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Artículo de método

La transfección de anticuerpos en neuronas como una herramienta para estudiar la patogénesis de enfermedades

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DOI:

10.3791/4154

26 de septiembre de 2012

En este artículo

Resumen

Un enfoque rápido para investigar las interacciones y efectos en los mecanismos moleculares relacionados con la presencia de anticuerpos en un entorno intracelular se describe. El método implica la transfección de anticuerpos en células vivas utilizando una formación de complejo no covalente basada en una formulación de lípidos. La técnica es adaptable a las líneas celulares inmortalizadas y en células primarias.

Resumen

Los anticuerpos ofrecen la posibilidad de conocer mejor novela en varios eventos que tienen lugar en los sistemas vivos. La capacidad de producir anticuerpos altamente específicos para las proteínas diana ha permitido preguntas biológicas muy precisas que deben abordarse. Es importante destacar que los anticuerpos han sido implicados en la patogénesis de un número de enfermedades humanas, incluyendo el lupus eritematoso sistémico (LES), artritis reumatoide (AR), los síndromes paraneoplásicos, esclerosis múltiple (MS) y T-linfotrópico humano tipo virus 1 (HTLV-1) asociado mielopatía / paraparesia espástica tropical (HAM / TSP) 1-9. Cómo anticuerpos causar enfermedad es un área de investigación en curso, y los datos sugiere que las interacciones entre los anticuerpos y los diversos resultados de moléculas intracelulares en la inflamación, alterado celular de mensajería, y la apoptosis 10. Se ha demostrado que los pacientes con MS y HAM / TSP producir anticuerpos contra la proteína de unión intracelular de ARN heterogéneo proteína A ribonucleares1 (hnRNP A1) 3, 5-7, 9, 11. Datos recientes indican que los anticuerpos para tanto intra-neuronal y antígenos de superficie son patógenas 3, 5-9, 11. Por lo tanto, un procedimiento que permite el estudio de anticuerpo intracelular: interacciones proteína daría una gran comprensión de la patogénesis de enfermedades.

Los genes están comúnmente transfectaron en células primarias y líneas celulares en cultivo, sin embargo transfección de anticuerpos en las células se ha visto obstaculizado por la alteración de la estructura del anticuerpo o la eficiencia de transfección pobre 12. Otros métodos de transfección incluyen la transfección de anticuerpo basada en liposomas catiónicos (que consiste de DOTAP / DOPE) y polietileniminas (PEI), ambos de los cuales resultó en una disminución de diez veces en la transfección de anticuerpos en comparación con los controles 12. El método realizado en nuestro estudio es similar al mediada por lípidos catiónicos métodos y utiliza un mecanismo basado en lípidos para formar complejos no covalentes con los anticuerpos a través de electrostática y hydrinteracciones ophobic 13. Hemos utilizado Ab-DeliverIN reactivo, que es una formulación lipídica capaz de capturar anticuerpos a través de interacciones no covalentes electrostáticas e hidrófobas y su entrega dentro de las células. Así química y genética acoplamientos no son necesarios para la entrega de anticuerpos funcionales en las células vivas. Este método nos ha permitido realizar anticuerpo diversos experimentos de rastreo y localización de las proteínas, así como los análisis de las consecuencias moleculares de anticuerpo intracelular interacciones proteína: 9.

En este protocolo, vamos a mostrar cómo transfectar anticuerpos en neuronas rápido, reproducible y con un alto grado de eficiencia de transfección. Como ejemplo, vamos a usar anti-anticuerpos hnRNP A1 y anti-IgG. Para la cuantificación fácil de eficiencia de transfección se utilizó anti-anticuerpos hnRNP A1 marcados con Atto-550-NHS y marcado con FITC IgG. Atto550 NHS es una nueva etiqueta con alta absorción molecular y yi cuánticaeld. Fuente de excitación y filtros fluorescentes para Atto550 son similares a Cy3 (Ex. 556 Em. 578). Además, Atto550 tiene alta fotoestabilidad. Marcado con FITC IgG se utilizaron como control para demostrar que este método es muy versátil y no teñir dependiente. Este enfoque y los datos que se generan ayudará en la comprensión de la función que los anticuerpos a antígenos diana intracelulares podría desempeñar en la patogénesis de las enfermedades humanas.

Protocolo

1. Anticuerpo Etiquetado (Figura 1)

  1. Hacer NaHCO3 0,1 M buffer:
    • 8,4 g de NaHCO 3
    • 29,2 g de NaCl
    • 1 litro de H2O
  2. Llevar el tampón hasta un pH de 8,4 con esta solución (10,6 g de Na 2 CO 3, 29,2 g de NaCl, 1 litro H 2 0).
  3. Añadir 35 Atto550 NHS mu l a 70 l anti-hnRNPA1 y 500 l NaHCO 3 tampón y girar durante 1 hora a temperatura ambiente. Después de la rotación de una hora de duración, inyectar la mezcla en un dializador y dializar 2 litros de PBS durante la noche.
  4. El día siguiente, se concentran los dializados Atto550 NHS anti-hnRNPA1 utilizando una columna de centrifugación (Amicon Ultra 0,5).
  5. Después de que los Atto550 NHS marcado anti-hnRNPA1 anticuerpo se ha concentrado, nano-gota de muestra para determinar la concentración.

2. Anticuerpo transfección (Figura 2)

  1. Seed 10 5 células / pocillo en 500 l de Dulbecco Medio de Eagle Modificado (DMEM/F12 +10% FBS 1% de antibiótico) en una corredera 8 y 24 horas antes de la transfección. Confluencia celular debe ser de al menos 70%.
  2. Veinticuatro horas después de la siembra, añadir 2 l de Ab-DeliverIN reactivo en un tubo Eppendorf.
  3. A continuación, añadir 2 g de Atto550 NHS etiquetados anti-hnRNPA1 de anticuerpos (0,5 mg / l) para el mismo tubo de Eppendorf y se incuban 10-15 min a TA.
  4. Durante la incubación, aspirar los medios y añadir 394 l de medio DMEM fresco a las células.

