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Artículo de método

Baja densidad primaria del hipocampo Neurona Cultura

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DOI:

10.3791/55000

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18 de abril de 2017

 ,  , 

* These authors contributed equally

En este artículo

Resumen

Este artículo describe el protocolo para el cultivo de baja densidad de neuronas del hipocampo primarias que crecen en cubreobjetos de vidrio invertida sobre una monocapa glial. Las capas de neuronas y de la glía están separados por perlas de cera de parafina. Las neuronas cultivadas por este método son adecuados para formación de imágenes ópticas de alta resolución y ensayos funcionales.

Resumen

La capacidad para sondar la estructura y fisiología de las células nerviosas individuales en cultivo es crucial para el estudio de la neurobiología, y permite la flexibilidad en la manipulación genética y química de las células individuales o redes definidas. Tal facilidad de manipulación es más sencilla en el sistema de cultivo reducido en comparación con el tejido cerebral intacta. Aunque existen muchos métodos para el aislamiento y crecimiento de estas neuronas primarias, cada uno tiene sus propias limitaciones. Este protocolo describe un método para el cultivo de baja densidad y de roedores de alta pureza neuronas del hipocampo embrionarias en cubreobjetos de vidrio, que luego son suspendidos sobre una monocapa de células gliales. Esta 'cultura sándwich' permite el crecimiento exclusiva a largo plazo de una población de neuronas permitiendo al mismo tiempo soporte trófico de la monocapa glial subyacente. Cuando las neuronas son de edad suficiente o nivel de madurez, los cubreobjetos neurona puede ser volteado de salida del plato glial y se usan en formación de imágenes o ensayos funcionales. Las neuronas grown por este método normalmente sobrevivir durante varias semanas y desarrollar amplias pérgolas, conexiones sinápticas, y propiedades de la red.

Introducción

El cerebro está organizado en intrincadas redes de neuronas. La contribución de las neuronas individuales a la actividad de red y la función cerebral puede ser estudiada por la alteración selectiva de su composición molecular y perturbación de sus propiedades fisiológicas. La manipulación genética y química de las neuronas individuales es posiblemente más fácil en neuronas cultivadas que en el tejido del cerebro intacto, sin el estorbo de la heterogeneidad y complejidad celular de este último. Las neuronas en cultivo desarrollan axonal bien definido y cenadores dendríticas y forman extensas conexiones sinápticas entre sí.

Mientras que la ....

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Protocolo

Todos los experimentos y protocolos que utilizan animales de laboratorio fueron aprobados por el comité de ética animal de la Universidad de Manitoba y se ajustaban a las directrices del Consejo Canadiense de los Animales.

1. Preparación de instrumentos, tampones y soluciones

  1. Esterilizar en autoclave todos los equipos de la disección, pipetas Pasteur de vidrio, puntas de pipeta, aparato de filtro, y agua desionizada.
  2. Preparar un 20% (w / v; 1,1 M) solución madre de glucosa en agua desionizada y se filtro a esterilizar. Almacenar a 4 ° C.
  3. Preparar una solución de piruvato de sodio 100 mM en agua desionizada y....

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Resultados

En este método "sandwich" de cultivo de células de nervio primario, las neuronas del hipocampo (Figura 3) crecen en una cama de células gliales (Figura 1) separadas por perlas de parafina (Figura 2). Esto asegura que las neuronas crezcan selectivamente en cubreobjetos de vidrio con la contaminación de células glial mínima, pero reciben soporte trófico adecuada de la glía que crecen en la placa de cultivo tisular. Típicamente, l.......

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Discusión

Mientras que el método "sandwich" de las neuronas que el cultivo haya sido bien descrito en otras partes 2, 11, hay varios pasos a lo largo del protocolo que son muy difíciles de describir en texto por sí solo, que puede conducir a la frustración para los investigadores que desean adoptarlo.

