Artículo de método

Planta promotor análisis: Identificación y caracterización del promotor de la raíz específica de nódulo en el frijol común

DOI:

10.3791/56140

⸱

23 de diciembre de 2017

 ,  ,  ,  , 
1Ciencias Agrogenómicas, Escuela Nacional de Estudios Superiores Unidad León- Universidad Nacional Autónoma de México (UNAM), 2Instituto de Biología, Universidad Nacional Autónoma de México (UNAM), Ciudad Universitaria, Coyoacan

* These authors contributed equally

En este artículo

Resumen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Análisis de expresión del promotor son cruciales para mejorar la comprensión de la regulación de los genes y la expresión espacio-temporal de genes diana. Adjunto presentamos un protocolo para identificar, aislar y clonar un promotor de la planta. Además, se describe la caracterización del promotor específico de nódulos en las raíces pilosas de frijol común.

Resumen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Las aguas arriba secuencias de codificación de secuencias del gene se llaman como secuencias de promotor. Estudiar los patrones de expresión de los promotores son muy importantes en la comprensión de la regulación génica y patrones espacio-temporales de expresión de genes diana. Por otro lado, también es fundamental para establecer instrumentos de evaluación del promotor y técnicas de transformación genética que son rápidos, eficientes y reproducibles. En este estudio, investigamos el patrón spatiotemporal de la expresión del promotor de creación (NIN) nódulo específico de simbiosis rizobios de Phaseolus vulgaris en las raíces pilosas transgénicos. Utilizando bases de datos de genoma vegetal y herramientas de análisis se identificaron, aislado y clonado el promotor NIN de p. vulgaris en una fusión transcripcional a la quimérica reportero GUS-enhanced::GFP de β-glucuronidasa (GUS). Además, este protocolo describe un rápido y versátil sistema de transformación genética en p. vulgaris usando Agrobacterium rhizogenes inducida por raíces pilosas. Este sistema genera raíces pilosas de ≥ 2 cm en 10 a 12 días después de la transformación. A continuación, se evaluó la expresión espacio-temporal de promotor de NIN en las raíces pilosas Rhizobium inoculados a intervalos periódicos de post-inoculación. Nuestros resultados descritas la actividad de GUS muestran que el promotor de NIN fue activado durante el proceso de nodulación. Juntos, el presente Protocolo muestra cómo identificar, aislar, clonar y caracterizar un promotor de la planta en las raíces pilosas de frijol común. Además, este protocolo es fácil de usar en laboratorios no especializados.

Introducción

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Promotores son herramientas biológicas moleculares importantes que desempeñan un papel crucial en la comprensión de la regulación de la expresión de genes de interés. Promotores son secuencias de ADN ubicadas aguas arriba de la traducción codón de la iniciación del gene de secuencias y llevan la información reguladora central de genes; por lo tanto, su correcta anotación y caracterización son vitales para entender la función del gene. Dependiendo de los patrones de expresión, promotores de la planta se clasifican como constitutivos, específicos de tejido, o específicos de etapa de desarrollo y inducible1. Avances en tecnologías transcriptómicos, mejoras en el modelado de la computadora y la disponibilidad de un número creciente de secuencias del genoma de diferentes especies de plantas han facilitado la predicción a gran escala de promotor secuencias2.

