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Artículo de método

Ensayo novedoso para la nocicepción en frío

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DOI:

10.3791/55568

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3 de abril de 2017

En este artículo

Resumen

Aquí se demuestra un nuevo ensayo para estudiar la nocicepción frío en larvas de Drosophila. Este ensayo utiliza una sonda Peltier hecha a la medida capaz de aplicar un estímulo frío nocivo focal y da lugar a comportamientos específicos de frío cuantificables. Esta técnica permitirá además disección celular y molecular de la nocicepción frío.

Resumen

Cómo los organismos detectar y responder a las temperaturas nocivas aún es poco conocido. Además, los mecanismos de sensibilización de la maquinaria sensorial, tal como en los pacientes que experimentan la neuropatía periférica o sensibilización inducida por la lesión subyacentes, no están bien caracterizados. El modelo de Drosophila genéticamente tratables se ha utilizado para estudiar las células y los genes necesarios para la detección de calor nocivo, que ha dado múltiples genes conservados de interés. Poco se sabe sin embargo sobre las células y los receptores importantes para la detección frío nocivo. Aunque, Drosophila no sobrevive a la exposición prolongada a temperaturas frías (≤10 ºC), y evitará fresco, prefiriendo las temperaturas más cálidas en ensayos de preferencias de comportamiento, cómo se detectan y, posiblemente, evitar estímulos de frío nocivos sólo recientemente ha sido investigado.

Aquí se describen y caracterizan los primeros fríos nocivo (≤10 ºC) en el ensayo de conductaDrosophila. El uso de esta herramienta y el ensayo, se muestra un investigador cómo evaluar cualitativa y cuantitativamente comportamientos nociceptivos fríos. Esto puede hacerse en condiciones de cultivo normales / sanos, o presumiblemente en el contexto de una enfermedad, lesión o sensibilización. Además, este ensayo puede ser aplicado a larvas seleccionadas para los genotipos deseados, lo que podría impactar thermosensation, dolor, o sensibilización nociceptiva. Dado que el dolor es un proceso altamente conservada, utilizando este ensayo para estudiar más a fondo la nocicepción térmica es probable que recoger importante comprensión de los procesos de dolor en otras especies, incluyendo vertebrados.

Introducción

Drosophila ha demostrado ser de gran utilidad para la identificación de nuevos genes conservados y circuitos neuronales que subyacen a los comportamientos complejos. Moscas proporcionan un conjunto de herramientas genético sofisticado y un sistema nervioso simplificado, que permiten la manipulación precisa genética y neuronal 1, 2, 3, 4 para diseccionar las bases celulares y moleculares de la nocicepción 5, 6, 7. Las larvas son particularmente útiles para estos análisis, dado que los ensayos de comportamiento para el tacto suave 8, 9, 10, calor nocivo 11, 12, 13 y la sensación mecánica de estímulos nocivos 4, 11 ya se han establecido, y la cutícula larval transparente permite la obtención de imágenes en vivo o fijo de la epidermis y de las neuronas sensoriales subyacentes. Recientemente, un ensayo frío nocivo También se ha desarrollado 7, que se describe con más detalle aquí.

Usando una sonda fría bien,-cónica con punta, mostramos que exhiben las larvas de Drosophila un conjunto de comportamientos reactivos específicos de frío, distinto de comportamientos observados durante la locomoción normal, siguientes toque suave, o después de duras estímulos mecánico de temperatura o alta 7, 8, 11 . Los comportamientos específicos de frío incluyen un robusto contracción de todo el cuerpo (CT), un aumento de 45-90º de los segmentos posteriores (PR) y un aumento simultáneo de la parte anterior y posterior segmentos en forma de U (Estados Unidos). La prevalencia de estos comportamientos se incrementa con temperaturas decrecientes pero cada picos a sligeramente diferentes temperaturas frías. Trabajos recientes sugieren que las respuestas de TC están mediadas por diferentes neuronas sensoriales periféricas que los que responden a estímulos calor nocivo o mecánica dura 7.

