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Artículo de método

Preparación de las células acinares pancreáticas para los fines de Imagen de calcio, Lesiones Medidas Celulares e infección viral

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DOI:

10.3791/50391

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5 de julio de 2013

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En este artículo

Resumen

Se describe un método reproducible de la preparación de las células acinares pancreáticas de ratón de un ratón con el fin de examinar las señales de calcio de células acinares y el daño celular con estímulos fisiológica y patológicamente relevantes. Un método para la infección adenoviral de estas células también se proporciona.

Resumen

La célula acinar pancreática es la principal de células de parénquima del páncreas exocrino y desempeña un papel principal en la secreción de enzimas pancreáticas en el conducto pancreático. También es el sitio para la iniciación de la pancreatitis. A continuación se describe cómo se aíslan las células acinares del tejido pancreático conjunto y señales intracelulares de calcio se miden. Además, se describen las técnicas de transfección de estas células con las construcciones adenovirales, y, posteriormente, la medición de la fuga de lactato deshidrogenasa, un marcador de la lesión de las células, en condiciones que inducen la lesión de las células acinares in vitro. Estas técnicas proporcionan una poderosa herramienta para caracterizar la fisiología y la patología de células acinares.

Introducción

Los cambios dinámicos en el calcio citosólico son necesarios para los eventos de células acinares tanto fisiológicas como patológicas. Estos efectos divergentes de calcio se cree que son el resultado de diferentes patrones espaciales y temporales de calcio de señalización 1. Por ejemplo, la enzima y la secreción de fluidos a partir de las células acinares están vinculados a los picos de calcio a partir de una región restringida del polo apical donde la secreción tiene lugar 2. En contraste, una onda de calcio mundial seguido de intensas señales de calcio no oscilatorios se asocia con eventos patológicos tempranos que conducen a la pancreatitis a....

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Protocolo

1. Preparación de las células acinares pancreáticas de Imagen de calcio

  1. Preparar HEPES tampón de incubación que contiene 20 mM de HEPES, 95 mM NaCl, 4,7 mM KCl, 0,6 mM de MgCl 2, 1,3 mM de CaCl2, 10 mM de glucosa, 2 mM de glutamina, y 1 × aminoácidos no esenciales del medio mínimo de Eagle. Ajustar la solución final a pH 7,4 con NaOH.
  2. Preparar un tampón de incubación de BSA mediante la adición de BSA (1% w / v final) a 25 ml de HEPES el tampón de incubación (descrito anteriormente).
  3. Preparar un tampón de digestión de colagenasa mediante la adición de 1,1 mg / ml (200 unidades / ml) de colagenasa de tipo 4 y 1 mg / ....

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Resultados

Un ejemplo de las mediciones del calcio de células acinares en respuesta a estímulos fisiológicos se proporciona en la Figura 3. Las células acinares se cargaron con el colorante de calcio Fluo-4 y se perfundieron con el análogo de acetilcolina carbacol (CCh; 1 M)) 8. Las células respondieron en la forma de una onda de calcio que se inicia en la región apical y se propaga a la región basolateral 3,9. Trazados representativos se muestran en la Figura 3B muestran el .......

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Discusión

El método de aislamiento de células y ensayos posteriores representadas aquí representan poderosas herramientas con las que estudian las características fisiológicas y fisiopatológicas del páncreas exocrino. El método para aislar células acinares pancreáticas dispersos fue descrita por primera vez por Amsterdam y Jamieson en 1972 11. Los métodos que aquí se presentan han sido adaptados de los métodos de aislamiento más recientes descritos por Van Acker et al 12. Aunque estas técnicas son altamente .......

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Divulgaciones

No hay conflictos de interés declarado.

Agradecimientos

Esta labor fue apoyada por los Institutos Nacionales de Salud de subvención DK083327 y DK093491 (a SZH).

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
RatonesNCIN/AMacho 20-30 gramos; prácticamente cualquier cepa debería producir resultados comparables.
HEPESCloruro de sodio AB00892bioanalítico estadounidense
J.T. Baker3624-05
Cloruro de potasioJ.T. Baker3040-01
Cloruro de magnesioSigmaM-8266
Cloruro de calcioFischerC79
DextrosaJ.T. Baker1916-01
L-GlutaminaSigmaG-8540
1X mínimo Mezcla de aminoácidos no esenciales medio de EagleGibco11140-050
Hidróxido de sodioEMSX0593
Albúmina sérica bovinaSigmaA7906
ColagenasaWorthington4188
Inhibidor de tripsina de sojaSigmaT-9003
Dióxido de carbonoMatheson Gas124-38-9
125 ml Matraz de plástico ErlenmeyerCrystalgen26-0005
Kit de disecciónFine Science Tools14161-10
70% EtanolLabChemLC222102
P1000, P100, P10 pipetasGilsonFA10005P
Barco de pesajeHeathrow ScientificHS1420A
Pipetas de transferencia de plásticoUSA Scientific1020-2500
Tubos cónicos de 15 mlBD Falcon352095
Tubos cónicos de 50 mlBD Falcon352070
Tubo de microcentrífuga de 1,5 mlFisher05-408-129
Tubo de microcentrífuga de 0,65 mlVWR20170-293
Cubreobjetos de vidrio de 22 x 22 mmFisher032811-9
Ácido nítricoFischerA483-212
Ácido clorhídricoFischerA142-212
Agua desionizadaN/AN/A
18 x 18 mm cubreobjetosFischer021510-9
Película de laboratorioParafilmPM-996
Fluo-4AMInvitrogenF14201
Dimetilsulfóxido SigmaD2650
Luer lockBecton Dickinson932777
jeringa de 60 mlBD BioscienceDG567805
23 ¾ aguja de calibreBD Bioscience9328270
PE50 tuboClay AdamPE50-427411
Destornillador de cabeza plana N/AN/A
DMEM F-12, no Rojo FenolGibco21041-025
Aguja calibre 30,5BD Bioscience305106
5 CC JeringaBD Bioscience309603
25 ml Matraz ErlenmeyerFischer FB50025
Filtro de malla de nailon Nitex 03-150/38 Tamaño deporo de 150 mmm
placa de cultivo de tejidos de 48 pocillosCostar3548
placa de cultivo de tejidos de 96 pocillos Costar3795
placa de cultivo de tejidos de 6 pocillosCostar3506
Nitrógeno líquidoMatheson Gas7727-37-9
ensayo de citotoxicidadPromegaG1782
Adeno-GFPN/AN/ARegalo de J. Williams
Equipment
Soporte de anillo con abrazaderasUnited ScientificSET462
Cámara de perifusiónN/AN/ADiseñado por S.Z.H y sus colegas de la Universidad de Yale
Línea de vacíoManostat72-100-000
Baño de agua con agitadorPrecision Scientific51220076
Microscopio confocalZeissLSM 710
BioTek Synergy H1 lector de placas BioTek11-120-534
Campana de cultivo de tejidosNuaire NU-425-600
Incubadora de cultivo de tejidosThermo3110
kit de

Referencias

  1. Toescu, E. C., Lawrie, A. M., Petersen, O. H., Gallacher, D. V. Spatial and temporal distribution of agonist-evoked cytoplasmic Ca2+ signals in exocrine acinar cells analysed by digital image microscopy. Embo J. 11, 1623-1629 (1992).
  2. Ito, K., Miyashita, Y., Kasai, H.

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Reimpresiones y permisos

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