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Artículo de método

Perfusable Red Vascular con un modelo de tejido en un dispositivo de microfluidos

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DOI:

10.3791/57242

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4 de abril de 2018

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En este artículo

Resumen

El protocolo describe cómo diseñar una red vascular perfusable en un esferoide. Microambiente circundante del esferoide es ideado para inducir angiogénesis y conectarse el esferoide de los microcanales en un dispositivo de microfluidos. El método permite la perfusión de la esferoide, que es una técnica largamente esperada en cultivos tridimensionales.

Resumen

Un esferoide (un agregado multicelular) es considerado como un buen modelo de tejidos vivos en el cuerpo humano. A pesar del avance significativo en las culturas del esferoide, una red vascular perfusable en los esferoides sigue siendo un reto para la cultura a largo plazo necesaria para mantener y desarrollar sus funciones, como expresiones de la proteína y la morfogénesis. El protocolo presenta un método novedoso para integrar una red vascular perfusable dentro del esferoide en un dispositivo de microfluidos. Para inducir una red vascular perfusable en el esferoide, brotes angiogénicos conectados con microcanales fueron guiados a la esferoide utilizando factores angiogénicos de fibroblastos de pulmón humanos cultivados en el esferoide. Los brotes angiogénicos alcanzaron el esferoide, que se fusiona con las células endoteliales cultivadas conjuntamente en el esferoide y forman una red vascular continua. La red vascular podría inundar el interior del esferoide sin ninguna salida. La red vascular construida puede utilizarse más como una ruta para el suministro de nutrientes y eliminación de residuos, que mímico la circulación de sangre en vivo. El método proporciona una nueva plataforma en la cultura de esferoide hacia mejor recapitulación de los tejidos vivos.

Introducción

El cambio de una cultura (bidimensional) de monocapa a una cultura tridimensional está motivado por la necesidad de trabajar con modelos de cultura que imitan las funciones celulares de la vida los tejidos1,2,3. Planos y duros plástico sustratos utilizados en cultivo de células no se parecen a la mayoría de los entornos extracelulares en el cuerpo humano. De hecho, muchos estudios demuestran que cultura tridimensionales recrear tejidos específicos la arquitectura, señales mecánicas y bioquímicas y comunicación de la célula, que no se han observado en la cultura bidimensional ....

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Protocolo

1. fabricación del molde dispositivo microfluídico

  1. Diseñar el modelo del dispositivo microfluídico utilizando software disponible comercialmente (Clewin5 o AutoCAD 2016, etcetera.). Para la función de la Clewin5, consulte el manual del usuario (http://manualzz.com/doc/7159150/clewin-user-s-manual).
    Nota: El archivo del diseño está disponible en archivo adicional 1.
  2. Transferir el archivo de diseño a un micro generador y carga la herramienta con una máscara de cromo recubierta con el photoresist positivo.
  3. Exponer el photoresist positivo en la zona de patrón utilizando un generador de patrón micro.
  4. Desa....

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Resultados

La figura 1 muestra un diseño y una foto del dispositivo microfluídico. Tiene tres canales paralelos, en que canal 2 contiene el esferoide bien. Canales 1 y 3 se utilizan para el cultivo HUVEC y canal 2 es para el esferoide. Cada canal está separada por microposts trapezoidal diseñado para patrón de PDMS. Los microposts que no el hidrogel en canal 2 en canales 1 y 3 por tensión superficial y permiten el intercambio de sustancias entre el esferoide y HUVECs en.......

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Discusión

Informes anteriores muestran que hLFs secretan un cóctel de varios factores angiogénicos, como angiopoyetina-1, angiogenina, factor de crecimiento, transformación de factor de crecimiento-α, factor de necrosis tumoral y algunas de las proteínas de matriz extracelular29, 30. Este ensayo se basa en la secreción de angiogenic del hLFs en un esferoide de cocultivo, que es la limitación de la técnica. Por lo tanto, es fundamental para una formación vascular estable d.......

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Divulgaciones

El autor declara que no tienen intereses financieros que compiten.

