Preparación Facile y Eficiente de la glicopolímeros fluorescentes Tri-componentes a través de polimerización BALSA controlado

Resumen

Se demuestra una síntesis eficiente de tres pasos de glicopolímeros fluorescentes basados en RAFT, que consiste en preparación de glucomonómero, copolimerización y post-modificación. Este protocolo se puede utilizar para preparar glicopolímeros estadísticos basados en RAFT con las estructuras deseadas.

Resumen

Glicopolímeros sintéticos son herramientas instrumentales y versátiles usados ​​en varios campos de investigación bioquímica y biomédica. Un ejemplo de una síntesis fácil y eficiente de glicopolímeros estadísticos fluorescentes bien controlados utilizando adición-fragmentación de transferencia de cadena reversible (RAFT) polimerización basado se demuestra. La síntesis comienza con la preparación de metacrilamida glycomonomer 2-lactobionamidoethyl que contiene β-galactosa obtenido por reacción de lactobionolactona y N - (2-aminoetil) metacrilamida (AEMA). 2-Gluconamidoethyl metacrilamida (Gaema) se utiliza como un análogo estructural que carece de una β-galactósido terminal. La siguiente reacción de copolimerización de RAFT mediada implica tres monómeros diferentes: N - (2-hidroxietil) acrilamida como espaciador, AEMA como objetivo para su posterior etiquetado de fluorescencia, y los glycomonomers. Tolerante de sistemas acuosos, el agente de RAFT usado en la reacción es (ácido 4-cianopentanoico) -4-ditiobenzoato.Se observaron dispersities Bajos (≤1.32), composiciones de copolímero predecibles, y una alta reproducibilidad de las polimerizaciones entre los productos. Polímeros fluorescentes se obtienen mediante la modificación de los glicopolímeros con carboxifluoresceína succinimidil éster dirigidos a los grupos funcionales de amina primaria en AEMA. Especificidades de unión a lectina de los glicopolímeros resultantes se verificaron mediante pruebas con perlas de agarosa correspondientes recubiertas con lectinas glycoepitope reconocer específicos. Debido a la facilidad de la síntesis, el control estricto de las composiciones de productos y la buena reproducibilidad de la reacción, este protocolo se pueden traducir hacia preparación de otros glicopolímeros a base de balsa con estructuras y composiciones específicas, según se desee.

Introducción

En las últimas dos décadas, las investigaciones con glicopolímeros sintéticos han experimentado un desarrollo lento pero continuo, lo que demuestra un potencial significativo en el examen de los mecanismos infecciosos que incluyen la investigación que se centra en el reconocimiento de lectina procesa ^1-3. Desde glicopolímeros sintéticos que poseen restos de azúcar multivalentes presentan eficacias de unión a lectina mucho más altos, en comparación con los hidratos de carbono monovalentes, son de gran demanda en el campo de la glicobiología ^3. De particular interés en la investigación clínica es el uso de glicopolímeros fluorescentes para caracterizar la unión con hidratos de carbono disponibles en las superficies celulares respiratorios humanos y glicoproteína mucosa bacteriana lectina mediada. Temprano en estudios in vitro empleado glicopolímeros basado en poliacrilamida disponibles comercialmente en las pruebas de unión bacterianas. Varias de estas sondas mostraron resultados prometedores, pero expresaron su preocupación respecto, varianzas fácil obtención, y muchos-a-muchos, tanto en polYmer peso molecular y contenido glycoepitope. Un protocolo económica en el laboratorio fue desarrollado que proporcionaría un control satisfactorio de contenido de la estructura, el tamaño, y la pureza de glicopolímeros sintéticos dirigidos lectinas bacterianas.