Al igual que los nociceptores vertebrados, Drosophila dendríticas múltiple (MD), las neuronas sensoriales periféricas tienen estructuras dendríticas complejos que ramifican sobre la epidermis 1. neuronas MD están presentes en cada segmento del cuerpo de las larvas, la proyección de sus axones al cordón nervioso ventral 14. neuronas sensoriales MD están separados en cuatro clases diferentes (I-IV) en base a la morfología dendrítica y tienen diferentes funciones sensoriales 4, 9, 10, 15, 16, 17. Si bien se requieren neuronas clase IV para las respuestas de balanceo de la carrocería lateral de larvasa altas temperaturas o estímulos mecánicos dura 4, clase III se requieren las neuronas para las respuestas de suave tacto 9, 10 y no sólo se activan por frío, pero también son necesarios para las respuestas de comportamiento evocada por frío 7. Ambos de clase III y clase IV neuronas utilizan potenciales canales discretos receptor transitorio (TRP) para facilitar las respuestas de comportamiento a nociva 7, 11, 18 y no nocivo estímulos 9, 10, 17, 19. Además, la nocicepción larval se sensibiliza después de la lesión, en los niveles celular 20 y de comportamiento 12, 21.

El ensayo descrito aquí permite la quantification de cualquiera normal, o potencialmente alteró las respuestas de comportamiento a bajas temperaturas que van desde nocivo frío (≤ 10 ºC), enfriar inocuo (11-17 ºC), a temperatura ambiente (18-22 ºC). Las temperaturas frías utilizadas en este ensayo son capaces de activar directamente de clase III neuronas sensoriales, provocando robustos, los aumentos de calcio reproducibles y respuestas de comportamiento evocada por frío, que puede ser cualitativa y cuantitativamente analizadas 7. Este ensayo puede ser aplicado a larvas de virtualmente cualquier genotipo, así como a las larvas expuestas a diversas condiciones ambientales (nutrición alterado, lesión, agentes farmacológicos) para determinar los factores tanto genéticos como ambientales que afectan a la nocicepción frío, sensibilización nociceptiva o plasticidad nociceptivo. Dado que thermosensation es ubicuo en muchas especies, este ensayo proporciona una herramienta valiosa para el estudio de la nocicepción y puede descubrir nuevas dianas de genes o interacciones neuronales que mejorennuestra comprensión de la nocicepción vertebrados.

La sonda fría hecha a la medida (ver sonda fría, Tabla de Materiales) utiliza una temperatura de bucle cerrado controlado dispositivo Peltier, que enfría el tubo de aluminio y punta cónica a través de la conducción térmica. Un termistor está incorporado dentro de la punta cónica de aluminio informa de la temperatura en tiempo real sobre la unidad de control. Un disipador de calor y el ventilador están unidos al módulo termoeléctrico para regular la carga del efecto Peltier calor (Qc) de modo que el intervalo de temperatura deseado de (22-0 ° C) se puede lograr (véase la unidad de control térmico, Tabla de Materiales). El estímulo frío nocivo de la punta de sonda fría se aplica a mano a la línea media dorsal, a segmento (s) equidistante de los extremos anterior y posterior (aproximadamente segmento A4, véase la Figura 1A) de la larva. En respuesta a estímulos de frío, las larvas generalmente producen uno de los tres comportamientos evocados frías dentro de un 10 s de corte: un cuerpo llenocontracción (TC), un aumento de 45-90º segmentos anterior y posterior en forma de U (Estados Unidos), o un aumento de los segmentos posteriores (PR) (descritos en los resultados). Ninguno de estos comportamientos se llevan a cabo durante la locomoción peristáltica normal o comportamiento de forrajeo. Estos comportamientos también son distintas de las respuestas táctiles suaves y la respuesta aversiva rodadura a alta temperatura o estímulos mecánicos nocivos.

