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Artículo de método

Combinando Manipulación sola molécula y de imagen para el estudio de las interacciones proteína-ADN

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DOI:

10.3791/51446

27 de agosto de 2014

En este artículo

Resumen

Aquí se describe la instrumentación y métodos para la detección de moléculas de proteína única etiquetados con fluorescencia que interaccionan con una sola molécula de ADN suspendido entre dos microesferas ópticamente atrapados.

Resumen

El artículo describe la combinación de pinzas ópticas y detección de fluorescencia de una sola molécula para el estudio de la interacción proteína-ADN. El método ofrece la oportunidad de investigar las interacciones que ocurren en solución (evitando así problemas debidos a superficies cercanas como en otros métodos de una sola molécula), controlando la extensión del ADN y rastreando la dinámica de interacción en función de los parámetros mecánicos y la secuencia de ADN. Se ilustran los métodos para establecer con éxito el atrapamiento óptico y la localización nanométrica de moléculas individuales. Ilustramos las condiciones experimentales que permiten el estudio de la interacción del represor de lactosa (lacI), marcado con Atto532, con una molécula de ADN que contiene secuencias diana específicas (operadores) para la unión de LacI. El método permite la observación de interacciones específicas en los operadores, así como la difusión unidimensional de la proteína durante el proceso de búsqueda de objetivos. El método es ampliamente aplicable al estudio de las interacciones proteína-ADN, pero también a los motores moleculares, donde es deseable el control de la tensión aplicada al polímero de la pista asociada (por ejemplo, actina o microtúbulos).

Introducción

Molécula individual (SM) técnicas han evolucionado mucho en los últimos treinta años para responder a la necesidad de superar algunas de las limitaciones de las mediciones de soluciones tradicionales, a granel 1.3. La manipulación de las moléculas biológicas individuales ha creado la oportunidad para medir las propiedades mecánicas de los biopolímeros 4 y controlar los parámetros mecánicos de proteína-proteína 5 y proteína-DNA 6,7. Detección de fluorescencia SM, por otro lado, representa una herramienta muy versátil para el estudio de actividad de la proteína in vitro e in vivo, dando lugar a la posibilida....

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Protocolo

1. Pinzas Ópticas instalación con nanómetros de Estabilidad

El montaje experimental debe proporcionar dos pinzas ópticas con señalar la estabilidad en las fluctuaciones del nivel e intensidad nanómetros del láser captura por debajo del 1%. La combinación de estas condiciones será garantizar la estabilidad del nanómetro de la mancuerna en tensión típica (1 pN - pocas decenas de pN), trampa de rigidez (0,1 pN / nm) y ancho de banda de medición (velocidad de adquisición de imágenes de 20 s-1). Un esquema de la configuración experimental se representa en la Figura 1.

  1. Diseño óptico pinzas y construcción <....

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Resultados

En un experimento exitoso, uno (o más) proteínas marcadas se someten a la unión / unbinding difusión y / o monodimensional a lo largo de la molécula de ADN (Figura 3A). La localización de proteínas a lo largo de la molécula de ADN permite la cuantificación de los parámetros cinéticos como una función de la secuencia de ADN. Cuando se aplican condiciones de tampón que causan difusión 1D, es posible seguir trayectorias de proteína, y determinar, por ejemplo, el coeficiente de difusión D 1D.