En búsqueda de un enfoque sintético adecuado para glicopolímeros, una técnica relativamente nueva polimerización fue probada usando un tipo de polimerización radical controlada que emplea adición-fragmentación de transferencia de cadena reversible (RAFT) agentes ^4. Tales reactivos BALSA Recientemente se han utilizado en algunas preparaciones glycopolymer ^5-7. En comparación con otros protocolos de preparación glycopolymer, polimerizaciones RAFT mediada demuestran varias ventajas, incluyendo la tolerancia a una variedad de estructuras de monómeros y condiciones de reacción, el potencial de compatibilidad con las soluciones acuosas, y baja dispersidad tamaño de los productos poliméricos deseados ^8,9. De notable interés son protocolos para la preparación de BALSA-baSED-tri componente glicopolímeros, permitiendo el control de las composiciones de monómeros diferentes, cada uno de los cuales pueden tener funciones distintas ^10-13. Sin embargo, la mayoría de los esfuerzos de investigación anteriores o bien carecían de hidratos de carbono anoméricos colgante ^10, o emplear intensificaron polimerizaciones resultantes en copolímeros de tri-bloque, que consisten en homopolímeros unidos covalentemente, que a menudo sirven para diferentes propósitos que los polímeros estadísticos que son copolímeros en los que la secuencia de monómero residuos siguen una regla estadística ^9-13.

Recientemente, empleando el compuesto de RAFT tiocarboniltio (ácido 4-cianopentanoico) -4-ditiobenzoato en un entorno acuoso, la preparación de un grupo de balsa basa glicopolímeros estadísticos tri-componente lineales que contienen azúcares colgantes específicas y su aplicación en la lectina de unión mediada bacteriana pruebas se informó ^14. El objetivo general de este método, presentado de una manera visual, es preparar a los tri-componenteglicopolímeros fluorescentes estadísticos a través de copolimerización controlada por balsa. Debido a la facilidad del protocolo de polimerización de un solo paso, el control fino sobre la longitud del polímero y composiciones, y la alta reproducibilidad de la reacción, este protocolo puede aplicarse fácilmente a otras síntesis basado en la balsa de glicopolímeros con estructuras deseadas.

Protocolo

1. Síntesis de Glycomonomer 2-Lactobionamidoethyl metacrilamida

1. Disolver 2 g de ácido lactobiónico en 3,0 ml de metanol anhidro y lentamente añadir etanol absoluto en una caída de la moda del reloj hasta la solución justa convierte nublado, y se eliminan los disolventes mediante evaporación rotatoria.
2. Disolver el residuo, de la etapa 1.1, en 3,0 ml de metanol anhidro y, una vez más, se añade lentamente etanol absoluto hasta justo nublado, y se evaporan los disolventes a través de evaporación rotatoria. Repita este paso 3 veces para obtener lactobiono-1,5-lactona (1,94 g, rendimiento 98%). Este producto es de suficiente pureza para ser utilizado en las siguientes reacciones.
3. Añadir 1,0 g de lactobionolactona en 3,0 ml de metanol a N - (2-aminoetil) metacrilamida (AEMA, 0,58 g) y éter monometílico de hidroquinona (MEHQ, 1,0 mg), un inhibidor de la auto-polimerización, en 2,0 ml de metanol, seguido por 1,0 ml de trietilamina. Se agita a TA durante 48 h.
4. Añadir 20 ml de _H2O desionizada (DH ₂ O) al matraz de reacción, a continuación, eliminar el metanol y trietilamina libre por evaporación a sequedad mediante evaporación rotatoria.
5. Para eliminar cualquier ácido lactobiónico restante, añadir 20 ml de dH ₂ O, a continuación, pasar la solución acuosa a través de una columna de intercambio de aniones (forma OH ^-, 10 mm x 20 mm) en un vaso de recepción que contiene 1,0 mg de MEHQ.
6. Eliminar trietilamina, producido en la Etapa 1.5, mediante la evaporación a sequedad mediante evaporación rotatoria.
7. Añadir 20 ml de dH ₂ O y quitar sin reaccionar AEMA por adición lenta de 1 mg alícuotas de resina de intercambio catiónico (forma H ⁺⁾ hasta que no ninhidrina materiales reactivos son detectables. Monitorear la eliminación tomando 1 ml de alícuotas de la solución después de cada adición de resina, aplicándolo a una placa de cromatografía en capa fina, a continuación, la pulverización de la placa con una ninhidrina 2% en solución de etanol. Cuando no se observa de color azul profundo a desarrollarse cuando la placa se calienta a 90 ° C durante 1 min, se ha alcanzado el punto final.
8. Se filtra la solución a través de un embudo de vidrio poroso, transferir el filtrado a un tubo de ensayo, congelar la muestra a -80 ° C, y luego se liofiliza.
9. Eliminar MEHQ de la muestra disolviendo el material liofilizado en una cantidad mínima de metanol (~ 0,5 ml), a continuación, añadir acetona anhidra frío (-20 ° C, 15 ml) para precipitar el producto. Recoger el precipitado por filtración utilizando un embudo de vidrio fritado, a continuación, secar el precipitado en un desecador a vacío para obtener metacrilamida 2-lactobionamidoethyl (LAEMA) como un polvo blanco (0,94 g, rendimiento 68%). Este producto es de suficiente pureza para ser utilizado en las siguientes reacciones.

