Se requiere una suscripción a JoVE para ver este contenido. Inicie sesión o comience su prueba gratuita.

Artículo de método

Optogenético estimulación de comportamiento de escape en

17.5K visualizaciones

⸱

DOI:

10.3791/50192

⸱

25 de enero de 2013

 , 

En este artículo

Resumen

Codificados genéticamente herramientas optogenético permitir la manipulación no invasiva de neuronas específicas en el Drosophila Cerebro. Estas herramientas pueden identificar neuronas cuya activación es suficiente para provocar o suprimir conductas particulares. Aquí presentamos un método para activar Channelrhodopsin2 que se expresa en neuronas específicas en las moscas con libertad para caminar.

Resumen

Un número creciente de herramientas codificados genéticamente se están haciendo disponibles que permiten la manipulación no invasiva de la actividad neuronal de neuronas específicas en Drosophila melanogaster 1. El principal de ellos son herramientas optogenética, que permiten la activación o silenciamiento de neuronas específicas en el animal intacto y moverse libremente con luz brillante. Canalrodopsina (ChR2) es un canal catiónico activado por la luz que, al ser activado por luz azul, causa la despolarización de las neuronas que lo expresan. ChR2 ha sido eficaz para la identificación de las neuronas esenciales para comportamientos específicos, como el CO 2 evitación, la extensión y la probóscide gigante de fibra de respuesta de sobresalto mediada por 2-4. Sin embargo, como las fuentes de luz intensas utilizados para estimular ChR2 también estimular fotorreceptores, estas técnicas optogenético no se han usado previamente en el sistema visual. Aquí, combinamos un enfoque optogenético con una mutación que afecta a la fototransducción demostraciónnstrate que la activación de un grupo de neuronas sensibles al telar en lóbulo óptico de la mosca, Foma-1 neuronas, puede conducir a un comportamiento de escape utilizado para evitar la colisión. Se utilizó un alelo nulo de un componente crítico de la cascada de la fototransducción, fosfolipasa C-β, codificada por el gen Norpa, para hacer que la recta ciego y también utilizar el sistema de transcripción Gal4-UAS activador para conducir la expresión de ChR2 en la Foma-1 neuronas. Moscas individuales están colocados en una pequeña plataforma rodeada por LEDs azules. Cuando los LEDs se iluminan, las moscas rápidamente despegue en vuelo, de una manera similar a la impulsada visualmente telar de escape de comportamiento. Creemos que esta técnica se puede adaptar fácilmente para examinar otras conductas en movimiento libre moscas.

Introducción

Un creciente arsenal de herramientas codificados genéticamente han sido desarrollados para manipular la actividad neural en células específicas en Drosophila melanogaster 1. Estas herramientas permiten la activación no invasivo o el silenciamiento de neuronas específicas en el animal intacto y moverse libremente. Entre estos, Channelrhodopsin2 (ChR2), un canal catiónico activado por la luz, ofrece ventajas, ya que puede ser controlado temporalmente y se indujo rápidamente. Cuando las neuronas que expresan ChR2 están expuestos al brillante azul (470 nm) que rápidamente despolarizar y presentan elevadas tasas de disparo 3-5. Esa activació....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Protocolo

1. Generar moscas canalrodopsina

  1. Cruz UAS-ChR2 moscas con el controlador de Gal4 de su elección, se utiliza G105-Gal4, que se expresa en Foma-1 neuronas en el lóbulo óptico.
  2. Para eliminar la posibilidad de una respuesta visual a la estimulación de la luz azul, ambas líneas de mosca son en fondo aw + Norpa.
  3. Resultado final: w + Norpa; G105-Gal4/UAS-ChR2 +
  4. Después de moscas adultas eclose, poner las hembras seleccionadas en alimentos frescos, complementado con 10 mM todo-trans-retinal (un co-factor necesario para ChR2) y protegido de la luz, durante 3 días antes de realizar el ensayo de comportamiento.

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Resultados

Blind vuela manifieste ChR2 o el controlador G105 sólo muestran una baja tasa de despegue después de su iluminación con luz azul brillante. Blind vuela exhibió la misma velocidad de despegue sin iluminación (Figura 2), lo que sugiere que estos despegues eran espontáneas y no debido a la iluminación con luz azul. Cuando el ChR2 se expresa en las neuronas Foma1, sin embargo, la irradiación con luz azul provoca la respuesta de escape. Más del 50% de las moscas ensayadas despegó dentro de 1 segundo de ilumi.......

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Discusión

Hemos demostrado la estimulación optogenético de conductas de escape por el baño de caminar libremente las moscas a la luz azul brillante. Este enfoque puede ser fácilmente adaptado para examinar otros comportamientos en moscas libremente a pie, y se puede escalar a grandes plataformas simplemente embaldosado las matrices de LED se utilizan sobre un área mayor. Utilizando cualquiera de la cámara de bajo costo que estamos describiendo, o en otros sistemas de cámara disponibles, el usuario puede adaptar la velocidad.......

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Divulgaciones

No hay conflictos de interés declarado.

Agradecimientos

Este trabajo fue financiado por becas del Decano de Stanford (SEJdV), los Institutos Nacionales de Premio Pioneer del Director de Salud (TRC DP0035350), Premio de la Fundación McKnight Scholar (TRC) y R01 EY022638 (TRC).

....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Reactivo
Todo-trans retinal Avance Científico y Química Inc R3041
Equipo
Heat Sink 9.2 C / W Luxeonstar LPD30-30B 30 mm X 30 mm cuadrado alto
Carclo 18 ° Tri-Lens Luxeonstar 10507
Rebel LED azul en Tri-Star Base Luxeonstar MR-B0030-20T 470 nm, 174 lm @ 700 mA.
700 mA DC BuckPuck controlador Luxeonstar 3021-DE-700
Arnés de cableado para el controlador BuckPuck Luxeonstar 3021-HE
Pre-corte de cinta adhesiva térmica Luxeonstar LXT-S-12 20 mm Base hexagonal
Snap-Loc Refrigeracion, ¼ "ID McMaster-Carr 5307K49
Snap-Loc Conector de la manguera del refrigerante McMaster-Carr 5307K39 ¼ "NPT macho
Laboratorio Grado de cambio de modo programable DC Power Supply BK Precision 1698
Exilim cámara Casio EX-FH20

Referencias

  1. Venken, K., Simpson, J., Bellen, H. Genetic manipulations of genes and cells in the nervous system of the fruit fly. Neuron. 72, 202-230 (2011).
  2. Gordon, M., Scott, K. Motor control in a Drosophila taste circuit. Neuron. 61, 373-384 (2009).
  3. Suh, G. S. B., et al.

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Reimpresiones y permisos

Explorar más artículos

Canalrodopsina ChR2neuronas Foma-1mutación NorpAiluminación con LED azulensayo de iniciación del vuelosistema Gal4-UAStodo-trans-retinal