Artículo de método

Mover hacia arriba: Un Simple y Flexible In Vitro invasión tridimensional protocolo

5.6K vistas

DOI:

10.3791/56568

12 de marzo de 2018

En este artículo

Resumen

Este protocolo describe un ensayo de invasión vertical invertido que podría ser utilizado para cuantificar la capacidad de migración y la invasión de las células en un entorno tridimensional conservando el microambiente celular. Este ensayo es adecuado para las células raras o sensibles.

Resumen

Aunque se han desarrollado ensayos de invasión 3D, el desafío sigue siendo estudiar las células sin afectar la integridad de su microambiente. 3D tradicionales ensayos tales como el compartimiento de Boyden requieren que las células son desplazadas de la ubicación original de la cultura y se trasladó a un nuevo entorno. No sólo hace esto interrumpir los procesos celulares que son intrínsecos al microentorno, pero a menudo resulta en una pérdida de células. Estos problemas son especialmente difíciles cuando se trata de las células que son raros, o extremadamente sensibles a su microambiente. Aquí, describimos el desarrollo de un ensayo de invasión 3D que evita ambos problemas. En este ensayo, las células se platean dentro de un pequeño bien y una matriz del ECM que contiene un chemoattractant se coloca encima de las células. Esto no requiere desplazamiento de la célula y permite a las células invadir hacia arriba en la matriz. En este ensayo, invasión celular y morfología celular puede ser evaluada en el gel de colágeno. Usando este análisis, se caracteriza la capacidad invasiva de las células raras y sensibles; las células híbridas resultantes de la fusión entre las células de cáncer de mama MCF7 y mesenquimales multipotentes/tallo/estroma células (MSCs).

Introducción

La motilidad celular es un proceso fisiológico y de desarrollo normal de las células. Sin embargo, cambios en el patrón y la capacidad de las células para migrar e invadir están asociados a condiciones patológicas como enfermedades inflamatorias y cáncer metástasis1,2,3. La metástasis es posiblemente el aspecto más mal entendido en cáncer. Para metástasis, las células cancerosas deben degradar la matriz extracelular (ECM), invaden el tejido local y intravasate. Una vez en circulación, las células cancerosas se difundir el sitio distante extravasate y formar tumores secundario....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Protocolo

Nota: Este protocolo se describe en McArdle et al. 11. una línea de tiempo se proporciona en la figura 1.

1. preparación de la placa de cultivo

  1. Lave la placa de cultivo de 35 mm que contiene un fondo de cristal de 10 mm con 1 mL de 1 M de ácido clorhídrico (HCl) durante 15 minutos reducir la hidrofobicidad de la parte inferior de cristal.
  2. Lave la placa de cultivo dos veces con 1 mL de solución salina buffer fosfato (PBS) para deshacerse de la HCl.
  3. Lave la placa de cultivo dos veces con 1 mL de etanol al 70%.
  4. Enjuague la placa de cultivo co....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Resultados

Hemos utilizado una placa de cultivo de 35 mm con un vidrio inferior y rata de cola colágeno I a desarrollar y optimizar una invasión en vitro 3D análisis de protocolo. Usando este análisis, hemos demostrado eso mama células cancerosas MCF7 y MSC células podrían invadir en el gel de colágeno a una distancia media de 0.04 μm ± 1.8 y 41,3 ± 76.0 respectivamente después de 48 h cuando IGF1 (18,6 ng/mL) fue utilizado como chemoattractant (figura 2). Más .......

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Discusión

Aquí, describimos un ensayo de invasión vertical invertido simple que es conveniente para una variedad de tipos de células incluyendo las células que son raros o dependiente en su microambiente. En este ensayo de invasión 3D, las células permanecen en su microentorno original y están cubiertas por el gel de colágeno que contiene un chemoattractant. Las células entonces migraran e invaden en el colágeno. En este ensayo, las células pueden ser manchadas y fácilmente monitoreadas en el gel. La simplicidad y reproducibilidad.......

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Divulgaciones

Los autores han declarado que ningún interés competencia existen.

Agradecimientos

Este trabajo fue apoyado por los institutos nacionales de salud (NIMHD-G12MD007581) a través del RCMI-centro de salud ambiental en la Universidad Estatal de Jackson y el Departamento de defensa, Premio Idea 11-1-0205.

....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
MatTek P35G-1.5-10CMatTek Corporation, Ashland, MAP35G-1.5-10-CPlatos con fondo de vidrio mate
Colágeno ICorning, Corning, NY, EE. UU. 354236Gel de colágeno
Ácido clorhídricoSigma-Aldrich, St. Louis, MO 63178 EE. UU.H1758HCl
Solución salina tamponada con fosfatoThermo Fisher Scientific Inc., Whaltham, MA, EE. UU. 10010023Pbs
10X Dulbecco's Modified Eagle's Medium Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 63178 USAD242910X DMEM
Bicarbonato de sodioSigma-Aldrich, St. Louis, MO 63178 USAS5761NaHCO3
Confocal Microscopiofluorescente Olympus America, Center Valley, PA, USAMicroscopio Olympus IX81Confocal 
Suerofetal bovino definidoGE Healthcare Life Sciences HyClone Laboratories, Utah, EE. UU.SH30070.03FBS
Ti:Sapphire Microscopio láser multifotónicoPrarie Technologies, Sioux Falls, SD, EE. UU.40x NA 0.8 objetivoMPLSM
Imaris softwareBitplane Inc. Zúrich, CHImaris 7.5.2Imaris software
DAPISigma-Aldrich, St. Louis, MO 63178, EE. UU.D9542DAPI
ParaformaldehídoThermo Fisher Scientific Inc., Whaltham, MA, EE. UU.50980487PFA
α-medio esencial mínimoSigma-Aldrich, St. Louis, MO 63178, EE. UU.M0894
MDA-MB-231ATCC; Manassas, VA, EE. UU.HBT-22
MSCTrivedi y Hematti, 2007
Lente 20X UPLAPOOlympus America, Center Valley, PA, EE. UU. 36-064Olympus UPLSAPO 20X Objetivo
Cola de rata

Referencias

  1. Friedl, P., Brocker, E. B. The biology of cell locomotion within three-dimensional extracellular matric. Cell Mol Life Sci. 57, 41-64 (2000).
  2. Bissell, M. J., Rizki, A., Mian, I. S. Tissue architecture: the ultimate regulator of breast epithelial function....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Reimpresiones y permisos

Solicitar permiso para reutilizar el texto o las figuras de este artículo de JoVE

Solicitar permiso

Etiquetas

Ensayo de invasi n en 3Dgel de col genomigraci n celularmicroscop a confocalquimioatrayentec lulas de c ncer de mamaproductos de fusi n celularmatriz de MECtratamiento con cido clorh dricofijaci n con paraformaldeh do

Artículos relacionados