2. Síntesis de monómero 2-Gluconamidoethyl metacrilamida

Nota: La preparación de metacrilamida 2-gluconamidoethyl (Gaema), que no posee un azúcar colgante, es una adaptación de un método publicado ^15.

1. Añadir 2,0 g de AEMA disuelto en 10 ml de metanol a una soluciónde D-gluconolactona (1,6 g) en 30 ml de metanol y, con agitación, se añade lentamente 1,6 ml de trietilamina.
2. Se agita la reacción a temperatura ambiente durante 24 hr.
3. Se filtra el producto precipitado utilizando un embudo de vidrio fritado y enjuagar el precipitado tres veces con 10 ml cada uno de isopropanol, a continuación, lavar con 10 ml de acetona seca. Secar el producto precipitado en un desecador a vacío.

3. BALSA Glycopolymer Síntesis

1. Para quitar el MEHQ presente en N comercial inhibidor - (2-hidroxietil) acrilamida (HEAA), añadir 1 ml de HEAA a un tubo de microcentrífuga de 2 ml, seguido por la adición de 0,5 g de nanopartículas de óxido de aluminio. Centrifugar el tubo a 300 xg durante 30 segundos, y el uso de la HEAA capa superior en la siguiente reacción.
2. Añadir con cuidado 32,8 mg de LAEMA (70,0 mol), 1,7 mg de AEMA (10,5 mol) y 27,5 l de HEAA (270 mol), todos disueltos en 0,4 ml de dH ₂ O, a un tubo de 1 ml Schlenk bien limpia, por lo tanto que tiene un Monomer relación molar de 20: 3: 77.
3. En una reacción paralela, con el fin de producir polímeros de control que no poseen ningún azúcar colgante, en lugar de utilizar LAEMA en el paso 3.2, sustituir 21,4 mg de Gaema (70,0 mmol) en la reacción.
4. Para el tubo de Schlenk respectivo (es decir, 3,2 o 3,3), añadir secuencialmente 50 l de DMF que contiene 0,53 mg de (ácido 4-cianopentanoico) -4-ditiobenzoato (1,9 mol, agente de RAFT), y 50 l de DMF que contiene 250 g de 4,4'-azobis (ácido 4-cianovalérico) (0,9 mol, iniciador). Mezclar suavemente golpeando el dedo.
5. Congele los contenidos que figuran en el tubo Schlenk que emplean un hielo seco: baño de etanol (75 g de hielo seco en 100 ml de etanol), aplicar un vacío dentro de 10 a 50 mTorr, a continuación, cierre la válvula de Schlenk y permitir la solución para descongelar lentamente a RT . Repita este ciclo de congelación-descongelación evacuar dos veces más. Asegúrese de que todos los reactivos se disuelven después del último deshielo.
6. Coloque el tubo de Schlenk en una ba de plástico con cierreg, evacuar el aire de la bolsa, y luego sellarlo. La transferencia de la bolsa que contiene el tubo de Schlenk a un baño de agua precalentado a 70 ° C y se incuba durante 24 hr.
7. Transferir cuidadosamente la solución en el tubo de Schlenk a una bolsa de diálisis preparada (MWCO = 3,500), y dializar contra dH ₂ O (10 x 2 l) durante 24 horas, cambiando el _H2Od cada hora durante las primeras 8 horas. Después de la diálisis, la transferencia de la muestra desde el tubo de diálisis a un tubo de ensayo, congelar la muestra a -80 ° C, y luego liofilizar la misma.

