Desarrollo de un modelo cadavérico multipuerto de clipaje de aneurisma de circulación posterior para residentes de neurocirugía y otorrinolaringología

Summary

Se describe un protocolo modelo para entrenar a los estudiantes residentes de neurocirugía y otorrinolaringología en el clipaje transclival endoscópico de aneurismas de circulación posterior. Se establecen dos abordajes endoscópicos para acceder a la circulación posterior de cabezas cadavéricas inyectadas o perfundidas con silicona para el entrenamiento. Los alumnos tienen la tarea de recortar la circulación posterior en función de los escenarios clínicos.

Abstract

Los aneurismas de circulación posterior son difíciles de tratar con los métodos actuales de enrollamiento y clipaje. Para abordar las limitaciones en el entrenamiento, desarrollamos un modelo cadavérico para entrenar a los estudiantes en el clipaje endoscópico de aneurismas de circulación posterior. Se describe un abordaje transclival endoscópico (ETA) y un abordaje precaruncular transorbitario (TOPA) para acceder con éxito y sujetar aneurismas de la circulación posterior. El modelo tiene flexibilidad en el sentido de que se puede inyectar un compuesto de silicona coloreado en los vasos cadavéricos con el fin de entrenar a los estudiantes en anatomía vascular. La otra opción es que el modelo podría conectarse a una bomba de perfusión vascular, lo que permitiría la apreciación en tiempo real de un aneurisma pulsátil o roto. Este modelo cadavérico es el primero de su clase para el entrenamiento del clipaje endoscópico de aneurismas de circulación posterior. Los alumnos desarrollarán competencia en habilidades endoscópicas, disección apropiada y apreciación de la anatomía relativa mientras desarrollan un algoritmo que se puede emplear en un ámbito operativo real. En el futuro, se pueden desarrollar varios escenarios clínicos para mejorar el realismo, permitir que los estudiantes de diferentes especialidades trabajen juntos y enfatizar la importancia del trabajo en equipo y la comunicación efectiva.

Introduction

El tratamiento de los aneurismas de circulación posterior presenta desafíos únicos y tiene tasas de complicaciones más altas en comparación con otros aneurismas cerebrales¹. El clipaje transcraneal de aneurismas de circulación posterior es técnicamente desafiante, con altas tasas de complicaciones y morbilidad². El coiling endovascular y la cirugía endonasal endoscópica son alternativas seguras, ya que reducen las tasas de complicaciones y limitan la tracción en el cerebro³. Se ha demostrado que el enrollamiento endovascular tiene beneficios sobre los abordajes abiertos de la base del cráneo, y la mayoría de los centros ahora utilizan un enfoque endovascular para tratar los aneurismas cerebrales⁴. Sin embargo, muchos aneurismas de circulación posterior no son susceptibles de enrollarse debido a la ubicación, la tortuosidad del vaso y el tamaño del vaso². Estudios recientes han demostrado la factibilidad del uso de abordajes endoscópicos para el clipaje de aneurismas de circulación posterior 5,6,7,8.

