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Artículo de método

Optogenetics identificación de un tipo Neuronal con un vidrio Optrode en ratones despiertos

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DOI:

10.3791/57781

28 de junio de 2018

En este artículo

Resumen

Este trabajo presenta un método para realizar un optogenetic de una sola unidad grabación fiable desde un ratón despierto utilizando un optrode de cristal a medida.

Resumen

Es una preocupación importante en Neurociencia cómo diferente tipos de neuronas funcionan en circuitos neurales. Los avances recientes en optogenetics han permitido la identificación del tipo neuronal en vivo experimentos electrofisiológicos en regiones amplias del cerebro. En experimentos de optogenetics, es fundamental para entregar la luz en el sitio de grabación. Sin embargo, a menudo es difícil entregar la luz del estímulo a las regiones profundas del cerebro de la superficie del cerebro. Sobre todo, es difícil para la luz de estimulación llegar a las regiones profundas del cerebro cuando la transparencia óptica de la superficie del cerebro es baja, como sucede a menudo con grabaciones de animales despiertos. Aquí, describimos un método para registrar respuestas de espiga a la luz de un ratón despierto utilizando un optrode de cristal a medida. En este método, la luz se proporciona mediante el electrodo de cristal de la grabación para que sea posible estimular confiablemente la neurona grabada con luz en las regiones profundas del cerebro. Este sistema de optrode por encargo consiste en materiales accesibles y de bajo costo y es fácil de montar.

Introducción

El sistema nervioso central consta de varios tipos de neuronas, que tienen diferentes funciones. Cómo funcionan estos tipos de neuronas dentro del circuito neural es una de las preocupaciones principales de la neurociencia. Sin embargo, en muchas regiones del cerebro, ha sido imposible distinguir los tipos neuronales en grabaciones en vivo de actividades eléctricas porque no hay clara diferencia en la señal de punto eléctrico, con algunas excepciones. Los avances recientes en optogenetics han hecho un gran avance1,2. Uso de animales transgénicos que sensibles a la luz opsina (p. ej., channelr....

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Protocolo

Todos los procedimientos se realizan con arreglo a los principios rectores de la sociedad fisiológica de Japón y con la aprobación de la Animal cuidado Comité de Kanazawa Universidad médica.

1. construcción del vidrio Optrode titular

Nota: Para construir un soporte de optrode de vidrio, se utiliza un soporte de electrodo comercial (figura 1A).

  1. Extraiga con cuidado el tubo de acero para control de la presión del barril del titular.
  2. Por perforación, ampliar el agujero del lado del asiento de pin en el cañón del titular. Hacer el agujero 3 mm de diámetro y 12 mm de p....

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Resultados

En la figura 2, se analizaron los efectos del tamaño de la punta y la longitud de las pipetas de vidrio en la potencia de luz en la punta de las pipetas (figura 2A-B). La potencia de luz fue medida por un medidor de potencia óptica a 1 mm de la punta. La longitud total se estableció en 50 ± 2 mm cuando el tamaño de la punta varía, mientras que el tamaño de la punta fue a 2.5 μm cuando la longitud total varió. El .......

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Discusión

Optogenetics se ha convertido en una herramienta poderosa en la neurociencia. Se ha utilizado para identificar tipos específicos neuronas en vivo así como manipular las actividades de vías neuronales específicas. La clarificación de las actividades neuronales de diferentes tipos neuronales promueve la comprensión del mecanismo de los circuitos neuronales. Aquí, hemos demostrado un método para proporcionar la luz en el sitio de grabación a través de un electrodo de vidrio en el IC de despiertas ratones VGAT ChR2........

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Los autores fueron apoyados por la sociedad japonesa para la promoción de la ciencia KAKENHI Grant JP16K11200 y 17H 02223 y la subvención para la investigación de Kanazawa médica Universidad S2016-8 y C2017-3. Damos las gracias por su apoyo en la toma de las fotos Yuhichi Kuda.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
PortaelectrodosMolecular Device1-HL-USoporte de pipeta para amplificador de microelectrodos
Manguito de acoplamiento dividido cerámicoFérula ThorlabsADAF1f2.5 mm
Espaciador de placa de circuitoTeishin DenkiSPA-320f8.0 mm, 20.0 mm de largo
Marco estereotáxico para ratonesNarishigeSR-6M-HTInstrumentos estereotáxicos para ratones
ManipuladorNarishigeNAManipulador manual
SuperbondSun MedicalM: 204610557Adhesivo dental cemento de resina
Form2Impresora 3DFormlabsNA
Kwik-SilWPIKWIK-SILAdhesivo de silicona de baja toxicidad
Capilares de vidrio de borosilicatoNarishigeGD-1.5OD 1.5 mm, ID 0.9 mm, 90.0 mm de largo
Latiguillo de fibra ópticaLentes DoricMFP_960/1000/2200-0.63_1m_FCM-ZF2.5Latiguillo monofibra óptica, diámetro exterior, 2,5 mm, núcleo = 960 mm, revestimiento = 1000 mm, NA = 0,63
Lentes dóricasLED conectadasLEDC-1B_FC Longitud deonda central = 465 nm, potencia de salida = 45 mW (Core 960 mm 0,63 NA )
Controlador LEDLentes Doric LEDRV_1CH_10001 canal Controlador LED, salida máxima = 1000 mA
Extractor de electrodosNarishigePB-7Extractor de micropipetas de vidrio de doble etapa
Capilar de vidrio de borosilicatoNarishigeGD-1.5Capilar de vidrio de bolosilicato, OD, 1,5 mm, ID, 0,9 mm, 90,0 mm de largo
GENTACINMSD CO., Ltd185711173Pomada antibiótica
Terramycin®-LAZoetisG 333Oxytetraciclina
Tg(Slc32a1- COP4*H134R/EYFP)8Gfng/JJackson Labs#14548VGAT-ChR2 ratones
Multiclamp 700BMolecular Devices2500-0157Amplificador de microelectrodo

Referencias

  1. Rajasethupathy, P., Ferenczi, E., Deisseroth, K. Targeting neural circuits. Cell. 165 (3), 524-534 (2016).
  2. Gore, F., Schwartz, E. C., Salzman, C. D. Manipulating neural activity in physiologically classified neurons: triumphs and....

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Reimpresiones y permisos

Etiquetas

Identificación neuronalregistro electrofisiológicocable de conexión de fibra ópticafijación del poste cefálicoprocedimiento de craneotomíacanalrodopsina-II de VGATregistro de respuesta de espigas