Nota: La estadística resultante poli-metacrilamida / acrilamida (PMA) copolímeros que contienen colgante 4- O -β-D-galactopiranosil-D-gluconamida (lactobionamida) (de la Etapa 3.2) o D-gluconamida (del Paso 3.3), respectivamente, son obtenido. Por conveniencia de la discusión, estos dos glicopolímeros se abrevian como PMA-LAEMA y PMA-Gaema, respectivamente.

4. Post-modificación de glicopolímeros con fluoróforos

1. Disolver 5,0 mg de glycopolymer PMA-LAEMA o PMA-Gaema que contiene ~ 0,9 mol de grupos funcionales de amina primaria en 0,9 ml de solución salina tamponada con fosfato (PBS, fosfato de sodio 0,1 M, NaCl 0,15 M, pH 7,5), respectivamente.
2. Añadir lentamente 0,6 mg de éster de succinimidilo carboxifluoresceína en 100 l de DMF a las soluciones con agitación rápida. Revuelva suavemente las reacciones de 16 horas en la oscuridad a temperatura ambiente.
3. Si bien protegido de la luz, cargar la muestra en un tubo de diálisis preparada (MWCO = 3,500) y dializar contra dH ₂ O (2 L) durante 16 horas, cambiando la solución de diálisis cada hora durante las primeras 8 horas. Después de la diálisis, la transferencia de la muestra desde el tubo de diálisis a un tubo de ensayo, congelar la muestra a -80 ° C, y luego liofilizar la misma.

Nota: Después de la liofilización, glicopolímeros fluorescentes PMA-LAEMA-fluoresceína y PMA-Gaema-fluoresceína, respectivamente, se obtienen.

5. Caracterización de la Glycopolímeros

1. Determinar el número promedio de peso molecular (Mn), el peso promedio de peso molecular (M w) y la dispersidad (M w / M n) de los glicopolímeros en un sistema de HPLC comercial equipado con cromatografía de permeación en gel (GPC) de software, una GPC columna adecuada para el peso molecular de interés, y un detector de índice de refracción, utilizando 0,1 M Tris / tampón 0,1 M de cloruro de sodio (pH 7) como eluyente a un caudal de 0,6 ml / min ^14. Utilice normas polietilenglicol como patrones de peso molecular (MW: 200-1,200,000 g / mol).
2. Cuantificar las concentraciones reales de los grupos funcionales amina primaria dentro de los glicopolímeros ^16. Analizar el contenido total de carbohidratos de los glicopolímeros sintetizó de acuerdo con un método publicado ^17.
3. Realizar pruebas de composición estructural y la pureza del LAEMA glycomonomers, Gaema y glicopolímeros PMA-LAEMA, PMA-Gaema en _D2O por espectroscopía de RMN ¹⁴.