Agradecimientos

Este trabajo fue apoyado por cresta JST (número JPMJCR14W4), sociedad para la promoción de la ciencia (JSP) KAKENHI (número de concesión 25600060, 16 16386 K), el centro de innovación programa de MEXT y TJS, se centró en el desarrollo de la tecnología de clave evaluación de Agencia de Japón para investigación médica y el desarrollo, AMED, Mizuho Fundación para el fomento de las ciencias. Microfabricación fue apoyado por el centro de tecnología de Nano de la Universidad de Kyoto.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
AutoCAD 2017AutodeskAutoCAD 2017
Una máscara de cromo recubierta con AZP 1350.TECNOLOGÍA DE SUPERFICIE LIMPIACBL2506Bu-AZP
Micro generador de patronesHeidelberguPG101
MF CD-26 Reveladormateriales electrónicos Rohm and haas-Desarrolladoren protocolo 1.4
S-CleanSasaki ChemicalS-24Grabador de cromo en protocolo 1.5
AcetonWako012-00343
Oblea de silicioCanosisSiJ-4
Spin CoaterMIKASA1H-D7
Hexametildisilazano (HMDS)Tokyo Ohka KogyoH0089
SU-8 3050MicroChem-Negativofotorresistente en protocolo 1.9
Exposición UVNanometric Technology IncLA310s
SU-8 ReveladorMicroChemY020100Revelador para el fotorresistente negativo en el protocolo 1.13
2-propanolWako163-04841
Perfilador de superficiesVeecoVeeco Dektak XT-S
(Tricloro (1H, 1H, 2H, 2H-perfluorooctyl) silanoSigma 448931
Polidimetilsiloxano (PDMS)Dow Corning Toray184W/C
Punzón de biopsia (1.0mm) Punzónde biopsia Kai Industries BP-10F
(2,0 mm)  Kai IndustriesBP-20F
Sistema de PlasmaFemto CienciaCOVANCE
Cubierta de vidrioMATSUNAMI GLASSC024241
Placas de cultivoIwaki1000-035
RFP Expresión de células endoteliales de la vena umbilical humanaAngio ProteomiacAP-0001RFP
Fibroblastos pulmonares humanos normalesLonzaCC-2512
Medio de crecimiento de células endotelialesLonzaCC-3162
Kits de medios de crecimiento de fibroblastosLonzaCC-3132
DMEMThermo Fisher Scientific
Suero fetal bovinoThermo Fisher Scientific26140079
Solución de penicilina-estreptomicinaWako168-23191
0.05w/v% Tripsina-0.53mmol/l EDTA• Solución 4Na con Rojo FenolWako204-16935
PBS (Sales tamponadas con fosfato)Takara bioT900
Placa de 96 pocillosSumitomo baquelita631-21031
1000ul ChipNIPPON GeneticsFG-402
200ul  ChipNIPPON GeneticsFG-301
10ul ChipNIPPON Genetics37650
CO2incubadora Thermo FisherScientific Model 370
GFP Expresión de células endoteliales de vena umbilical humanaAngio ProteomiacAP-0001GFP
Fibrinógeno de plasma bovinoSigmaF8630
Aprotinina de pulmón bovinoSigmaA6279
Colágeno ICorning354236
Trombina de plasma bovinoSigmaT4648
Hoechst 33342InvitrogenH21492Colorante fluorescente para teñir núcleos en el protocolo 5.5
Solución de paraformaldehídoWako163-25983
Microscopio de fluorescencia invertidaOLYMPUSIX71
Cámara CCD DEGITALOLYMPUSORCA-R2
Microscopio biológico de barrido láser confocalOLYMPUSFV1000
Microscopio de fluorescencia invertidaOLYMPUSIX-83
Isotiocianato de fluoresceína-dextranoSigmaFD70S
de 11965092

Referencias

  1. Abbott, A. Cell culture: Biology's new dimension. Nature. 424 (6951), 870-872 (2003).
  2. Pampaloni, F., Reynaud, E. G., Stelzer, E. H. K. The third dimension bridges the gap between cell culture and live tissue. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 8 (10),....

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