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Artículo de método

Proteómico de perfiles de los macrófagos por electroforesis 2D

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DOI:

10.3791/52219

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4 de noviembre de 2014

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En este artículo

Resumen

Los macrófagos son las células clave implicadas en la patogenicidad del huésped. Los macrófagos muestran una diversidad fenotípica y funcional que puede ser analizada y detectada mediante análisis proteómico. Este artículo describe cómo realizar electroforesis 2D de cultivos primarios de macrófagos humanos diferenciados en fenotipo M1 o M2.

Resumen

El objetivo del protocolo de electroforesis bidimensional (2D) descrito aquí es mostrar cómo analizar el fenotipo de macrófagos humanos cultivados. Se ha demostrado el papel clave de los macrófagos en diversos trastornos patológicos como enfermedades inflamatorias, inmunológicas e infecciosas. En este protocolo, utilizamos cultivos primarios de macrófagos derivados de monocitos humanos que se pueden diferenciar en el fenotipo M1 (proinflamatorio) o M2 (antiinflamatorio). Este modelo in vitro es fiable para estudiar las actividades biológicas de los macrófagos M1 y M2 y también para un enfoque proteómico. Las técnicas proteómicas son útiles para comparar el fenotipo y el comportamiento de los macrófagos M1 y M2 durante la patogenicidad del huésped. La electroforesis en gel 2D es una potente técnica proteómica para mapear un gran número de proteínas o polipéptidos simultáneamente. Describimos el protocolo de electroforesis 2D mediante colorantes fluorescentes, denominado Electroforesis en Gel Diferencial 2D (DIGE). Las proteínas de los macrófagos M1 y M2 se marcan con colorantes de cianina antes de su separación por enfoque isoeléctrico, de acuerdo con su punto isoeléctrico en la primera dimensión, y su masa molecular, en la segunda dimensión. A continuación, se utilizan puntos polipeptídicos o de proteínas separados para detectar diferencias en los niveles de expresión de proteínas o polipéptidos. Los enfoques proteómicos descritos aquí permiten la investigación de los cambios en las proteínas de los macrófagos asociados con diversos trastornos como la patogenicidad del huésped o las toxinas microbianas.

Introducción

Los macrófagos son células heterogéneas y de plástico que son capaces de adquirir fenotipos funcionales distintos. In vivo, estas células responden a una gran variedad de signalssuch ambiental micro como productos microbianos, citoquinas, etc. 1. In vitro, el fenotipo pro-inflamatoria (M1) de macrófagos puede ser inducida por lipopolisacárido (LPS) y el fenotipo anti-inflamatoria (M2) por algunas citoquinas tales como la interleuquina-4 (IL-4). Además, los macrófagos pueden cambiar de un M1 a M2 fenotipo activado, y por el contrario, de las señales específicas 2.

Dependiendo del fenotipo, m....

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Protocolo

El protocolo sigue las directrices de nuestro comité de instituciones de ética de la investigación humana. Capa de donantes humanos sanos Buffy se obtuvieron de la Transfusión de Sangre del Centro Regional (Lille, Francia). Las muestras obtenidas de las capas leucocitarias se declaran como una colección Inserm (n ° DC2010-1209).

1. Material y Cultura Preparación de Medios

  1. Diluir 10 veces de tampón fosfato salino (PBS) en agua destilada estéril para obtener PBS 1x.
  2. Hacer RPMI 1640 suplementado con gentamicina (40 mg / ml) y L-glutamina (2 mM), con y sin 10% de suero humano agrupado.

2. ....

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Resultados

Para realizar el análisis proteómico diferencial apropiado, el procesamiento de las muestras para ser analizadas debe ser verificada.

En el ejemplo presentado, la calidad de cultivo celular de los macrófagos se requiere para los aspectos morfológicos y moleculares según lo publicado previamente 5. La diferenciación de los monocitos en macrófagos y la homogeneidad de la cultura fue seguido por microscopía de fase. Figura 1 mostró un ejemplo de cultivos primarios de.......

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Discusión

El protocolo se describe en el presente documento detalla un método para analizar el impacto de diversos estímulos de los dos subtipos de macrófagos, M1 (pro-inflamatoria) y M2 (anti-inflamatorio). Los cultivos primarios de macrófagos M1 y M2 se obtuvieron de la diferenciación de los monocitos según lo publicado previamente 7.

El procedimiento de la electroforesis en gel 2D DIGE requiere materiales y equipos especializados, tales como células IEF para placas isoelectroenfoque, baj.......

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Divulgaciones

No hay conflicto de intereses declarado.

Agradecimientos

Este trabajo fue apoyado por Inserm. Marion Bouvet es miembro del Ministerio de Investigación y Tecnología de Francia. Annie Turkieh es becaria del FP7 HOMAGE (305507) de la Unión Europea.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
RPMI 1640Invitrogen31870-074
PBX 10 XInvitrogen14200-083
L-glutamina-200 mM-100XInvitrogen25030-024
gentamicina 10 mg/mlInvitrogen15710-049
suero humanoInvitrogen34005100
Ficoll d = 1.077ATGCL6115
LeucosepDutscher16760
  placa de 6 pocillos PRIMARIA Becton Dickinson353846
IL-4PromocellB-61410
lipopolisacáridoSigma-AldrichL-2654
GiemsaFluka48900
EDTA MM372,2Investigación Orgánica 3.00E+01
Filtro 0.22 y micro; mMilliporeSCGPTORE
Cilindro de 100 mlCorning430182
TCEPInterchimUP242214
Bradford reactivoBio-Rad5000006
Cy3+Cy5-colorante reactivoGE Healthcare25-8009-83
Tira IPG 3-10 24cmGE Healthcare17-6002-44
Protean Célula IEFBio-Rad165-4000
Agarosa de bajo punto de fusiónInvitrogen15517-014
Sistema Ettan-DaltsixGE Healthcare80-6485-08
Ettan DIGE Escáner de imágenesGE Healthcare
Progenesis Samespot Dinámicano lineal
Tubos de 50 mlcualquier proveedorn/a
Tubos de 15 mlcualquier proveedorn/a
CHAPSSigma-AldrichC5070
sué eMerk108484-500
Thiouré eSigma-AldrichT7875
TDTBio-Rad1610611
APSSigma-AldrichA3678
TEMEDSigma-AldrichT9281
Tris BaseSigma-AldrichT1503
Tris HClSigma-AldrichT3253
Pharmalytes 3-10GE Healthcare17-0456-01
SDSSigma-AldrichL3773
Azul de bromofenolSigma-Aldrich114391
GlicerolSigma-AldrichG6279
Acrilamida 40%Bio-Rad161-0148
Limpieza 2D GEHealthcare80-6454-51
GlycineSigma-AldrichG7126
Oscuro; tilformamidaSigma-Aldrich22705-6
mechas de electrodoBio-Rad165-4071

Referencias

  1. van Ginderachter, J. A., et al. Classical and alternative activation of mononuclear phagocytes: picking the best of both worlds for tumor promotion. Immunobiology. 211, (2006).
  2. Porcheray, F., et al.

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