6. Los ensayos de unión de los glicopolímeros sintéticos con lectina-revestidos perlas de agarosa

1. Añadir 1,5 ml de PBS a 50 l de suspensión de Erythrina lectina (ECL) perlas de agarosa recubiertas crista galli-, centrifugar a 300 xg durante 1 min, y retirar con cuidado y desechar el sobrenadante. Repita este paso dos veces, y luego volver a suspender las perlas en 0,5 ml de PBS.
2. Añadir 3 g de PMA-LAEMA-fluoresceína o PMA-Gaema-fluoresceína (control negativo) en 6 l de PBS a la suspensión de perlas, e incubar las mezclas, en la oscuridad, a temperatura ambiente durante 1 hr.
3. Lavar las mezclas con 1,5 ml de PBS tres veces, y los granos de volver a suspender en 0,2 ml de PBS. Cargar una alícuota (4 l) en un pozo en un portaobjetos de microscopio de inmunofluorescencia (recubierto de teflón), cubrir con un cubreobjetos, y observar por microscopía de fluorescencia utilizando un filtro FITC (longitud de onda de excitación: 467 a 498 nm, longitud de onda de emisión: 513- 566 nm) y un objetivo de 10X para examinar la unión de tél fluorescente glicopolímeros con las perlas ^14.

Resultados

Síntesis de glycomonomer

Ácido lactobiónico se usa en este documento como un ejemplo para la preparación de glycomonomers. El uso de métodos en el informe inicial sobre la síntesis de LAEMA ^11, se observaron diversas rendimientos en la preparación con la pureza insatisfactoria. El método de purificación modificado usando resinas de intercambio catiónico y aniónico para eliminar el material de partida sin reaccionar ofrecido rendimiento de producto estable y de alta pureza, que se confirma por ¹ H y ¹³ C RMN espectroscopia (Figura 1).

BALSA síntesis glycopolymer y después de la modificación de glicopolímeros con fluoróforos

En contraste con los bloques-glicopolímeros preparados a través de polimerizaciones RAFT escalonadas, este protocolo copolimerización de un solo paso proporciona una distribución uniforme en todo el glycomonomer cadena principal del polímero. Los glicopolímeros muestran aquí contienen 20% en moles de glycomonomer, 77% en moles de HEAA como un espaciador, y 3% en moles de AEMA como un objetivo para la post-modificaciones (véase la Figura 2). ¹ H y ¹³ C-espectroscopía de RMN confirman las estructuras de PMA-LAEMA y PMA-Gaema (Figuras 3 y 4). Como se muestra en la Figura 5, cuando representa frente a los perfiles de elución de GPC de la glycopolymer sintetizado sin balsa, tanto PMA-LAEMA y PMA-Gaema tienen dispersities bajas, lo que demuestra la eficacia del enfoque de balsa. Como era de esperar, PMA-Gaema tiene un M n menor que el de PMA-LAEMA debido a la falta de un azúcar colgante de PMA-Gaema. Análisis de los hidratos de carbono y grupos funcionales de amina primaria contenido de los glicopolímeros RAFT reveló que la relación de monómeros en los glicopolímeros de productos es coherente con la relación estequiométrica de los monómeros de partida empleados en la reacción de polimerización de RAFT mediada (Tabla 1). Esto significa un control estricto de la compositio monómerons en los glicopolímeros sintetizados, tal como fue diseñado.

Reacción de los grupos funcionales amina primaria con fluoróforos activados es una técnica ampliamente utilizada en el etiquetado de proteínas. Esta técnica se emplea aquí para etiquetar glicopolímeros purificadas con carboxifluoresceína. Después de post-modificación, se obtuvieron polímeros fluorescentes (Figura 6). No hay degradación de los polímeros marcados con fluoresceína en la reacción se detectó por análisis GPC (datos no mostrados).

