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Artículo de método

Análisis precisos, alto rendimiento de crecimiento bacteriano

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DOI:

10.3791/56197

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19 de septiembre de 2017

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En este artículo

Resumen

Evaluación cuantitativa del crecimiento bacteriano es fundamental para entender la fisiología microbiana como un fenómeno de nivel de sistemas. Se introduce un protocolo de manipulación experimental y un enfoque analítico, permitiendo análisis precisos, alto rendimiento de crecimiento bacteriano, que es un tema clave de interés en biología de sistemas.

Resumen

Crecimiento bacteriano es un concepto central en el desarrollo de la moderna fisiología microbiana, así como en la investigación de la dinámica celular a nivel de sistemas. Estudios recientes han reportado correlaciones entre el crecimiento bacteriano y eventos de todo el genoma, como reorganización de reducción y transcriptoma de genoma. Analizar correctamente el crecimiento bacteriano es fundamental para entender la coordinación dependiente del crecimiento de las funciones de genes y componentes celulares. Por consiguiente, se requiere la evaluación cuantitativa precisa del crecimiento bacteriano en forma de alto rendimiento. Desarrollos tecnológicos emergentes ofrecen nuevas herramientas experimentales que permiten la actualización de los métodos utilizados para el estudio de crecimiento bacteriano. El protocolo introducido el emplea a un lector de microplacas con un procedimiento experimental altamente optimizado para la evaluación precisa y reproducible del crecimiento bacteriano. Este protocolo fue utilizado para evaluar el crecimiento de varias cepas de Escherichia coli ha descrito anteriormente. Los pasos principales del protocolo son las siguientes: la elaboración de un gran número de poblaciones de células en pequeños viales de repetidas pruebas con la reproducibilidad, la utilización de placas de 96 pocillos para la evaluación del crecimiento de alto rendimiento y el cálculo manual de dos grandes parámetros (es decir, densidad de población y tasa de crecimiento máxima) que representa la dinámica de crecimiento. En comparación con el tradicional análisis de unidad (UFC) formadoras de colonias, que cuenta con las células que se cultivan en tubos de vidrio con el tiempo en placas de agar, el presente método es más eficiente y proporciona más registros temporales de los cambios de crecimiento, pero tiene una más estricta límite de detección a densidades de población bajas. En Resumen, el método descrito es ventajoso para el análisis de alto rendimiento precisa y reproducible del crecimiento bacteriano, que puede utilizarse para sacar conclusiones conceptuales o hacer observaciones teóricas.

Introducción

Estudios microbiológicos a menudo comienzan con el cultivo de las células bacterianas y la evaluación de las curvas de crecimiento bacteriano, que representan un fenómeno fundamental de la fisiología bacteriana1,2,3. Principios básicos de la cultura están ampliamente disponibles en la literatura de los estudios publicados y los libros de texto porque la cultura bacteriana es una metodología fundamental. A nivel Banco, considerable atención se ha centrado tradicionalmente en optimización de medios de cultivo y condiciones de cultivo, pero controla la tasa de crecimiento, que p....

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Protocolo

1. preparar el medio de crecimiento

Nota: la composición química de M63 medio mínimo es el siguiente: 62 m m K 2 HPO 4, 39 m m KH 2 PO 4, 15 mM (NH 4) 2 SO 4 1,8 μm FeSO 4, 15 μm tiamina-HCl, 0,2 mM MgSO 4 y 22 mM de glucosa. M63 se hace mezclando tres soluciones: solución X 5, 20% de glucosa y solución de MgSO 4 tiamina. Almacene todas las soluciones a 4 ° C.

  1. Preparación de la solución de X 5
    1. para preparar solución de FeSO 4, utilice una pipeta eléctrica y una pipeta serológica desechable para agrega....

