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Técnicas para el Análisis de extracelular vesículas Usando citometría de flujo

DOI:

10.3791/52484

March 17th, 2015

In This Article

Summary

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Existen muchos métodos diferentes para la medición de las vesículas extracelulares (SVE) utilizando citometría de flujo (FCM). Varios aspectos deben ser considerados al determinar el método más apropiado para su uso. Se presentan dos protocolos para vehículos eléctricos de medición, usando la detección de individuo o de un enfoque basado en perlas.

Abstract

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Extracelular vesículas (EVs) son vesículas pequeñas, provenientes de las membranas que se encuentran en los fluidos corporales que son altamente involucrados en la comunicación celular y ayudan a regular una amplia gama de procesos biológicos. Análisis de los vehículos eléctricos utilizando citometría de flujo (FCM) ha sido notoriamente difícil debido a su pequeño tamaño y falta de poblaciones discretas positivos para los marcadores de interés. Métodos para el análisis EV, mientras mejorado considerablemente en la última década, son todavía un trabajo en progreso. Desafortunadamente, no hay una talla única para todos los protocolos, y varios aspectos deben ser considerados al determinar el método más apropiado para su uso. Aquí se presentan son varias técnicas diferentes para vehículos eléctricos de procesamiento y dos protocolos para el análisis de los vehículos eléctricos usando la detección de individuo o de un enfoque basado en perlas. Los métodos descritos aquí se ayudar con la eliminación de los agregados de anticuerpos que se encuentran comúnmente en las preparaciones comerciales, el aumento de la relación señal-ruido y la configuración de las puertas en una f racionalashion que minimiza la detección de la fluorescencia de fondo. El primer protocolo utiliza un método de detección individual que es especialmente adecuado para el análisis de un gran volumen de muestras clínicas, mientras que el segundo protocolo utiliza un enfoque basado en perlas para capturar y detectar los vehículos eléctricos y los exosomas más pequeñas.

Introduction

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Extracelular vesículas (EVs) son vesículas pequeñas, provenientes de las membranas que se encuentran en los fluidos corporales que son altamente involucrados en la comunicación celular y ayudan a regular una amplia gama de procesos biológicos. Análisis de los vehículos eléctricos utilizando citometría de flujo (FCM) ha sido notoriamente difícil debido a su pequeño tamaño y falta de poblaciones discretas positivos para los marcadores de interés. Métodos para el análisis EV, mientras mejorado considerablemente en la última década, son todavía un trabajo en progreso. Desafortunadamente, no hay una talla única para todos los protocolos, y varios aspectos deben ser consid....

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Protocol

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NOTA: Los siguientes protocolos se han realizado en cumplimiento de todas las directrices institucionales, nacionales e internacionales para el bienestar humano. Todas las muestras de sujetos humanos se pusieron a prueba en virtud de una junta de revisión institucional (IRB) protocolo -aprobado y con el consentimiento informado de los sujetos.

1. MÉTODO A: Individual Método de detección

1.1) Tratamiento de Muestra de sangre / Aislamiento de vehículos eléctricos

  1. Extraer la sangre del donante / paciente en dos tubos de 10 ml de vidrio que contenían 1,5 ml de ACD-Solución A u otro anticoagulante adecuado ....

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Results

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La Figura 1 describe el esquema general de procesamiento para el aislamiento y la detección de los vehículos eléctricos utilizando el método basado en perlas o método de detección individual. Detección individual de los vehículos eléctricos utilizando FCM trabaja bien para el análisis de los vehículos eléctricos más grandes, pero la mayoría de citómetros no son capaces de detectar individualmente partículas tan pequeñas como exosomas. Un enfoque basado en perlas permite pequeños vehículos eléctricos a d.......

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Discussion

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Se presentaron dos protocolos diferentes para el aislamiento, tratamiento y análisis de EVs, utilizando ya sea un individuo o de detección de enfoque basado en perlas. Al seleccionar el método más apropiado utilizar no siempre es sencillo y requiere una comprensión de la muestra a analizar, así como las subpoblaciones individuales de interés. Además, la sensibilidad de la citómetro utilizado para la adquisición se debe considerar al elegir el método más apropiado. A menudo no existe una única mejor protocolo de usar, má.......

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Disclosures

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Los autores no tienen ningún conflicto de intereses a revelar.