La unión de las pruebas glicopolímeros sintéticos con perlas de agarosa lectina recubierto

Para evaluar la especificidad de unión de lectina de las glicopolímeros sintetizados, se utilizaron perlas de agarosa-lectina recubierto con especificidad de unión a carbohidratos conocida. Lectina Erythrina crista-galli (ECL), empleado en los experimentos, tiene una especificidad de unión hacia β-D-galactósido. Figura 7A demuestra claramente que PMA-LAEMA-Fluoresceína, que contiene β-D-galactósido como un carbohidrato colgante, exhibió fuerte unión con la lectina ECL. En contraste, la unión a la ECL de la glycopolymer PMA-Gaema-fluoresceína, que no posee un azúcar colgante negativa, se muestra en la Figura 7B. Este resultado ejemplifica la eficacia de unión y afinidad de la glycopolymer fluorescente sintetizada.

Figura 1. Asignado ¹ H- (a) y ¹³ C-RMN (b) los espectros (D ₂ O) para LAEMA. (Esta cifra se ha modificado de Wang et al. ¹⁴⁾ Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 2. Ilustración esquemática de la síntesis de glycopolymer fluorescente PMA-LAEMA contiene β-galactosidasa como azúcar colgante. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 3. Asignado ¹ H- (A) y ¹³ C-RMN (B) espectros (D ₂ O) para glycopolymer PMA-LAEMA. (Esta cifra se ha modificado de Wang et al. ¹⁴⁾ SúplicaSe Haz clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 4. Asignado ¹ H- (A) y ¹³ C-RMN (B) espectros (D ₂ O) para el PMA-Gaema. (Esta cifra se ha modificado de Wang et al. ¹⁴⁾ Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta cifra.

Figura 5. Gel rastros de cromatografía de permeación de sede en BALSA PMA-Gaema y PMA-LAEMA preparan con y sin utilizar agente BALSA. En contraste con el PMA-LAEMA preparado sin BALSA agente (azul), RAFT- PMA-LAEMA basado (verde) tiene una dispersidad mucho menor (M w / M n). Basado en BALSA PMA-Gaema (rojo) y PMA-LAEMA tener perfiles GPC similares, pero el primero tiene un M más pequeño n debido a la ausencia de azúcares colgantes. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 6. PMA-LAEMA antes y después del post-modificación con fluoróforo. (A) En comparación con el blanco no marcado glycopolymer (tubo de la izquierda), marcado con fluoresceína PMA-LAEMA muestra un color amarillo fuerte (tubo de la derecha). (B) Bajo los rayos UV, no marcado PMA-LAEMA (tubo izquierdo, 1 mg / ml en PBS) es oscuro y presenta sin fluorescencia, mientras PMA-LAEMA-fluoresceína marcado (trompa derecha, 1 mg / ml en PBS) espectáculos fuerte fluorescencia verde.: //www.jove.com/files/ftp_upload/52922/52922fig4large.jpg "Target =" _ blank "> Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 7. Erythrina crista-galli lectina (ECL) perlas de agarosa recubiertas unen-D-galactosidasa β contiene glicopolímeros, y no aquellos que no posean un azúcar colgante. (A) PMA-LAEMA-fluoresceína (3 mg) demostraron unión fuerte con ECL , mientras que en (B) PMA-Gaema-fluoresceína, que posee ningún residuo colgante de β-D-galactósido, no mostró unión con las perlas recubiertas de lectina. Barra de escala = 100 micras.

Tabla 1. Valores dirigidas ^{a un} de los parámetros de síntesis y composiciones reales de los glicopolímeros. A) los valores de orientación, valores queestán deseada de los productos; b) DP, el grado de polimerización; c) NA, no está disponible. Por favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

	DP b	Dispersidad	Contenido real de glycomonomers mol%	Contenido real de amina primaria mol%
Los valores de orientación	100	<1.3	20	3
PMA-LAEMA	99	1.26	19	3.2
PMA-GAEMA	89	1.32	NA c	2.7

Discusión

Un protocolo de fácil y eficiente para glicopolímeros fluorescentes tri-componente basado en balsa, con y sin un carbohidrato colgante, y su uso en un ensayo de unión a lectina, se demuestra en este informe. El protocolo comienza con la preparación de glycomonomers LAEMA y Gaema. A través de una copolimerización balsa controlada de un solo paso, glicopolímeros con rendimiento reproducible, composición de monómeros predecible y baja dispersidad, se obtienen. Después de post-modificación de glicopolímeros con carboxifluoresceína succinimidil éster, la unión de la respectiva glycopolymer marcado fluorescente resultante es fácilmente comprobable por su especificidad de unión de lectina.