El método se puede dividir en tres grandes flujos de trabajo: cultura glial, preparación cubreobjetos y cultivo de neuronas y de mante.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Este trabajo fue apoyado por CIHR RP-142209 a TJS.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Instrumentos de disección
Micro tijeras de disecciónRobozRS-5910
Micro tijeras de disecciónRobozRS-5650
Micro tijeras de disecciónRobozRS-5605
Dumont Pinzas4RobozRS-5045
Dumont Pinzas (#PP)RobozRS-4950
NombreCompanyNúmero de catálogoComentarios
Preparación de tejidos
Tripsina (2.5%)Gibco15-090-046
Tripsina-EDTA (0.25%)Gibco25-200-072
Portafiltros Swinnex, 25  mmEMD MilliporeSX0002500Se utiliza como filtro de células. Ensamble primero con filtro y autoclave
IsofloranePharmaceutical Partners of Canada Inc.
HemocitómetroHausser Scientific1492
Grado 105 Pañuelo de limpieza de lentesGE Healthcare2105-841Utilizado como filtro de células. Montaje primero en portafiltros y autoclave
Pipetas Pasteur de vidrio con filtro de algodónVWR14672-412
HEPES (1 M)Gibco15-630-080
Solución salina equilibrada de Hank's sin calcio, magnesio y rojo fenol (HBSS, 10x)Gibco14-185-052
Pipetas Pasteur de vidrioVWR14672-380
Desoxirribonucleasa I del páncreas bovino (Dnasa)Sigma-AldrichDN25-100mg
Quemador bunsen de butanoWall-Lenk Mfg. Co.modelo 65
Eppendorf5810R
NameCompany>Número de catálogoComentarios
Cultivo de tejidos
Penicilina-estreptomicina (10,000 U/mL)Gibco15-140-122
Placa de Petri (100 mm)PlacaFisher FB0875712
(60 mm)Suero de
Gibco16050-122Se puede usar en lugar de BGS, pero cada lote debe probarse debido a la variación entre lotes. Se recomienda la inactivación por calor del suero.
Hidróxido de sodioFisher ScientificS318-1
Piruvato de sodioSigma-AldrichP2256
Medio esencial mínimo (MEM)Gibco11-095-080
Medio neurobasalGibco21-103-049
L-glutamina (200 mM)Gibco25-030-081
Suplemento GlutaMAXGibco35050061Se puede utilizar en lugar de L-glutamina en el medio NBG
Plato de cultivo (60 mm)Corning, Inc353002
Matraces de cultivo (75 cm^2)Greiner Bio-One658170
Citarabina (Ara-C)Sigma-AldrichC3350000
D-(+)-GlucosaSigma-AldrichG8270
Suero de crecimiento bovino (BGS)HyCloneSH3054103Se recomienda la inactivación por calor antes de su uso.
B27 Suplemento (50x)Gibco17-504-044
Dimetilsulfóxido (DMSO)Sigma-AldrichD8418-100ml
Viales criogénicosVWR89094-806
DL-2-Amino-5-fosfonopentanoico ácido (APV)Sigma-AldrichA5282
NameCompanyNúmero de catálogoComentarios
>Coverslip Preparación
sodio decahidratado (bórax)Sigma-AldrichB9876-1KG
Hidrobromuro de poli-L-lisinaSigma-AldrichP2636
Histoplast Cera de parafinaFisher22-900-700
Horno de convección por gravedadVWR89511-404Se utiliza para el método alternativo de limpieza de cubreobjetos discutido en el protocolo
Baño ultrasónico (sonicador)Fisher Scientific15337400
Anachemiaácido nítrico62786-460
Gradillas de tinción de cerámicaThomas Scientific8542E40Se utiliza para el método alternativo de limpieza de cubreobjetos discutido en el protocolo
CubreobjetosGlaswarenfabrik Karl Hecht  GmbH1001/18El fabricante es muy importante, ya que las neuronas no se adhieren bien al vidrio de menor calidad 
Ácido bóricoSigma-AldrichB0252
NombreCompany>Número de catálogo>Comentarios
>Miscelánea
Filtros de jeringa estérilesVWR28145-477Se utiliza con la jeringa BD para Jeringa de esterilización por filtro
 BD302832Se utiliza con filtros de jeringa estériles VWR para la esterilización por volutado
Microscopio invertidoFisherScientific
Tubos de centrífuga estéril cónicos de 15 mLThermoScientific339650
Tubos de centrífuga estériles cónicos de 50 mlThermoScientific339652
CP0406V2Centrífuga de Petri caballo Fisher FB0875713A Tetraborato de de Baño de agua 15-460-16Q Olympus CKX41

Referencias

  1. Banker, G. A., Cowan, W. M. Rat hippocampal neurons in dispersed cell culture. Brain Res. 126, 397-425 (1977).
  2. Kaech, S., Banker, G. Culturing hippocampal neurons. Nat Protoc. 1, 2406-2415 (2006).
  3. Adamantidis, A., et al.

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Reimpresiones y permisos

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