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Discusión

En la última década, las técnicas de manipulación y de imágenes de moléculas individuales se han visto grandes avances en términos de resolución espacial y temporal. La combinación de técnicas de manipulación y de imagen está en la base de instrumentos de gran alcance que ahora permiten el control de las condiciones mecánicas de un solo polímero biológico, tales como ADN, ARN o filamentos del citoesqueleto, y la localización simultánea de proteínas individuales interactuar con el mismo polímero . El control de las condi.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Agradecemos a Gijs wuite, Erwin JG Peterman, y Peter Gross para obtener ayuda con la microfluídica y Alessia Tempestini para obtener ayuda con la preparación de muestras. Esta investigación fue financiada por la Unión Europea del Séptimo Programa Marco (7PM / 2007-2013) en virtud de acuerdo de subvención n ° 284464 y del Ministerio de Educación, Universidad e Investigación FIRB 2011 RBAP11X42L006, Futuro italiano Ricerca 2013 RBFR13V4M2, y en el marco de la NANOMAX proyecto emblemático.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Aisladores elastoméricosNewportNewdampElija el elastómero Newdamp adecuado en función del peso del microscopio y de las frecuencias de resonancia
Aislador ópticoÓptica para la investigaciónIO-3-YAG-VHP
Láser Nd:YAG, longitud de onda de 1.064 nmSpectra-PhysicsMillennia IR
Deflectores acústico-ópticos (AOD)A& A optoelectrónicaDTS-XY 250
Sintetizadores digitales directosAnalog Devices
Detector de cuadrante fotodiodosOSI optoelectrónicaSPOT-15-YAG
Placa DIO y FPGANational InstrumentsNI-PCI-7830R
SchottKL 1500 LCD
CondensadorOlympusU-AAC 1.4NA Aplanat Objetivo Acromático
NikonCFI Plan Apochromat 60x 1.2NA inmersión en agua 532
nm láserZafirocoherente
CCD 200X y 2000XHamamatsu XC-ST70 CE
CCD multiplicado por electronesHamamatsu C9100-13
Platina piezoeléctrica con precisión nmPhysik InstrumenteP-527.2CL 
Filtro de emisiónChroma Technologies600/100m
Perlas de sílice (1,54 mm)Bangs LaboratoriesSS04N/5303
Albúmina de suero bovino (BSA)Sigma AldrichB4287
Acetato de pentilo Sigma Aldrich46022Líquidos y vapores inflamables (No 1272/2008)
NitrocelulosaSigma AldrichN8267-5EASólido inflamable  (No 1272/2008)
Bloque de calorMPM Instruments SrlM502-HBDcon 2 bloques extraíbles; precalentado a 120 °C; C
NanoPort ensamblaUpchurch Scientific Inc.N-333
Tubo de polieteretercetona Upchurch Scientific Inc.1535
Soporte metálico casero para el montaje del depósito de presión de la cámara de flujo de plexiglás
Jeringas de punta de bloqueo Luer 2,5 mlTerumoSS 02LZ1
Válvulas de cierre Upchurch Scientific, Inc.P-732
Herrajes sin bridas Upchurch Scientific, Inc.LT-111
Tubería de etileno propileno fluorado Upchurch Scientific, Inc.1549
Dos electroválvulas controladas por ordenadorClippard, Cincinnati, EE.UUET-2-H-M5
Transductor de presiónDruck LTDPTX 1400
biotin-14-dCTP Life Technologies19518-018
Desoxinucleotidil transferasa terminal (TdT)ThermoscientificEP0161
ATTO532 maleimidaSigma Aldrich68499
N,N-dimetilformamida (DMF) Sigma Aldrich227056Líquido Combustible, Nocivo por la absorción cutánea. Irritante, teratógeno. H226; H303; H312; H316; H319; H331; H360; P201; Pág. 261; Pág. 280; P305; Pág. 351; Pág. 338; P311
Clorhidrato de tris-(2-carboxietil)fosfina (TCEP) Sigma AldrichC4706
L-Glutatión reducido (GSH)Sigma AldrichG4251Toxicidad aguda, Oral (Categoría 5), H303
Amicon Ultra-15, PLQK Membrana Ultracel-PL, 10  Concentradores de espín de corte kDaMerck MilliporeUFC901024
Perlas de poliestireno recubiertas de estreptavidina 1,87 y micro; mSpherotech, Inc.SVP-15-5
Lámpara halógena .

Referencias

  1. Monico, C., Capitanio, M., Belcastro, G., Vanzi, F., Pavone, F. S. Optical Methods to Study Protein-DNA Interactions in Vitro and in Living Cells at the Single-Molecule Level. International journal of molecular sciences. 14, 3961-3992 (2013).
  2. Tinoco, I., Gonzalez, R. L.

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Reimpresiones y permisos

Etiquetas

Pinzas ópticasfluorescencia de molécula únicaextensión de DNA por fuerzarepresor de lactosaensamblaje de celda de flujolocalización nanométricadinámica de búsqueda de dianascontrol mecánicomicroscopía de fluorescencia