratamiento de células con 0,4% de paraformaldehído durante 15 min a temperatura ambiente. Lavar las células 4 x 5 min cada uno con PBS. A continuación, montar las células con medio de montaje que contiene el reactivo y el cubreobjetos solución DAPI. Medir la eficiencia de transfección de las células fijadas con Axiovision software. Si Axiovision software no está a la mano, simplemente contar los acontecimientos de su imagen por los resultados de la mano y se conectan a calcular en 3,7. Alternativamente, el software ImageJ puede ser utilizado para estos cálculos.
- En primer lugar, utilice la "Eventos" de medición para contar el número total de células en su imagen de elección de 20 aumentos.
- A continuación, utilice el "Eventos" de medición para contar las células que no erantransfectadas con éxito con los anticuerpos de la imagen misma magnificación de 20x.
- Para acceder a las medidas "Eventos" en un formato de estilo de Excel, haga clic en "Propiedades", haga clic en la "medición" ficha y haga clic para ver "Como muestra la tabla."
- Por último, utilice el siguiente cálculo para determinar la eficacia de transfección mediante la comparación de los dos eventos previamente medidos: ((células totales - las células no transfectadas) / células totales) x 100 = eficiencia de transfección.
4. Los resultados representativos
Las imágenes en vivo de no transfectadas (Figura 3A) en comparación con transfectadas (Figura 3B), las neuronas revelan que el etiquetado de los anticuerpos (rojo o verde en cada figura) se observa claramente dentro de las células (Figura 3B, C, D). Después de la aspiración y el lavado con medios para eliminar los anticuerpos entre o adherentes a la superficie de las células, anticuerpos marcados todavía están presentes dentro de las neuronas (Figura 3C, D). Para calcular la eficiencia de la transfección, el uso del software Axiovision para calcular el total de células en comparación con células que no fueron transfectadas con éxito. Estos valores se introdujeron en una fórmula de la eficiencia de transfección para adquirir la eficiencia de transfección como un porcentaje del total de células (Figura 4).

Figura 1. Diagrama de flujo de los procedimientos utilizados para marcar anticuerpos con la Atto 550 NHS ester seguido los pasos necesarios para concentrar los anticuerpos marcados. Haga clic aquí para ampliar la cifra .

Figura 2. Diagrama de flujo de los procedimientos utilizados para transfectar anticuerpos marcados en células vivas en cultivo.arge.jpg "target =" _blank "> Haga clic aquí para ampliar la figura.

Figura 3. Las imágenes en directo de las neuronas transfectadas 48 h de transfección siguiente.

Figura 4. Fija y se enjuagó con imágenes de eventos de contarse para determinar la eficiencia de transfección.