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Protocolo

1. Preparación de las larvas

  1. Elevar acciones o cruces genéticos en una incubadora a 25 ºC.
    1. Si el cultivo de una cruz, utilizar 20-25 hembras vírgenes y 15-20 varones por cada vial que contiene medios de comunicación regular de mosca harina de maíz. Permitir que las hembras ponen huevos a aproximadamente 48 h antes de transferirlos a un nuevo vial de alimentos.
  2. 4-5 días después de la puesta de huevos, recoger 3 rd instar larvas del genotipo deseado por chorros suavemente una corriente de agua en la comida blanda y larvas, y verter el contenido en una, placa de Petri limpia de tamaño mediano (60 mm x 15 mm).
  3. A continuación, ordenar suavemente larvas por tamaño usando fórceps o un pincel para impedir más grande "errante 3 rd instar" o larvas enfermizo pequeña de ser probado. larvas de Descarte contiene ningún marcadores genéticos no deseadas o equilibradores.
  4. Tener un compañero de platos de etiquetas miembro del laboratorio o recipientes donde se colocará larvas ordenados de modo que el experimentador puede ser "ciegos" a la experimental condición o genotipo de las larvas en su caso. El experimentador puede aplicar etiquetas decodificadas a los datos recogidos después de que el experimento utilizando una clave generada por un laboratorio-miembro.
  5. El uso de un scoopula, transferir una cantidad tamaño de una moneda de alimentos frescos en una (35 mm x 10 mm o 60 mm x 15 mm) limpio, placa de Petri etiquetada lleno hasta la mitad con agua a temperatura ambiente.
  6. mover suavemente el larvas ordenados sobre el alimento (para evitar la inanición o desecación si se anticipa pruebas que tomar más de 20 min) usando fórceps o pincel.

2. Fría ensayo de sondas

  1. A su vez en la unidad de sonda fría permitiendo unos pocos minutos para que se enfríe a la temperatura deseada. Si el ajuste a temperaturas más bajas, la condensación es probable que formar a lo largo de la sonda.
  2. Limpiar cualquier exceso de humedad con un laboratorio de toallita antes de la aplicación a la larva. Cuando no está en uso inmediato, el lugar de aislamiento tapa de la sonda a la vez aislar y mantener la punta limpia y evitar daños.
  3. Colocar un 3 rd instar larva mediados sobre una pieza delgada de vinilo movible oscuro (típicamente, utilice un pequeño trozo cortado de un aglutinante notebook) bajo un microscopio de campo brillante. Las ayudas de vinilo negros en la visualización de contraste y en mover la larva sin tocarlo para alinearlo correctamente con la sonda.
  4. Ajuste el microscopio (véase la Tabla de Materiales) y la unidad de luz (véase la Tabla de Materiales) a brillo medio (50-75% de brillo max) para proporcionar contraste y evitar que la larva se seque demasiado rápido.
  5. Descarte cualquier larva que no exhiben primera locomoción peristáltica normal, ya que podrían confundir los resultados. La larva debe estar húmedo de la placa de Petri de agua de lo contrario la larva se adherirá a la de vinilo inhibir la locomoción normal. El agua no debe formar un charco alrededor de la larva.
  6. Avanzar en la sonda con la mano hacia la larva en un ángulo de 90º con respecto al eje anteroposterior del cuerpo, utilizando el vinilo para mover la larva en corposición rect (véase la Figura 1A).
  7. Oriente la punta de la sonda para sentar suavemente por la superficie dorsal media de la larva con la sonda en un ángulo de aproximadamente 45º a la platina del microscopio.
  8. Tras el contacto de la sonda, iniciar un temporizador de laboratorio. Aplicar suficiente presión hacia abajo para sangrar ligeramente la superficie de la cutícula larval mientras que todavía permite adelante o movimiento hacia atrás.
  9. Mantener la sonda en su lugar durante un máximo de 10 s o hasta que se observó una respuesta de comportamiento evocada por el frío - lo que ocurra primero. A continuación, retire la sonda.
  10. Registrar la respuesta conductual observada y la latencia de respuesta. Las larvas que no responde dentro de 10 s se consideran "no respondedores". Latencia también se puede grabar para los respondedores y se usa para medir los cambios en respuesta robustez / amplitud.
  11. Descartar larva y preparar el siguiente.
  12. Repetir los pasos 2.3 a 2.11 hasta que se alcanza el número deseado de larvas de prueba (tres conjuntos de n = 20-40 larvas fueron used aquí).