A pesar de que la cirugía endoscópica endonasal ha demostrado beneficios sobre los procedimientos más invasivos, varios estudios documentan una curva de aprendizaje asociada al uso de equipos endoscópicos ^9,10,11. Es esta curva de aprendizaje y la falta de formación y experiencia del cirujano lo que limita el uso de esta opción de tratamiento segura y beneficiosa³. A medida que el clipaje endoscópico para aneurismas se está revelando como un curso de tratamiento factible y seguro, los residentes de neurocirugía y otorrinolaringología deberán desarrollar estos conjuntos de habilidades quirúrgicas durante su formación. Esta necesidad de habilidad técnica, combinada con una curva de aprendizaje pronunciada, requiere el desarrollo de modelos de entrenamiento realistas, ya que se necesitan varias repeticiones para reducir el tiempo en la sala de operaciones y la tasa de complicaciones en la cirugía endonasal endoscópica ^9,11. En un modelo de placenta humana de clipaje de aneurisma cerebral, Belykh et al. han demostrado una mejora en el uso de aplicadores de clips de aneurisma en estudiantes después de la simulación¹². Del mismo modo, se ha demostrado que el entrenamiento con modelos impresos en 3Dimension mejora las habilidades técnicas del aprendiz en el clipaje de aneurismas¹³. Al igual que con cualquier modelo de formación, la rentabilidad y la reproducibilidad son objetivos principales para una mayor accesibilidad. Hemos demostrado previamente la utilidad de una ETA y una TOPA en un modelo de cadáver de clipaje de aneurisma de circulación posterior, con el acceso de aproximación y la visualización afectados por la ubicación del clip¹⁴. TOPA se puede utilizar junto con abordajes endonasales endoscópicos, y ha demostrado previamente distancias de trabajo más cortas, visualización mejorada y ángulos que resultan en un mayor acceso a las estructuras ^4,14. El procedimiento TOPA es un nuevo enfoque para la ligadura con clip de aneurismas, y su aplicabilidad se puede explorar más a fondo mediante simulación para el acceso tanto a tumores como a aneurismas. En este protocolo, presentamos los pasos para el desarrollo de un modelo de recorte de aneurisma de circulación posterior realista, rentable y reproducible utilizando ETA y TOPA como opciones para entrenar a los estudiantes de neurocirugía. Una ventaja de nuestro modelo es la exposición del aprendiz a la anatomía física auténtica, con la opción de incorporar un sangrado dinámico realista en el entrenamiento del clipaje de aneurismas. Este modelo se puede configurar con una anatomía estática (infundida con compuesto de silicona) o dinámica (perfundida) y es aplicable para entrenar a estudiantes de neurocirugía u otorrinolaringología en varios niveles de experiencia en la anatomía y el manejo de los aneurismas de circulación posterior.

Protocol

En el desarrollo de este modelo, se obtuvieron tres cabezas cadavéricas a través del Programa de Donación de Cuerpos de la Universidad de Salud y Ciencia de Oregón y se manejaron según el Código de Ética aprobado por la Junta de Revisión Institucional de la Universidad de Salud y Ciencia de Oregón.

1. Preparación de la cabeza

1. Obtener cabezas cadavéricas frescas. Asegure la cabeza en el fregadero, descansando sobre un bloque con el cuello hacia arriba.
2. Prepare una solución de 5 L 1:100 de citrato anticoagulante dextrosa y agua tibia. Utilice la solución dentro de las 72 h.
3. Insertar una cánula arterial de 5 mm en la vena yugular derecha (lateral a la carótida) y aplicar una pinza de cánula arterial alrededor del vaso. Perfundir el recipiente durante 15 min con una bomba de perfusión y una solución anticoagulante de citrato dextrosa para lavar el recipiente. Retire la cánula y repita con la vena yugular izquierda y las arterias carótidas bilateralmente. Repita con una cánula de 3 mm en las arterias vertebrales bilateralmente.
4. Deje que las cabezas se asienten y se sequen durante la noche. Coloque las cabezas con la cara hacia arriba y el cuello colocado en un ángulo de 45 ° con un bloque de soporte debajo. A continuación, almacene en una cámara frigorífica a 5 °C durante la noche.
5. Incruste las cabezas en 2 L de solución de embalsamamiento. Guarde las cabezas en un cubo, sumergidas en una solución fijadora de formalina al 10%.
6. Utilice las cabezas preparadas con inyecciones de compuesto de silicona para entrenar con anatomía estática (paso 2) o configuración de lesión arterial y perfusión para entrenar con anatomía dinámica (paso 4).
   1. Para completar las inyecciones de compuesto de silicona (paso 2): complete el paso 2, luego pase al paso 3 para completar la disección.
   2. Para completar la configuración de la lesión arterial y la perfusión (paso 4): complete la disección del paso 3, luego pase al paso 4 para obtener instrucciones de perfusión.

2. Inyecciones de compuestos de silicona

1. Prepare la solución de compuesto de silicona de acuerdo con las instrucciones del fabricante (50 μL de diluyente, 40 μL de colorante compuesto de silicona roja y 4,5 μL de agente curativo).
2. Utilice la disección para identificar las arterias carótidas externas. Pinzar la arteria carótida externa derecha con un hemostático para enfocar la inyección en la vasculatura intracerebral.
3. Inserte la cánula arterial en la arteria carótida interna derecha y aplique la pinza de cánula arterial alrededor del vaso. Inyecte 20 μL de solución de compuesto de silicona. Detenga la inyección cuando se observe el flujo de la solución de compuesto de silicona en la arteria carótida común izquierda.
4. Pinzar las arterias carótidas comunes bilateralmente con hemostáticos.
5. Inserte una cánula arterial en la arteria vertebral derecha y aplique una pinza de cánula arterial alrededor del vaso. Inyecte 10 μL de solución de compuesto de silicona. Detenga la inyección cuando se observe el flujo de solución de compuesto de silicona en la arteria vertebral izquierda.
6. Pinzar las arterias vertebrales bilateralmente con hemostáticos.
7. Deje que la cabeza se asiente a temperatura ambiente durante 30 minutos, luego retire suavemente todas las abrazaderas.