Por otro lado, también es fundamental para establecer instrumentos de evaluación del promotor y técnicas de transformación genética que son rápidos, eficientes y reproducibles. A diferencia de las otras plantas del modelo, la caracterización funcional de genes de leguminosa (p. vulgaris) frijol común es impedida principalmente debido a la naturaleza recalcitrante de Phaseolus SP. para la transformación genética estable. Transformación transitoria sistemas sirven como una alternativa para la caracterización funcional de genes rápida estudios3. En la investigación de la simbiosis de leguminosas, la interacción entre la planta huésped de leguminosas y rizobios bacteria es uno de los sistemas modelo más manejables para el análisis funcional de genes específicos de nódulo y promotor estudios. Caracterizado hasta el momento, han sido varios promotores de leguminosas relacionadas con estas simbiosis, viz, Medicago truncatula PT44, SWEET115, Lotus japonicus Cyclops, UBQ6, VAG17, glicina max PT5 8, Exo70J9, p. vulgaris RbohB10,11,12, TRE113, PI3K14, TOR15, etcetera. CIS elementos influyen directamente en Regulación génica. El factor de transcripción ENBP1A se une a una región reguladora de Cis (−692 bp) de nodC temprana ENOD12 Vf, y esto facilita la expresión de un gen reportero en primordios de nódulo de Vicia faba16. Reemplazo de regiones reguladoras Cis (−161 para −48 bp) del promotor específico de nódulo melocotonero GLB3 con la heteróloga truncado promotores δ-p35S y δ-pNOS, resultó en una pérdida de especificidad del nódulo y disminución de la actividad de promotor17 .

Informes anteriores indican que el factor de transcripción NIN es necesario para el inicio de la infección por rizobios en las células de pelo de la raíz y también es esencial para la organogénesis del nódulo en L. japonicus18. En el presente estudio, se describe un protocolo para la identificación, aislamiento, clonación y caracterización del promotor específico de nódulos en las raíces pilosas de frijol común. Para lograr esto, seleccionamos promotora rizobios del NIN de simbiosis específica de p. vulgaris y reproducido en una fusión transcripcional a la quimérica reportero GUS-enhanced::GFP. Además, este protocolo describe un rápido y versátil sistema de transformación genética de p. vulgaris con a. rhizogenes inducida por raíces pilosas. Este sistema genera raíces pilosas en menos de 2 semanas después de la transformación. Finalmente, se evaluó la expresión espacio-temporal de promotor de NIN en nódulos radiculares de rizobios colonizados por tinción GUS.

El procedimiento descrito aquí puede ser útil no sólo para el estudio de la nodulación y micorrización11 de plantas leguminosas, sino también para el estudio de patrones de expresión del promotor en raíces19. Además, este protocolo es fácil de usar en laboratorios no especializados.

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Protocolo

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. identificación, aislamiento y clonación de P. Vulgaris NIN promotor