En los pasos de preparación iniciales de los glycomonomers que se van a emplear en la síntesis glycopolymer posteriores, se utilizaron ácido lactobiónico fácilmente disponibles y gluconolactona. En teoría, los hidratos de carbono de interés, de monosacáridos a oligosacáridos complejos, pueden ser converted para glycomonomers conjugando el azúcar blanco en el grupo hidroxilo primario en C6 de la glucosa. Después de la oxidación del residuo de glucosa reductor, y su posterior deshidratación de una lactona, el producto puede entonces hacerse reaccionar con la amina primaria en AEMA para formar el correspondiente glycomonomer fácilmente. Otros ejemplos de esta ruta se pueden ver en un informe reciente ^14. Cabe señalar que antes de iniciar cualquier etapa de polimerización, MEHQ, un potente inhibidor de la polimerización, se debe quitar de todas las preparaciones de monómero y glycomonomer justo antes del uso. Esto se consigue fácilmente mediante el uso de la cantidad mínima de metanol para disolver el glycomonomer que posee MEHQ después tratar inmediatamente con acetona a -20 ° C para precipitar el producto libre de inhibidores con alto rendimiento.

Imprescindible en cualquier esquema de polimerización de radicales, se hizo hincapié en la atención al detalle y monómero purezas. Como es típico de un sistema de polimerización balsa, que consiste enuna fuente de radicales, un reactivo de balsa, un monómero y disolvente. En esta presentación visualizado, un sistema de polimerización de RAFT de un solo paso se describe que se centra en la producción de copolímeros estadísticos generados a partir de una mezcla de reacción que posee tres monómeros diferentes en una solución acuosa. Dos reacciones RAFT mediada separados se presentan en la que uno utiliza un glycomonomer que posee un colgante, no reductor terminal de hidratos de carbono (es decir, β-D-galactosa), y el otro, que posee un poliol con ningún residuo de hidratos de carbono enlazado. Común a ambas reacciones RAFT mediada eran monómeros que poseen un grupo hidroxilo singular que sirve como una molécula espaciadora, y otro que posee una amina libre para la post-modificación con un fluoróforo-amino reactiva.

Dado que la presencia de oxígeno en la mezcla de reacción y el medio ambiente es perjudicial para la polimerización mediada BALSA, su retirada de rastrear los niveles se realiza fácilmente a través de varias de congelación-evaciclos cuate-descongelación mientras se mantiene el recipiente de reacción tubo Schlenk bajo alto vacío.

Cabe señalar que la relación molar de monómeros diferentes en la reacción se puede ajustar según sea necesario. También, mediante la variación de la cantidad de agente de RAFT utilizado, la longitud de los polímeros resultantes se puede controlar ^18. Sin embargo, la relación molar del agente de RAFT a iniciador debe ser siempre mayor que dos para asegurar la baja dispersidad del producto. En estas condiciones, la evolución de la copolimerización es constante, y la reproducibilidad de la reacción es muy alta. Dicho esto, es poco probable que se obtiene una distribución totalmente uniforme de todos los monómeros que participan dentro de un copolímero estadístico, debido a sus diferentes velocidades de polimerización. Caracterización de la distribución de los diferentes monómeros en el polímero es todavía muy difícil.