Nota: Añadir 500 l DMEM a una cámara de células intactas para actuar como un control.

  1. Después de la incubación, añadir 100 ml de DMEM a la mezcla de anticuerpo, mezclar pipeteando arriba y abajo, y añadir a las células en DMEM para un volumen total de 500 l.
  2. Cambie los medios de comunicación después de 48 horas de la entrega de anticuerpos.

Nota: El Protocolo se repitió con FITC Rigg como control positivo.

3. Imágenes en directo y fijo para determinar la eficiencia

  1. Células de imagen en vivo a las 48 horas con la Cy3 filtro en un microscopio de fluorescencia a la imagen de las transfectadas Atto550 NHS anticuerpos marcados.
  2. Después de obtención de imágenes en vivo se ha completado, la aspiración de los medios y las células fijas.
  3. Después de los medios de aspiración, el tratamiento de células con 0,4% de paraformaldehído durante 15 min a temperatura ambiente. Lavar las células 4 x 5 min cada uno con PBS. A continuación, montar las células con medio de montaje que contiene el reactivo y el cubreobjetos solución DAPI. Medir la eficiencia de transfección de las células fijadas con Axiovision software. Si Axiovision software no está a la mano, simplemente contar los acontecimientos de su imagen por los resultados de la mano y se conectan a calcular en 3,7. Alternativamente, el software ImageJ puede ser utilizado para estos cálculos.
  4. En primer lugar, utilice la "Eventos" de medición para contar el número total de células en su imagen de elección de 20 aumentos.
  5. A continuación, utilice el "Eventos" de medición para contar las células que no erantransfectadas con éxito con los anticuerpos de la imagen misma magnificación de 20x.
  6. Para acceder a las medidas "Eventos" en un formato de estilo de Excel, haga clic en "Propiedades", haga clic en la "medición" ficha y haga clic para ver "Como muestra la tabla."
  7. Por último, utilice el siguiente cálculo para determinar la eficacia de transfección mediante la comparación de los dos eventos previamente medidos: ((células totales - las células no transfectadas) / células totales) x 100 = eficiencia de transfección.

4. Los resultados representativos

Las imágenes en vivo de no transfectadas (Figura 3A) en comparación con transfectadas (Figura 3B), las neuronas revelan que el etiquetado de los anticuerpos (rojo o verde en cada figura) se observa claramente dentro de las células (Figura 3B, C, D). Después de la aspiración y el lavado con medios para eliminar los anticuerpos entre o adherentes a la superficie de las células, anticuerpos marcados todavía están presentes dentro de las neuronas (Figura 3C, D). Para calcular la eficiencia de la transfección, el uso del software Axiovision para calcular el total de células en comparación con células que no fueron transfectadas con éxito. Estos valores se introdujeron en una fórmula de la eficiencia de transfección para adquirir la eficiencia de transfección como un porcentaje del total de células (Figura 4).

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Figura 1. Diagrama de flujo de los procedimientos utilizados para marcar anticuerpos con la Atto 550 NHS ester seguido los pasos necesarios para concentrar los anticuerpos marcados. Haga clic aquí para ampliar la cifra .

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Figura 2. Diagrama de flujo de los procedimientos utilizados para transfectar anticuerpos marcados en células vivas en cultivo.arge.jpg "target =" _blank "> Haga clic aquí para ampliar la figura.

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Figura 3. Las imágenes en directo de las neuronas transfectadas 48 h de transfección siguiente.

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Figura 4. Fija y se enjuagó con imágenes de eventos de contarse para determinar la eficiencia de transfección.

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Discusión

Con el fin de probar las hipótesis sobre moléculas específicas y de su expresión, genes y otros vectores son comúnmente transfectadas en células. El aspecto único de este procedimiento es la capacidad para transfectar fácilmente anticuerpos en las células diana. Se realizó este procedimiento en cinco experimentos separados, cada uno por duplicado. Resultados de transfección de eficiencia fue similar entre todos los experimentos. Es importante destacar que el método permite la entrada de anticuerpos en la célula, sin alt...

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Divulgaciones

No hay conflictos de interés declarado.

Agradecimientos

Este trabajo es apoyado por la Oficina de Investigación y Desarrollo, Médico del Servicio de Investigación del Departamento de Asuntos de Veteranos. Este estudio fue financiado por una concesión de mérito revisión VA (a MCL) y la Universidad de Tennessee Health Science Center Fondo Multiple Sclerosis Investigación.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Nombre de Reactivo Empresa Número de catálogo
Microscopio fluorescente AxioObserver A1 Zeiss
Axiovision versión 4.2 Zeiss
Lucha contra el rhnRNPA1 Abcam Ab4791
Marcado con FITC anti-Rigg OZ Biosciences AI20100
Atto550 éster de NHS Sigma 92835
Ab-DeliverIN OZ Biosciences AI20100
DMEM/F12 10% de FBS antibióticos +1% Gibco 11320-033
Poli-D-lisina 8-así diapositivas Cultura BD 354632
Multi-Purpose Rotator Científico IndustriInc es Modelo 151
Medios de montaje DAPI Millipore S7113
PBS Ambion 9626
Dializador Thermo Fisher Scientific 66380
Amicon Ultra-0.5 Millipore UFC501096
Paraformaldehído (4% de solución) Microscopía Electrónica de Ciencias
Nano-Drop Thermo Fisher Scientific

Referencias

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