  1. Identificar la secuencia del promotor del gen de interés. Hay varias bases de datos del genoma y las herramientas de análisis disponibles para las plantas tales como Phytozome, plantas de Ensembl, NCBI, etc. A leguminosas promotor p. vulgaris NIN (PvNIN; Phvul.009G115800) fue utilizado en este estudio20.
  2. Diseño de oligos para la puerta de enlace o tradicional enzima de restricción dependiendo del sistema de vectores de clonación utilizados (figura 1A).
    Nota: Estándar (25-35 bp), desalado iniciadores trabajan bien. Secuencias de oligo Reverse que bordean entre el promotor y el gen son recomendables.
  3. Amplificar la región promotora de PvNIN (o región del promotor del gen de interés) de recién aislados de p. vulgaris DNA genomic usando el promotor específico oligo. Uso de una polimerasa de alta fidelidad con las siguientes condiciones PCR: 95 ° C por 5 min; 30 ciclos (95 ° C por 30 s, 55 ° C por 30 s, 72 ° C por 1 min); y 72 ° C durante 5 minutos.
  4. El fragmento amplificado en gel de agarosa al 1% a los 60 V en una bandeja de gel de 7 x 10 cm y eluir el amplicón correspondiente (700 bp, figura 1B) y el clon en el vector D/pENTR-TOPO según las instrucciones del fabricante.
  5. Transformar 2 μl de la reacción en competente Escherichia coli las células utilizando las instrucciones del fabricante y placa 150 μL de la mezcla de transformación el hermano de la Lisogenia (LB) suplementado con kanamicina 50 mg/L (Kan50). Crecen las células plateadas a 37 ° C durante la noche.
  6. Toma 3-6 colonias y cultura que durante la noche en medio LB con Kan50. Plásmido ADN mediante el método de elección de aislar y analizar el plásmido por PCR con los oligos M13 específico de vector. Para PCR, uso 100 ng de plásmido, 12:03 de oligos, 10 X buffer PCR 0,5 U de Taq ADN polimerasa y 10 mM dNTPs.
  7. Utilice las siguientes condiciones de amplificación de PCR; 95 ° C por 3 min; 30 ciclos (95 ° C por 30 s, 58 ° C por 30 s, 72 ° C durante 75 s); y 72 ° C por 7 minutos visualizar los productos PCR en gel de agarosa al 1%. Asegúrese de que las inserciones correctas tienen una banda en 1.024 bp y vectores sin voluntad insertos una banda 324 de bp (figura 1).
  8. Realizar la reacción de la LR entre un vector de entrada (pENTR/D-TOPO-PvNIN) y destino de vectores pBGWFS7.021 utilizando una mezcla de enzima comercial según las instrucciones del fabricante.
  9. Transformar 2 μl de reacción de LR en competentes de e. coli las células utilizando técnicas estándar como se describe en las instrucciones y placa 150 μL de mezcla de transformación LB suplementado con 100 mg/L de espectinomicina (Spe100). Crecen las células plateadas a 37 ° C durante la noche.
  10. Recoger aproximadamente 5 colonias y de la cultura les durante la noche en medio LB con Spe100. El plásmido de ADN usando un método de elección de aislar y analizar el plásmido por PCR con los oligos específicos del promotor.
  11. Utilizar las condiciones de la PCR en el paso 1.3. Visualizar los productos PCR en gel de agarosa al 1% para confirmar la amplificación. Amplicons son 700 bp.
  12. La secuencia del plásmido positivas pBGWFS7.0/PvNIN::GUS-GFP (figura 1) con los oligos específicos del promotor para verificar la autenticidad de la pieza de inserción.
  13. Transformar la plásmidos en a. rhizogenes cepa K599 (sin embargo, se pueden utilizar cualquier otra de las cepas de a. rhizogenes ). Añadir 2 μl de la preparación de plásmido a 50 μl de células de espectro y electroporate en una cubeta de 1 mm con la configuración siguiente: 1,8 kV, 25 μF y 200 Ω.
  14. Recupera las células en ~ 500 μl de medio SOC y agitar a 28 ° C por 2 h. placa LB-Spe100 y crecer a 28 ° C durante 2 días.
  15. Proyección de la Colonia como se menciona en el paso 1.7 y las condiciones de la PCR como en el paso 1.3. Hacer acciones de glicerol de clones positivos y almacenarlas a-80 ° C.
  16. Uso de a. rhizogenes cultura albergando vector pBGWFS7.0 vacío como control negativo.