Acknowledgements

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Los autores desean agradecer a Dale Hirschkorn de Sistemas de Sangre del Instituto de Investigación por su ayuda con citómetro de flujo ajustes del instrumento. Este trabajo fue apoyado por el NIH subvenciones HL095470 y HL072268 U01 y contratos del Departamento de Defensa W81XWH-10-1-0023 y W81XWH-2-0028.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Citómetro de flujo de sobremesa LSR IIBD Biosciences3 láseres (20 mW Coherent Sapphire 488 nm azul, 25 mW Coherent Vioflame 405 nm violeta y 17 mW JDS Uniphase HeNe 633 nm rojo)
FACS Diva software BD BiosciencesPC versión 6.0
Software FlowJo Treestar USMac versión 9.6.1 o PC versión 7.6.5
Sphero Rainbow partículas fluorescentesBD Biosciences556298utiliza para ajustar todos los voltajes de los canales para mantener la consistencia de la intensidad de la fluorescencia 
Partículas fluorescentes Ultra Rainbow SpherotechURFP-10-5se utiliza además de las perlas de SSC Megamix-Plus para garantizar la consistencia de la compuerta EV de un lote a otro
Las perlas de SSC Megmix-PlusBiocytex7803se utilizan para ajustar los voltajes de FSC y SSC para mantener la consistencia entre ejecuciones. También se puede utilizar para controlar el caudal y el dial de caudal ajustado con el fin de garantizar que se utilice el mismo caudal en todas las corridas
AbC Anti-Mouse Bead KitTechnologiesA-10344utilizado para controles de compensación y perlas de AbC negativas utilizadas para el método basado en perlas
Alternativa Nonidet P-40 (NP-40) (CAS 9016-45-9)Santa Cruz  SC-281108Se utiliza en el método de detección individual solo para lisar muestras después de la lectura inicial para su uso como controles negativos. El caldo puede diluirse a 1:10 en PBS y almacenarse en el refrigerador hasta por 1 mes.
Tubos BD TruCOUNT BDBiosciences340334utilizan siempre que se necesiten concentraciones absolutas de EV
Ultrafree-MC, GV 0.22 y micro; m Unidades de filtro centrífugoMillipore UFC30GVNButiliza para lavar los EV después de las manchas y/o fraccionar los EV en función del tamaño
Tubos de sangre entera de vidrio Vacutainer ACD-ABD Biosciences364606
Tubos Facs 12x75 poliestirenoBD Biosciences352058
50 ml Depósitos envueltos individualmente PhenixRR-50-1s
Green-Pak - 10 µ lRaininGP-L10S
Green-Pak puntas de pipeta -200 y micro; l RaininGP-L250S
Verde -Pak puntas de pipeta - 1.000 y micro; l RaininGP-L1000S
Stable Stack L300 puntas preesterilizadasRaininSS-L300S
Pipet-Lite XLS 8 Canales LTS  Ajustable  Espaciador RaininLA8-300XLS Placas de cultivo de
E& K ScientificEK-20180
RPMI 1640 Media (sin Hepes)Instalación de cultivo celular de UCSFCCFAE001medios utilizados para el método de detección basado en perlas
Dulbeccos PBS D-PBS, CaMg-free, 0.2 y micro; mPlanta de cultivo celular UCSFCCFAL003
Tubo de ultracentrífuga, de pared delgada, ultratransparenteBECKMAN COULTER INC
PANEL I
CD3 PerCP-Cy5.5Biolegend3448082 µ l
CD14 APC-Cy7Biolegend3018202 y micro; l
CD16 V450BD Biociencias5604742 y micro; l
CD28 FITCbiolegend3029062 y micro; l
CD152 APCBD Biociencias5558552 y micro; l
CD19 A700Biolegend3022262 y micro; l
PANEL II
CD41a PerCP-Cy5.5BD Biosciences3409302 y micro; l
CD62L APCBiolegend3048102 y micro; l
CD108 PE BD Biociencias5528302 y micro; l
CD235a FITCbiolegend3491042 y micro; l
PANEL III
CD11b PE-Cy7Biolegend3013222 y micro; l
CD62p APCBiolegend3049102 y micro; l
CD66b PE Biolegend3051062 y micro; l
CD15 FITCexalphaX1496M5 y micro; l
CD9 PEBiolegend555372
CD63 APCBiolegend353008
APC-Cy7 Ms IgG2a, κBiolegend400230
Life Puntas de pipeta tejidos de 96 pocillos filtrada 344058

References

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Andaloussi, S., Mäger, I., Breakefield, X. O., Wood, M. J. A. Extracellular vesicles: biology and emerging therapeutic opportunities. Nature Reviews Drug Discovery. 12 (5), 347-357 (2013).
  2. Sugawara, A., Nollet, K. E., Yajima, K., Saito, S., Ohto, H.

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Extracellular VesiclesFlow CytometryBead Based DetectionIndividual DetectionPlatelet Poor PlasmaAntibody StainingCytometer SetupFluorescent ParticlesPolystyrene BeadsForward Scatter

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