El método posterior a la modificación, que aquí se presenta, es a la vez simple y más amenable para el uso de una selección más amplia de marcadores fluorescentes, en comparación con otros protocolos aplicados a glicopolímeros etiqueta ^2,11. Estos incluyen muchos de los fluoróforos de amina reactiva solubles en agua, los puntos cuánticos, biotinas, y otros. Las especificidades de unión de los sintetizados, glicopolímeros marcados son fácilmente verificable utilizando lectinas con afinidades de unión conocidos. PMA-Gaema poseer sin azúcar colgante es un control negativo apropiado. Glicopolímeros con diferentes etiquetas fluorescentes preparados a través de esta ruta se han utilizado con éxito en las investigaciones de lectina mediada por la unión bacteriana ^14. Tal como se presenta, esta preparación fácil y eficiente de glicopolímeros fluorescentes estadísticos debe proporcionar un gran potencial para una amplia variedad de investigaciones glycobiological.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo

Nombre	Empresa	Número de catálogo	Comentarios
Reactivo
Ácido lactobiónico	Sigma-Aldrich	153516
D-Gluconolactona	Sigma-Aldrich	G2164
N-(2-hidroxietil) acrilamida (HEAA)	Sigma-Aldrich	697931
Sal sódica de naranja II	Sigma-Aldrich	O8126
Éter monometílico de hidroquinona (MEHQ)	Sigma-Aldrich	54050	Inhibidor de polimerización
N-(2-aminoetil) clorhidrato de metacrilamida (AEMA)	Polysciences, Inc	24833-5
Trietilamina	Fisher Scientific	BP-616
Resina de intercambio aniónico IRN-78 en forma de hidróxido, malla 80	Sigma-Aldrich	10343-U
50Wx8, malla 200	Sigma-Aldrich	217514
Óxido de aluminio, malla ~150	Sigma-Aldrich	A1522	Tipo WN-6, Neutro, Grado de Actividad Super I
Nihidrina	Sigma-Aldrich	N4876	Se utilizó una solución de etanol de ninhidrina al 0,2% en la prueba
ácido 4-Ciano-4-(fenilcarbonotioltio)pentanoico	Sigma-Aldrich	722995	agente RAFT
4,4′-Azobis(ácido 4-cianovalerico)	Sigma-Aldrich	11588	Iniciador de polimerización
Éster de carboxifluoresceína succinimidil	Life Technologies	C1157
Erythrina Cristagalli perla de agarosa recubierta de lectina	Vector Laboratories	AL-1143
solvente
dH2O			Producido por el sistema de purificación de agua Barnstead, 18 megaohmio-cm
Isopropanol	Fisher Scientific	A461-4	ACS grado o superior
Metanol	Fisher Scientific	A454-4	ACS grado o mejor
Etanol absoluto	Fisher Scientific	BP2818-100	ACS grado o mejor
Dimetilformamida	Sigma-Aldrich	22705	ACS grado o mejor
Acetona	Fisher Scientific	A929-4	ACS grado o mejor
Equipment
Membrana de diálisis (MWCO: 3,500)	Spectrum Labs	132720
Estándar analítico de polietilenglicol	Sigma-Aldrich	O2393
Tubo Schlenk, 1 ml	Quark Glass		Personalizado
TSK-GEL G4000 PWxl	Tosoh Biociencia	8022	Se utiliza para el análisis GPC de los glicopolímeros
Empower 3 con el paquete GPC/SEC	Sistema
Waters Alliance	Waters Corporation		Equipado con detector de índice de refracción (Waters 2414) y detector de fluorescencia (Waters 2475)
Espectrómetro de RMN Avance III 800 MHz	Bruker Corporation
BX43	Olympus Corporation		Utilizado con el filtro FITC en la prueba de unión de glicopolímeros
Rotavap / Rotoevaporador	Heidolph
Fritted embudo de disco	Fisher Scientific	10-310-109
Liofilizador	Labconco
Portaobjetos de microscopio de inmunofluorescencia	Polysciences	18357-1
Revco Ultima Plus -80  ° C Congelador	Thermo Scientific
Bolsa de vacío de plástico y bomba manual	Ziploc
, accionamiento directo, Maxima C Plus	Fisher Scientific
vacuómetro	Sargent-Welch