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Artículo de método

Microirradiation láser para estudiar In Vivo las respuestas celulares al daño en el ADN Simple y complejo

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DOI:

10.3791/56213

31 de enero de 2018

* These authors contributed equally

En este artículo

Resumen

El objetivo de este protocolo es describir cómo utilizar microirradiation de láser para inducir a diferentes tipos de daños en el ADN, como roturas de cadena relativamente simple y complejo daño, para el estudio de ADN daños reparación y señalización de factor Asamblea en sitios de daño en vivo .

Resumen

Daño de la DNA induce respuestas concretas de reparación y señalización de la célula, que es fundamental para la protección de la integridad del genoma. Microirradiation laser se convirtió en una valiosa herramienta experimental para investigar el ADN daños respuesta (DDR) en vivo. Permite análisis unicelular alta resolución en tiempo real de la dinámica macromolecular en respuesta a daño inducido por el láser confinado a una región Submicrométrica en el núcleo celular. Sin embargo, varias condiciones de láser han sido utilizadas sin apreciación de las diferencias en los tipos de daño inducido. Como resultado, la naturaleza de los daños es a menudo no bien caracterizado o controlado, provocando inconsistencias evidentes en los perfiles de contratación o modificación. Hemos demostrado que las condiciones de irradiación diferentes (es decir, diferentes longitudes de onda así como diferentes potencias de entrada (cultivos) de un láser de femtosegundo (fs) y de infrarrojo cercano (NIR)) inducida por distintos conjuntos de proteínas DDR y reparación. Esto refleja el tipo de daño en el ADN producido. Este protocolo describe cómo titulación laser de potencia de entrada permite la inducción de diferentes cantidades y la complejidad del daño de la DNA, que pueden controlarse fácilmente por la detección de daño base y reticulación, diferencial poli (ADP-ribosa) (PAR) de señalización, y Asambleas de factor de reparación específica de la vía en sitios de daño. Una vez determinadas las condiciones de daño, es posible investigar los efectos de daños diferente complejidad y daño diferencial de señalización, así como agotamiento de factor aguas arriba de cualquier factor de interés.

Introducción

En Vivo Señalización de daño de ADN no es haber entendido bien
In vivo, el ADN es acomplejado con histonas y otros factores para formar fibras de cromatina. Regulación de la estructura de la cromatina es de suma importancia para el metabolismo del ADN. Por ejemplo, la variante de la histona H2AX es fosforilada por la ataxia-telangiectasia mutado (ATM) y otras cinasas siguiente doble cadena rompe inducción (DSB) y es importante para la amplificación de la señal de OSD daños así como proporcionar un sitio para otro factores. Difusión de elección de vía de señalización y reparación de daños parecen ser críticamente influenciado por l....

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Protocolo

1. preparación de la célula básica

Nota: Este paso es para detección de inmunofluorescencia estándar del reclutamiento de la proteína endógena o modificación y para el uso de una línea celular estable expresar una proteína recombinante fluorescente etiquetada. Por ejemplo, las células epiteliales del riñón marsupial Potorustridactylus (PtK2) estable expresan EGFP 53BP11220-1711 o TRF2 YFP se utilizaron en nuestro anterior estudian (figura 1)32. En el caso anterior, el enfoque de formación región de 53BP1 (aminoácido 1220-1711) que contiene el dominio de Oligomerización ....

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Resultados

Usando células PtK2 estable expresaban EGFP 53BP11220-1711 o TRF2 YFP, láser alimentación valoración se llevó a cabo para determinar las condiciones óptimas para su contratación (figura 1)32.

En los sitios de daño del láser de alta potencia de input, el agrupamiento significativo de CPD (daño reticulando típicamente generado por daño ultravioleta (UV)) así como GFP-NTH1 ADN glicosilasa que específicamente reconoce el daño de base.......

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Discusión

Las ventajas de la utilización de láser microirradiation para la investigación DDR son:

1. es factible inducir diferentes tipos y cantidades de ADN dañan por roturas de cadena simple a complejo daño en el ADN, y para detectar factores de reparación diferentes a la DNA dañan sitios mediante el ajuste de los parámetros de la irradiación láser. También es posible infligir daño varias veces en el mismo núcleo de la célula con el fin de evaluar los efectos de transporte (como en la

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Agradecemos al Dr. Akira Yasui en la Universidad de Tohoku, Japón para el plásmido de expresión de GFP-NTH1 y Dr. Eros Lazzerini Denchi en el Scripps Research Institute, La Jolla, California de TRF2 YFP y plásmidos de expresión de EGFP 53BP11220-1711 . Este trabajo fue financiado por la oficina de investigación científica de la fuerza aérea (FA9550-04-1-0101) y la Fundación Beckman Laser Institute Inc. (a M.W.B), la beca de la Fundación Ford de la Academia Nacional de Ciencias (B.A.S) y MCB NSF-1615701 y CRCC CRR-17-426665 (a. K. Y.).