3. Disección de tejidos

1. Coloque las cabezas con la cara hacia arriba y el cuello colocado en un ángulo de 45° con un bloque colocado debajo para visualizar las fosas nasales.
2. Obtener endoscopios de 0 y 30 grados de 4 mm de diámetro y 18 cm de longitud. Conéctalo a una cámara de fibra óptica y a una fuente de luz.
3. Prepare todas las cabezas con disecciones ETA y TOPA.
4. ETA ¹⁴ :
   NOTA: Consulte la Figura 1A para ver la representación de la disección de ETA.
   1. Use un espéculo para mover los cornetes medios lateralmente en los lados bilaterales.
   2. Utilice la succión y un disector de Penfield 1 para identificar el ostium esfenoidal bilateralmente.
   3. Con un bisturí de 11 hojas, haga una incisión en el lado derecho del tabique nasal en la articulación del rostro esfenoidal y el vómer con el hueso. Realice la incisión 1 cm por debajo de la placa cribiforme y hasta el suelo de la cavidad nasal.
   4. Diseccionar el mucoperiostio del hueso utilizando un disector de Penfield 1.
   5. Desarticular el rostro esfenoidal del tabique nasal óseo con un disector de Penfield 1 y realizar una septectomía.
   6. Use un Kerrison 2 para cortar el hueso desde los ostios esfenoidales hasta el piso del seno esfenoidal bilateralmente.
   7. Agarre y retire la quilla con un gran rongeur pituitario para exponer el seno esfenoidal y eliminar la mucosa.
   8. Utilice una fresa transesfenoidal para perforar el rostro inferior restante del esfenoides al ras del suelo del seno esfenoidal.
   9. Identificar las impresiones óseas de las arterias carótidas cavernosas, el receso opticocarótido, la silla turca y el clivus (Figura 2); Taladre el clivus para exponer su duramadre.
   10. Retraiga la glándula pituitaria (que debe estar a la vista) y perfore el clivus con una fresa de diamante grueso de 5 mm.
   11. Retire el clinoide posterior.
   12. Diseccionar la duramadre de la glándula pituitaria lateral libre de la glándula pituitaria; No es necesario diseccionar la duramadre sobre la glándula pituitaria.
       NOTA: Si se produce una disección inadvertida de la duramadre de la glándula pituitaria, no afectará la función del modelo.
   13. Use un Kerrison para eliminar los fragmentos de hueso y exponer la duramadre del clival.
   14. Extirpar la duramadre del clival para exponer la arteria basilar, las arterias cerebelosas anteroinferiores (AICA), las arterias cerebelosas superiores (PCA) y las arterias cerebrales posteriores (PCA) (descripción general en la Figura 3, anatomía detallada en la Figura 4).
       NOTA: La duramadre clival puede retraerse con un colgajo en U y estabilizarse con una sutura de seda 2-0.
5. TOPA ¹⁴ :
   Nota: Consulte la Figura 1B para ver la representación de la disección de TOPA.
   1. Mueva la carúncula lateralmente con pinzas, luego use unas tijeras para hacer una incisión medial a la carúncula donde la conjuntiva se une con la piel.
   2. Utilice tijeras de iris para ensanchar la incisión superior e inferiormente: la incisión debe continuar detrás de las extremidades superior e inferior del tendón cantal medial; Realizar una disección roma a lo largo de la extremidad posterior del tendón cantal medial hasta la cresta lagrimal posterior.
   3. Utilice un disector de Penfield 1 para hacer una incisión en el periostio posterior a la cresta lagrimal.
   4. Levantar el periostio de la pared de la órbita medial; Continúe elevando el periostio hacia el ápice de la órbita en el plano subperióstico.
   5. Identificar y dividir las arterias etmoidales anterior y posterior a lo largo de la sutura fronto-etmoidal.
   6. Fractura de la lámina papiracea entre las arterias etmoides y por debajo de la sutura fronto-etmoidal con la presión gradual de un comodín.
   7. Use un rongeur pituitario para extraer hueso con el fin de exponer la silla turca, el clivus, el receso óptico contralateral y las arterias carótidas cavernosas.