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Resultados

Drosophila larvas se mueven con un movimiento peristáltico que incluye pausas ocasionales, cabeza vueltas, y los cambios de dirección 22. En respuesta a la aplicación focal de un estímulo nocivo frío sin embargo, las larvas presentan un conjunto de comportamientos únicos, a diferencia del rodillo lateral aversivo al calor nocivo y estímulos mecánicos. Estos comportamientos también son diferentes de las respuestas al toque suave 8,

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Discusión

El ensayo descrito aquí se puede utilizar para evaluar cualitativa y cuantitativamente la nocicepción o sensibilización nociceptiva en larvas de varios fondos genéticos, influencias ambientales, y / o condiciones de avería inducida. Dado que este ensayo permite la aplicación focal de un estímulo frío, con esta herramienta se puede evaluar la función de un subconjunto de neuronas sensoriales periféricas específicamente en respuesta a las temperaturas frías. Curiosamente, estos comportamientos evocados fríos parecen utili...

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Divulgaciones

Una solicitud de patente de Estados Unidos (CL) está pendiente en el diseño de la sonda fría. Información adicional sobre los detalles de los números de pieza sonda fría y la construcción, así como la consulta adicional sobre el diseño de la herramienta se puede proporcionar a petición.

Agradecimientos

Agradecemos a Sarah Wu y Camille Graham para el desarrollo de las primeras fases del ensayo enfriado sonda, el Centro de Bloomington Drosophila para poblaciones de moscas, y los miembros del laboratorio Galko para la lectura crítica del manuscrito. Este trabajo fue apoyado por el NIH NRSA (NIH F31NS083306) a HNT, y por el NIH R01NS069828, R21NS087360 y una Universidad de Texas MD Anderson Clark Fellowship en Investigación Básica a MJG.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Sonda de fríoPro-Dev EngineeringHecho a medida bajo demanda Los números depieza y los detalles de construcción se pueden proporcionar a pedido
Unidad de control térmicoTecnología TEGabinete personalizadonúmeros de pieza y los detalles de construcción se pueden proporcionar a pedido
Microscopio Zeiss Stemi 2000ZeissNT55-605
Fiber-Lite MI-150 Iluminadorde alta intensidadIndustrias Dolan-Jenner.A20500
Schott Doble cuello de cisne de 23 pulgadas Guía de luz de fibra ópticaSchott North America, Inc.Pinza Schott A08575
FSTFS-1670Se utiliza para clasificar y manipular larvas. Asegúrese de alisar y desafilar ligeramente las puntas de las pinzas para reducir el riesgo de perforar o lesionar accidentalmente las larvas
PincelDick Blick Art Materials06762-1002Se utiliza para clasificar y manipular larvas. Es útil si el pincel está húmedo durante el uso.
35 mm x 10 mm Placa de Petri de poliestirenoFalcon351008
60mm x 10 mm Placa de Petri de poliestirenoFalcon351007
Pieza de vinilo negro (al menos 2 pulgadas x 2 pulgadas)Se utiliza para proporcionar contraste y orientar las larvas a la sonda fría
Fisherbrand Scoopula EspátulaFisher Scientific14-357QSe utiliza para mover alimentos
Kimtech Science KimwipesFisher Scientific06-666ASe utiliza para secar las larvas y sondear en frío si hay exceso de humedad
Los

Referencias

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