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Resultados

El método descrito proporciona un medio para capturar la dinámico crecimiento bacteriano de manera continua, de alto rendimiento utilizando un lector de formato de 96 pozos que tiene varias mediciones de densidad óptica a diferentes intervalos de tiempo (desde minutos a horas o días). Las curvas de crecimiento de una variedad de cepas de e. coli expresan diversos genomas pueden adquirirse precisamente en un solo experimento (figura 1A). En comparació.......

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Discusión

Pasos críticos en el protocolo incluyen la preparación de una acción común de crecimiento exponencial las células y la replicación de las mismas muestras en pozos múltiples en diversas posiciones en la microplaca. Previamente, microbiólogos comenzaron la cultura de una cultura de la noche. Mientras que este método puede reducir el tiempo de retraso del crecimiento bacteriano, es difícil de conseguir las curvas de crecimiento reproductivo. Como se muestra en la figura 2, las mediciones indepe.......

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Divulgaciones

Agradecemos a Kohei Tsuchiya para dar el ejemplo de ensayo de UFC. Este trabajo fue parcialmente apoyado por una subvenciones para la investigación científica (C) no. 26506003 (a BWY) desde el Ministerio de educación, cultura, deportes, ciencia y tecnología, Japón.

Agradecimientos

Los autores no tienen nada que revelar.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
K2HPO4Wako164-04295
KH2PO4Wako166-04255
(NH4)2SO4Wako019-03435
MgSO4-7H2OWako138-00415
Tiamina-HClWako201-00852
glucosaWako049-31165
HClWako080-01066
Sulfato de hierro (II) heptahidratado (FeSO4-7H2O)Wako094-01082
KOHWako168-21815
GlycerolWako075-00611
Tubo de centrífuga (50 mL, esterilizado)WATSON1342-050S
pipeta, 200 y micro; LWATSON110-705Y
Puntas de pipeta, 1.000 y micro; LWATSON110-8040
Microtubo (1,5 mL)WATSON131-715C
8 pipetas multicanalWATSONNT-8200
PASORINA AGITADORAS ONE2-4990-02
Cilindro de vidrio (200 mL)AS ONE1-8562-07
Protector de pH de precisiónAS ONEAS800 / 1-054-01
Pipetman P-200GILSON1-6855-05
Pipetman P-1000GILSON1-6855-06
Pipetas Serolocical Desechables (10 mL)SANPLATECSAN27014
Pipetas Serolocicales Desechables (25 mL)SANPLATECSAN27015
Soporte MicrotuboBM Bio801-02Y
VortexBM BioBM-V1
Microplaca Corning Costar de 96 pocillos con tapa (fondo plano, transparente)Sigma-Aldrich3370
Corning Costar (50 mL)Sigma-AldrichCorning, PVDF 4870
Stericup GV (250 mL, 0,22 y micro; M)Merck MilliporeSCGVU02RE
Pipet-Aid XPDRUMMOND4-000-101
Bioshaker (BR-23UM MR)TAITEC0053778-000
Célula de eliminación (1,5 mL)Kartell1938 / 2-478-02
DU 730 Life Science UV/Vis EspectrofotómetroBeckman CoulterA23616
EPOCH2BioTek2014- EP2-002 / EPOCH2T
Vaso de precipitados (500 mL)IWAKI82-0008
BIO banco limpioPanasonicMCV-B131F
Tubos de vidrioNICHIDEN RIKA GLASSP-10M~P-30 /101019
Tapones de caucho de siliconaShinEtsu PolymerT-19
Cepas bacterianasOrganización del banco de cepas; Proyecto Nacional de Recursos Biológicos (NBRP) en Japón
Puntas de Corning, depósito de reactivo

Referencias

  1. Kovarova-Kovar, K., Egli, T. Growth kinetics of suspended microbial cells: from single-substrate-controlled growth to mixed-substrate kinetics. Microbiol Mol Biol Rev. 62 (3), 646-666 (1998).
  2. Soupene, E., et al.

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