2. A. Rhizogenes transforman melenudas raíces de frijol común

  1. Esterilizar las semillas de frijol (p. vulgaris variedad Negro Jamapa) (aproximadamente 20) en 50 mL de etanol al 96% durante 1 min y descartar el etanol; Añada 50 mL de lejía (hipoclorito sódico) de 20% por 10 min, con una mezcla constante en campana de flujo laminar. Quitar el cloro y lavar en exceso agua estéril 3 veces.
    Nota: Otros cultivares de p. vulgaris pueden utilizarse para la inducción de raíz melenuda.
  2. Germinar las semillas estériles en los papeles de filtro estériles humedecidos con Broughton & Dilworth (B & D) solución22 (tabla 1) por 2 días en la oscuridad a 28 ° C.
  3. El día antes de transformación preparar lo siguiente:
    1. Raya a 150 μL del cultivo de a. rhizogenes albergando el vector binario (preparado en los pasos 1.13 y 1.14) en Spe100 LB sólido y crece a 28 ° C durante la noche.
    2. Llene un tubo de 15 mL con B & solución D y volver a colocar la caperuza a rosca con doble capa de aluminio. Este montaje en un tubo de vidrio de 22 cm que contiene 10 mL de B & D solución (figura 2) y autoclave.
  4. En el día de transformación, ensamble los siguientes materiales estériles en campana de flujo laminar: germinaron las semillas en el paso 2.2, placa de cultivo de paso 2.3.1, tubos de paso 2.3.2, agua bidestilada estéril (10 mL), pipetas y puntas de pipeta, pinzas estériles, y jeringas de 3 mL.
  5. Utilice una punta de 200 μL doblada para raspar las células de a. rhizogenes de la placa en un tubo de microcentrífuga y resuspender en 1 mL de agua estéril doble. Del mismo modo, preparar a las células del control vectorial por separado.
    1. Mezclar las células suavemente para resuspender. No no agitar con vortex.
  6. Hacer un agujero de 3 mm en el papel de aluminio de los tubos de paso 2.3.2 utilizando una pipeta estéril.
  7. Recoger las células (ya sea promotor o vector control) de paso 2.5 con la jeringa y pinchar ligeramente los hypocotyls de semillas germinadas con la punta de la aguja (figura 2).
    Nota: Asegúrese de que la aguja penetra en el tejido vascular (4 - 6 veces) e inyectar pequeñas (~ 5 μl) gotas de las células de la herida en diferentes posiciones alrededor del hipocótilo.
  8. Inserte con cuidado las raíces de las plántulas inyectadas en el agujero de 3 mm de tubo de 15 mL que contiene el B & solución D. Volver la configuración entera en 22 mL tubos de cristal y junta para mantener la humedad.
  9. Incubar los tubos en una cámara de crecimiento mantenida a 28 ° C con 16 h de luz: 8 h fotoperíodo oscuro.
    Notas: 3-4 días después de la incubación, las plantas crecen en el borde de los tubos de vidrio de 22 mL.
En esta etapa, retire las tapas y selle el borde con parafilm alrededor del tallo como se muestra en la figura 2I.
  • Observar el callo en los sitios de herida al 5-7 días y encontrar ~ raíces peludas 2 cm por 10-12 días después de la transformación.
    Nota: Es importante mantener la B & solución D constantemente en tubos de plástico y vidrio.
  • Después de 2 semanas, retire la raíz primaria cortando el tallo 2 cm por debajo de las raíces pilosas y las raíces primarias del trasplante en macetas con vermiculita estéril. Mantener las plantas en una cámara de crecimiento (16 h luz: 8 h oscuro a 28 ° C) y regar con B & solución D.

    • 3. promotor análisis: NIN promotor expresión en rizobios nódulos de frijol común

    1. Para la inducción de nódulos radiculares, inocular Rhizobium tropici o Rhizobium etli (que son compatibles con el frijol común) en 100 mL de medio PY (peptona 0.5 g, extracto de levadura 0,3 g) suplementado con 700 mM de CaCl2 y 20 mg mL−1 ácido nalidíxico. Incubar a 30 ° C por 24 h con agitación a 300 rpm.
      Nota: Cualquier antibióticos específicos podrían utilizarse en el caso de transgénicos Rhizobium.
    2. Sedimenten las células en una centrifugadora durante 3 min a 2.800 x g a temperatura ambiente y resuspender en 10 mL de 10 mM de MgSO4. Ajustar la do de las células a 0.6 a OD600 por dilución con 10 mM MgSO4.
    3. Inocular 1-2 mL de cultivo (preparado en el paso 3.2) por planta (promotor y vector control) para inducir el crecimiento de nódulos en las raíces pilosas. Regar las plantas con B & solución D con nitrógeno limitada (2 mM KNO3) promover la nodulación.
    4. Dependiendo de la necesidad experimental, recoger las raíces pilosas en diferentes puntos temporales. Recogemos muestras para el estudio de hilos de infección entre 3-5 días post inoculación (dpi).
      Nota: Nódulo Primordial y pequeños nódulos pueden ser estudiados en 6-9 PPP y dpi 10-12 días, respectivamente. Por último, madurados y funcionales de los nódulos pueden ser estudiados en 14-21 dpi y nódulos senescentes en > 28 dpi.
    5. Proceso de los raíz, nódulos para la actividad de los genes del reportero (GUS o GFP). Analizar la actividad de GUS según el protocolo descrito por Jefferson23. Observar GFP bajo el microscopio de fluorescencia. Excitar la fluorescencia de GFP con un láser de ion argón azul (488 nm) y recoger la fluorescencia emitida de 510 a 540 nm.

    Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

    Resultados

    $$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

    El objetivo de este estudio fue evaluar el patrón de expresión espacio-temporal de nódulo específico NIN de p. vulgaris . Para ello, se seleccionó una 700 bp región corriente arriba del codón de iniciación de traducción del gen NIN y un conjunto de oligos fue diseñado como se muestra en la figura 1A. Utilizando una polimerasa de alta fidelidad, el fragmento de promotor de NIN fue amplificado, aislado (figura 1B)...

    Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

    Discusión

    $$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

    Durante el análisis funcional de genes, el estudio de patrones de expresión genética desempeña un papel crucial en la comprensión de la regulación espacial y temporal de los genes en vivo. Es un método bien conocido para estudiar patrones de expresión del gen a clonar la región del promotor del gen de interés, río arriba a genes del reportero como genes marcador fluorescente (GFP, RFP, etc.) o β-glucuronidasa. En este documento, hemos seleccionado una región del promotor de la raíz nódulo simbiosis (RNS...

    Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

    Divulgaciones

    $$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

    Los autores no tienen nada que revelar.

    Agradecimientos

    $$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

    Este trabajo fue parcialmente financiado por la Dirección General de Asuntos del Personal Académico, DGAPA/PAPIIT-UNAM (no de la concesión. IN219916 M.L y IA205117 a M-K. A) y el Consejo Nacional de Ciencia y Tecnològia (beca CONACYT no. 240614 a M.L.).

    Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

    Materiales

    Lista de materiales utilizados en este artículo
    NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
    Primers para el ensayo qRT-PCR
    pNIN ForwardCACC ATA GCT CCC CAA AAT GGT AT
    pNIN ReverseCAT CTT CCT TCC ACT AAC TAA C
    M13 ForwardGTA AAA CGA CGG CCA G
    M13 ReverseCAG GAA ACA GCT ATG AC
    strong>NameCompanyNúmero de catálogoComments
    REAGENTS
    ENTR/D-TOPO Cloning KitInvitrogenK243520
    Gateway LR Clonase II Enzyme Mix Invitrogen11791100
    pBGWFS7.0 Biología de sistemas vegetaleshttps://gateway.psb.ugent.be/vector/show/pBGWFS7/search/index/
    Platinum Taq ADN polimerasaThermoFisher Scientific10966018
    DNeasy Plant Mini KitQiagen69104
    PureLink Kit de extracción rápida de gelThermoFisher ScientificK210012
    Platinum Pfx DNA PolymerasaInvitrogen
    Biología Molecular Certificada AgarosaBio-Rad1613102
    One Shot TOP10 E. coli químicamente competenteInvitrogenC404006
    NaclSigma-AldrichS7653
    TriptonaSigma-AldrichT7293-250G
    Extracto de levaduraSigma-AldrichY1625-250G
    Agar bacteriológicoSigma-AldrichA5306-1KG
    Sulfato de kanamicinaSigma-Aldrich60615-25G
    Sulfato de espectinomicinaSigma-AldrichPHR1441
    Alcohol etílicoSigma-AldrichE7023
    Peptona bacteriológicaSigma-AldrichP0556
    Cloruro decalcioSigma-AldrichC1016
    Ácido nalidíxicoSigma-AldrichN8878
    Sulfato de magnesioSigma-AldrichM7506
    Solución de carga de gelSigma-AldrichG7654
    Name>CompanyNúmero de catálogoComments
    >EQUIPO
    TermocicladorVeriti Termociclador4375786
    Sigma SigmaSigma 1-14K
    Gel unidad de documentaciónCarestreamGel Logic 212 PRO
    MaxQ SHKE6000 6000 Incubadora de agitación - 115VACThermo scientificEW-51708-70
    Cámara de crecimiento vegetalMRCPGI-550RH
    Cabinata de flujo de aire laminar HorizantalLumistellLH-120
    Microscopio fluorescenteLeicaDM4500 B
    Petridishsym laboratorios90X15
    Hoja de bisturíFisher scientific53223
    Centrífuga cónica Falcon 15mL TubosFisher scientific14-959-53A
    22 mL tubos de vidrioThomas scientific45048-16150
    <11708013