....

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Ti:Zafiro NIR láser de femtosegundo pulsado Mira-900Coherent Inc.Mira 900
 Carl ZeissAxiovert 200M
63X/1.4 NA objetivoZeissAPOCHROMAT Ph3 
Platina de rotación compacta Newport CorpPR50PP
Controlador de temperaturaWarnerTC-344B
Sistema de calefacciónIbidi 10918
Sistema de incubación de gasIbidi 11920
Medidor de potencia y energía láser (RoHS)CampocoherenteMaxII-TOP 
ORCA-R2 Cámara CCD digitalHamamatsuC10600
LSM 510 META Microscopios de escaneo láserCarl Zeiss
100X/1.3 NA Zeiss Plan APOCarl Zeiss
35mm Platos cuadriculados MatTekP35G-1.5-14-CGRD-D
PtK2 células epiteliales renalesATCCCCL 56 
Células HeLaATCCCCL-2
DMEMLife Technologies11885-092
Medio independiente del CO2 Life Technologies18045-088
MEM Life Technologies12492-013suplementado con L-Glutamina, 4% FBS
penicilina/estreptomicinaFisher Scientific15140122
L-GlutaminaFisher Scientific 25030081
FBSOmega ScientificFB-02
Timidina   SIGMAT9250
medios sin suero        (Opti-MEM I Medios de Suero Reducidos)Fisher Scientific11058021
Dímero de pirimidina anti-cicolbutancia (CPD) (ratón)Kamiya Biomedical CompanyMC-062
Anti-XRCC1 (ratón)Gene Tex IncGTX72311
Anti-53BP1 (conejo)Santa Cruz Biotechsc-22760
Anti-CtIP (conejo)Abcamab70163
Polímeros anti-PAR (ratón)Enzo Life SciencesBML-SA216-0100
Anti-PAR (conejo)Trevigen4336-BPC-100
Anti-TRF2 (ratón)Novus Biological NB100-56506
Anti 6-4PP (ratón)Kamiya Biomedical
Anti-Rad21 (conejo)                                        (para la detección de cohesinas)Yokomori (KY)
Anti-Rad51 (Conejo)Santa Cruz BiotechnologySC-8349
Anti-Ku70 (ratón)  Novus BiologicalsNB100-102
8-oxiguanina Trevigen, Inc.
Anti-PARP1  (Conejo)                                       generado en KY labref 43
  Anti-hCAPG (Conejo)                                      (para la detección de condensina)generado en KY labref 42
Cy3 AffiniPure Donkey Anti-Rabbit IgG  Jackson ImmunoResearch Inc711-165-152
Burro Anti-Ratón Alexa Fluor 488 IgGThermo Fisher ScientificA-21202
HiPerFect siRNA Reactivo de transfecciónQiagen301705
Lipofectamine 2000 Reactivo de transfecciónThermo Fisher Scientific11668019
GFP-SMC1 línea celular estable       generado en el laboratorioref 49  
Línea celular estable GFP-NEIL2generada en KY labref 54
Línea celular estable GFP-NTH1generada en KY labref 32
Plásmido GFP-SMC1generado en KY lab
Plásmido GFP-Kugenerado en KY lab
Anti-MDC1 (conejo)  Novus BiologicalsNB100 – 395
Anti-gH2AX (conejo)  Millipore07– 164
EGFP-53BP1(1220-1711) Línea celular estable PtK2generada en el laboratorioref 32
TRF2-YFP Línea celular estable PtK2generada en el laboratorioref 32
DMSOSigmaD2650-100ML
Inhibidor de PARGTrevigen4680-096-03
ADN– Inhibidor de PKcs  NU7026 SigmaN1537
Inhibidor de ATM KU55933  Calbiochem118500
Olaparib Tecnología ApexbioA4154
Paraformaldehído MICROSCOPÍA ELECTRÓNICA CIENCIA MS100503-916 (EA)
Cantidad Un software de análisis 1-D versión 4.6.9Bio-RadSOFT-LIT-70-9600-Q1-469PC Programa de análisis de imágenes
Excelprograma de hoja de cálculode Microsoft
Triton X100Fisher ScientificBP151-500detergente
Solución salina tamponada con fosfato de Dulbecco (DPBS) 10X sin calcio y magnesioFisher Scientific14200166diluido a 1X 
Microscopio invertido generado en el laboratorio de KY de Berns de Berns

Referencias

  1. Altmeyer, M., Lukas, J. To spread or not to spread--chromatin modifications in response to DNA damage. Curr. Opin. Genet. Dev. 23 (2), 156-165 (2013).
  2. Ciccia, A., Elledge, S. J. The DNA damage response: making it safe to play with knives. Mol. Cell. 4....

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