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Artículo de método

Un protocolo fácil de generar proteínas Site-Specifically acetiladas en Escherichia Coli

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DOI:

10.3791/57061

9 de diciembre de 2017

En este artículo

Resumen

Expansión del código genético sirve como una poderosa herramienta para el estudio de una amplia gama de procesos biológicos, incluyendo acetilación de proteínas. Aquí demostramos un protocolo fácil aprovechar esta técnica para generar homogéneo acetilado proteínas en sitios específicos en células de Escherichia coli .

Resumen

Modificaciones post-traduccionales que ocurren en las posiciones específicas de proteínas han demostrado desempeñar un papel importante en una variedad de procesos celulares. Entre ellos, la acetilación reversible de la lisina es uno de los más ampliamente distribuidos en todos los ámbitos de la vida. Aunque se han realizado numerosos estudios de acetylome basada en espectrometría de masa, más caracterización de estos objetivos de acetilación putativo ha sido limitada. Una razón posible es que es difícil generar proteínas puramente acetiladas en posiciones deseadas por mayoría enfoques bioquímicos clásicos. Para superar este reto, se ha aplicado la técnica de expansión del código genético para utilizar el par de una variante de ingeniería pyrrolysyl-tRNA sintetasa y su cognado tRNA de las especies de Methanosarcinaceae , para dirigir la incorporación cotranslacional de acetyllysine en el sitio específico en la proteína de interés. Después de la primera aplicación en el estudio de la acetilación de histonas, este enfoque ha facilitado estudios de acetilación sobre una variedad de proteínas. En este trabajo, hemos demostrado un protocolo fácil para producir proteínas site-specifically acetiladas utilizando la bacteria Escherichia coli de la modelo como anfitrión. Malato deshidrogenasa fue utilizada como un ejemplo de demostración en este trabajo.

Introducción

(PTMs) las modificaciones post-traduccionales de las proteínas ocurren después del proceso de traducción y surgen de adición covalente de grupos funcionales a los residuos del aminoácido, jugando papeles importantes en casi todos los procesos biológicos, incluyendo gene transcripción, respuesta al estrés, diferenciación celular y metabolismo1,2,3. Hasta la fecha, cerca de 400 distintivo PTMs han sido identificados4. La complejidad del genoma y el proteoma se amplifica en gran medida por la proteína MPa, regular localización y actividad de la proteína, ....

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Protocolo

1. dirigida mutagénesis Gene de la blanco

Nota: MDH se expresa bajo el promotor de T7 en el vector de pCDF-1 con el origen de CloDF13 y un número de copia de 20 a 4034.

  1. Introducir el codón ámbar en la posición 140 en el gene de cartillas (adelante cartilla: GGTGTTTATGACetiquetaAACAAACTGTTCGGCG y revertir la cartilla: GGCTTTTTTCAGCACTTCAGCAGCAATTGC), siguiendo las instrucciones del kit de mutagénesis sitio-dirigida.
  2. Amplificar el plásmido de plantilla que contiene el gen de la dehidratasa del malato de tipo salvaje e inserte la mutación del codón de parada por la ....

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Resultados

El rendimiento de proteína MDH acetilado fue 15 mg por cultura de 1 L, mientras que la de tipo salvaje MDH fue 31 mg por cultura de 1 L. Proteínas purificadas fueron analizadas por SDS-PAGE, como se muestra en la figura 1. El MDH de tipo salvaje fue utilizado como un control positivo de34. La proteína purificada de células que el sistema de incorporación de acetyllysine (AcK) y el gen mutante mdh , pero sin confirmación en med.......

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Discusión

La incorporación genética de noncanonical aminoácidos (ncAAs) se basa en la supresión de un codón asignado, sobre todo el ámbar stop codón UAG36,37,38,39, por el tRNA cargado de ncAA que contiene el anticodon correspondiente. Como es sabido, el codón UAG es reconocido por el factor de liberación-1 (RF1) en bacterias y puede también ser suprimido por cerca de tRNAs cognado de anfitriones por ami.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Este trabajo fue financiado por los NIH (AI119813), la puesta en marcha de la Universidad de Arkansas y el premio del Instituto de biociencias de Arkansas.

....

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Ensayo de proteínas BradfordBio-Rad5000006Concentración de proteínas
4x Tampón de muestra LaemmliTampón de muestraBio-Rad1610747
Coomassie G-250 TinciónBio-Rad1610786SDS-PAGE tinción en gel
4-20% Gel listo para SDS-PAGEBio-Rad4561093Determinación
de proteínas Ac-K-100 (HRP Conjugate)Cell Señalización6952Anticuerpo
IPTGCHEM-IMPEX194Inductor de expresión
Nε -acetil-L-lisinaCHEM-IMPEX5364Columna
de desalinización de aminoácidos no canónicos PD-10Healthcare17085101 Desalinización
Q5 Kit de mutagénesis dirigida al sitioNEBE0554Presentamos las células de codón de parada
BL21 (DE3)NEBC2527Expresando cepa
QIAprep Spin Miniprep Kit QIAGEN27106Extracción de plásmidos Resina
Ni-NTAQIAGEN30210Resina de purificación por afinidad
nicotinamidaSigma-AldrichN3376Inhibidor de la desacetilasa
β-MercaptoetanolSigma-AldrichM6250Agente reductor
BugBuster Reactivo de extracción de proteínasSigma-Aldrich70584Rompiendo células
Benzonasa nucleasaSigma-AldrichE1014DNasa
ECL Western Blotting SubstrateThermoFisher32106Quimioluminiscencia
Caldo LB premezcladoVWR97064Medio de crecimiento celular
Albúmina sérica bovinaVWR97061-416Western blots Bloqueo
SDS GE

Referencias

  1. Krishna, R. G., Wold, F. Post-translational modification of proteins. Adv Enzymol Relat Areas Mol Biol. 67, 265-298 (1993).
  2. Lothrop, A. P., Torres, M. P., Fuchs, S. M. Deciphering post-translational modification codes. FEBS Lett. 587 (8), 1247-1257 (2013).
  3. Walsh, C. T.....

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Reimpresiones y permisos

Etiquetas

Expansión del código genéticoacetilación de sitio específicoincorporación de acetillisinapirrolisil-tRNA sintetasacodón de parada ámbarexpresión en Escherichia colipurificación de proteínasinmunotransferencia (Western blotting)espectrometría de masas en tándemcélulas BL21(DE3)