    Referencias

    $$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
    1. Hernández-Garcia, C. M., Finer, J. J. Identification and validation of promoters and cis-actingregulatory elements. Plant Science. 217-218, 109-119 (2014).
    2. Dhanapal, A. P., Govindaraj, M. Unlimited Thirst for Genome Sequencing, Data Interpretation, and Database Usage in Genomic Era: The Road towards Fast-Track Crop Plant Improvement. Genetics Research International. , 684321(2015).
    3. Nanjareddy, N., Arthikala, M. K., Blanco, L., Arellano, E. S., Lara, M. Protoplast isolation, transient transformation of leaf mesophyll protoplasts and improved Agrobacterium-mediated leaf disc infiltration of Phaseolus vulgaris: Tools for rapid gene expression analysis. BMC Biotechnol. 16 (1), 53(2016).
    4. Pumplin, N., Zhang, X., Noar, R. D., Harrison, M. J. Polar localization of a symbiosis-specific phosphate transporter is mediated by a transient reorientation of secretion. Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (11), E665-E672 (2012).
    5. Kryvoruchko, I. S., et al. MtSWEET11, a Nodule-Specific Sucrose Transporter of Medicago truncatula. Plant Physiol. 171 (1), 554-565 (2016).
    6. Suzaki, T., Yano, K., Ito, M., Umehara, Y., Suganuma, N., Kawaguchi, M. Positive and negative regulation of cortical cell division during root nodule development in Lotus japonicus is accompanied by auxin response. Development. 139 (21), 3997-4006 (2012).
    7. Suzaki, T., et al. Endoreduplication-mediated initiation of symbiotic organ development in Lotus japonicus. Development. 141 (12), 2441-2445 (2014).
    8. Qin, L., et al. The high-affinity phosphate transporter GmPT5 regulates phosphate transport to nodules and nodulation in soybean. Plant Physiol. 159 (4), 1634-1643 (2012).
    9. Wang, Z., Panfeng, L., Yan, Y., Chi, Y., Fan, B., Chen, Z. Expression and Functional Analysis of a Novel Group of Legume-specific WRKY and Exo70 Protein Variants from Soybean. Sci Rep. 6, 32090(2016).
    10. Montiel, J., et al. A Phaseolus vulgaris NADPH oxidase gene is required for root infection by Rhizobia. Plant Cell Physiol. 53 (10), 1751-1767 (2012).
    11. Arthikala, M. K., et al. PvRbohB negatively regulates Rhizophagus irregularis colonization in Phaseolus vulgaris. Plant Cell Physiol. 54 (8), 1391-1402 (2013).
    12. Arthikala, M. K., Sánchez-López, R., Nava, N., Santana, O., Cárdenas, L., Quinto, C. RbohB a Phaseolus vulgaris NADPH oxidase gene, enhances symbiosome number, bacteroid size, and nitrogen fixation in nodules and impairs mycorrhizal colonization. New Phytol. 202 (3), 886-900 (2014).
    13. Barraza, A., et al. Down-regulation of PvTRE1 enhances nodule biomass and bacteroid number in the common bean. New Phytol. 197 (1), 194-206 (2013).
    14. Estrada-Navarrete, G., et al. An autophagy-related kinase is essential for the symbiotic relationship between Phaseolus vulgaris and both rhizobia and arbuscular mycorrhizal fungi. Plant Cell. 28 (9), 2326-2341 (2016).
    15. Nanjareddy, K., et al. A Legume TOR Protein Kinase Regulates Rhizobium Symbiosis and Is Essential for Infection and Nodule Development. Plant Physiol. 172 (3), 2002-2020 (2016).