4. Lesión arterial y configuración de perfusión

1. Prepare la lesión arterial.
   1. Utilice un endoscopio para visualizar la anatomía de la circulación posterior (representación en la Figura 3 y la Figura 4).
   2. Seleccione la ubicación para el sangrado deseado. Para conocer las posibles ubicaciones de la hemorragia simulada de un aneurisma, consulte la figura 5. Realizar una laceración de 3 mm en la arteria deseada.
2. Configuración de perfusión y sangrado
   1. Cánula la arteria carótida común y asegúrela con una pinza. Conecte la cánula a la bomba de perfusión.
   2. Prepare sangre artificial con una proporción de 3:1 de agua y sangre falsa comprada comercialmente. A continuación, añade 2 gotas de colorante rojo por cada 250 mL de agua.
      NOTA: La sangre artificial preparada puede reutilizarse para múltiples simulaciones. Se preparan 3 L de sangre para cada cabeza cadavérica antes del inicio de la simulación. Esto se puede almacenar a temperatura ambiente. Agitar antes de usar.
   3. Ponga en marcha la bomba de perfusión y mida la presión arterial media (PMA) suministrada a la cabeza del cadáver a través de un transductor de vía arterial y un monitor de signos vitales. Mantenga los MAP dentro de un rango de 65-110 mmHg para producir un sangrado realista según el escenario de simulación deseado.

5. Colocación de clips en el entrenamiento de simulación

1. Utilice un clip de aneurisma y un aplicador de clips para el clipaje de vasos en este modelo (Figura 6).
2. Utilice un aplicador de clips para la colocación de clips (Video 1) en los sitios de aneurisma simulados de la circulación posterior (Figura 5).

Results

Este modelo presenta a los alumnos múltiples sitios clínicamente relevantes para el clipaje de la circulación posterior, con opciones estáticas (inyectadas con compuesto de silicona) o dinámicas (perfundidas) para el entrenamiento. Una vez completada la disección, los investigadores pueden utilizar ETA y TOPA para proporcionar a los alumnos una mejor visualización de la circulación posterior¹⁴. En la Figura 1 se ilustra una visión gene...

Discussion

Históricamente, los aneurismas de circulación posterior han sido difíciles de cortar o enrollar, especialmente los que se originan a partir de la PCS y la AICA. Se han probado varias técnicas, como los dispositivos de embolización endovascular, los abordajes microquirúrgicos de la base del cráneo y el abordaje supraorbitario mínimamente invasivo para la aplicación de clips 15,16,17. Si bien esta...

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
Citrato anticoagulante dextrosa	Pierce Laboratories 117037
Solución de embalsamamiento	Chemisphere
10% Fijador de formalina	Chemisphere	B2915DR55
Red Microfil	solución Flow Tech	MV-130	Compuesto de silicona
Pinza
5 mm Arterial cánula Diseño de	instrumentos & Mfg. Co.	ART187-2-CT	Se utiliza para la canulación de la vena yugular y la arteria carótida
Cánula arterial de 3 mm	Diseño de instrumentos & Mfg. Co.		Se utiliza para la canulación de la arteria vertebral
Hemostático curvo	Aesculap	BH139R
Endoscopio de cero grados (4 mm de diámetro, 18 cm de longitud)	Karl Storz	H3-Z TH100
Endoscopio de 30 grados (4 mm de diámetro, 18 cm de longitud)	Karl Storz
Succión - 7 y 10 FR	V. Mueller
Cuchilla	quirúrgica de 11 hojasBard-Parker	371111
Penfield 1	Jarit	285-365
Kerrison rongeur	Aesculap	FM823R, 3mm/180 mm
Rongeur pituitario	Aesculap	FF806R
Taladro transesfenoidal	Depuy-Synthes
5 mm taladro de diamante grueso	Pinzas Depuy-Synthes
	Jarit	Carb bite I22-500
Tijeras Iris	Negro & Bomba	negra B 66110
	Belmont Instrument Corporation, Billerica, MA, EE. UU.	Sistema de gestión de fluidos Belmont 2000
Pinza para aneurisma en L	Peter Lazic Microsurgical Innovations	45.782
Sistema de pinza para vasos	Peter Lazic Microsurgical Innovations	45.442
Pinza para solapa dural	Weck	523242