    16. Frühling, M., Schröder, G., Hohnjec, N., Pühler, A., Perlick, A. M., Küster, H. The promoter of the Vicia faba L. gene VfEnod12 encoding an early nodulin is active in cortical cells and nodule primordia of transgenic hairy roots of Vicia hirsuta as well as in the prefixing zone II of mature transgenic V. hirsuta root nodules. Plant Science. 160 (1), 67-75 (2000).
    17. Szabados, L., Ratet, P., Grunenberg, B., de Bruijn, F. J. Functional analysis of the Sesbania rostrata leghemoglobin glb3 gene 5'-upstream region in transgenic Lotus corniculatus and Nicotiana tabacum plants. Plant Cell Online. 2 (10), 973-986 (1990).
    18. Madsen, L. H., Tirichine, L., Jurkiewicz, A., Sullivan, J. T., Heckmann, A. B., Bek, A. S., Ronson, C. W., James, E. K., Stougaard, J. The molecular network governing nodule organogenesis and infection in the model legume Lotus japonicus. Nat Commun. 12, 1-10 (2010).
    19. Montiel, J., Arthikala, M. K., Quinto, C. Phaseolus vulgaris RbohB functions in lateral root development. Plant Signal Behav. 8 (1), 1-3 (2013).
    20. Nanjareddy, K., Arthikala, M. K., Gómez, B. M., Blanco, L., Lara, M. Differentially expressed genes in mycorrhized and nodulated roots of common bean are associated with defense, cell wall architecture, N metabolism, and P metabolism. PLoS ONE. 12 (8), e0182328(2017).
    21. Karimi, M., Inzé, D., Depicker, A. Gateway vectors for Agrobacterium-mediated plant transformation. Trends Plant Sci. 7 (5), 193-195 (2002).
    22. Broughton, W. J., Dilworth, M. J. Control of leghemoglobin synthesis in snake beans. Biochem J. 125 (4), 1075-1080 (1971).
    23. Jefferson, R. A. Assaying chimeric genes in plants, the GUS gene fusion system. Plant Mol Biol Rep. 5 (4), 387-405 (1987).
    24. Cho, H. J., Farrand, S. K., Noel, G. R., Widholm, J. M. High-efficiency induction of soybean hairy roots and propagation of the soybean cyst nematode. Planta. 210 (2), 195-204 (2000).
    25. Deng, Y., Mao, G., Stutz, W., Yu, O. Generation of Composite Plants in Medicago truncatula used for Nodulation Assays. J. Vis. Exp. (49), e2633(2011).
    26. Kumagai, H., Kouchi, H. Gene silencing by expression of hairpin RNA in Lotus japonicus roots and root nodules. Mol Plant Microbe Interact. 16 (8), 663-668 (2003).
    27. Okamoto, S., Yoro, E., Suzaki, T., Kawaguchi, M. Hairy Root Transformation in Lotus japonicus. Bio-protocol. 3 (12), e795(2013).
    28. Jacobs, T. B., Martin, G. B. High-throughput CRISPR Vector Construction and Characterization of DNA Modifications by Generation of Tomato Hairy Roots. J. Vis. Exp. (110), e53843(2016).
    29. Estrada-Navarrete, G., et al. Agrobacterium rhizogenes-transformation of the Phaseolus spp.: a tool for functional genomics. Mol Plant Microbe Interact. 19 (12), 1385-1393 (2006).

    Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

    Reimpresiones y permisos

    Solicitar permiso para reutilizar el texto o las figuras de este artículo de JoVE

    Solicitar permiso

    Etiquetas

    Identificaci n del promotor NINtransformaci n de ra ces vellosasAgrobacterium rhizogenesensayo del gen reportero GUSclonaci n de promotoresPhaseolus vulgarisexpresi n espaciotemporaltransformaci n gen tica

    Artículos relacionados