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Artículo de método

Azul de toluidina tinción de secciones embebido en resina para la evaluación de la morfología del nervio periférico

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DOI:

10.3791/58031

3 de julio de 2018

En este artículo

Resumen

Aquí presentamos un protocolo para visualizar estructuras finas de los nervios periféricos de obtención y tinción de secciones de 1-2 μm con toluidina azul

Resumen

Los nervios periféricos se extienden por todo el cuerpo, inervan los tejidos diana con axones motores o sensoriales. Debido a la amplia distribución, los nervios periféricos con frecuencia se dañan debido a trauma o enfermedad. Métodos y estrategias se han desarrollado para evaluar lesiones de nervios periféricos en modelos animales, la función y regeneración, análisis de la morfometría de los nervios periféricos se ha convertido en una medida esencial resultado terminal. La coloración del nervio Cruz azul de la toluidina secciones de secciones de resina incrustada del nervio es un método reproducible para la evaluación cualitativa y cuantitativa de los nervios periféricos, lo que permite la visualización del número de axones de morfología y grado de myelination. Esta técnica, como con muchos otros métodos histológicos, puede ser difícil de aprender y dominar mediante protocolos estándar escritos. La intención de esta publicación es por lo tanto acentúan protocolos escritos para la coloración de los nervios periféricos con videografía del método, con los nervios ciático de ratas azul de toluidina. En este protocolo se describe en vivo fijación del nervio periférico y colección del tejido y la fijación con tetróxido de osmio 2%, incrustación de nervios en la resina de epoxy y ultramicrótomo secciones de nervios a 1-2 μm de espesor. Secciones del nervio luego transfirieron a un portaobjetos de vidrio y teñidas con azul de toluidina, después de lo cual ellos son cuantitativa y cualitativamente evaluados. Se muestran ejemplos de los problemas más comunes, así como medidas para mitigar estos problemas.

Introducción

Los nervios periféricos se extienden por todo el cuerpo, inervan los tejidos diana con axones motores o sensoriales1. Defectos de los nervios periféricos causaron por trastornos y traumas representan un problema de salud pública importante y tiene grandes repercusiones económicas2,3. A pesar de los avances en la evaluación de los resultados de las lesiones de nervio periférico y la comprensión de la regeneración del nervio, los métodos tradicionales tales como nervio histología y técnicas de tinción son herramientas esenciales evaluar cualitativa y cuantitativamente la salud del nervio ....

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Protocolo

Ratas Sprague Dawley adultas fueron utilizadas en este proyecto y todos los procedimientos fueron aprobados por el Comité de uso y cuidado de los animales institucional Universidad de Wyoming.

1. cirugía y fijación del nervio Vivo

Nota: Información del vendedor para todos los materiales y equipos utilizados en el presente Protocolo se enumeran en la Tabla de materiales.

Nota: En vivo fijación del nervio se utiliza para preservar el tejido y reducir la degradación estructural que puede ocurrir entre el momento de la muerte y colección de los nervios. Fij....

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Resultados

Resina incrustada secciones teñidas con toluidina azul permiten cuantificaciones precisas datos histológicos de nervios periféricos. Un resumen del procedimiento se muestra en la (figura 2). Secciones de nervios ciáticos encajado en medio resina y teñidas con azul de toluidina demostrada clara imágenes con una resolución óptima (figuras 3). Daño del nervio puede causar muchos cambios en nervio estructuras morfológicas, por ejemplo, cambios en.......

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Discusión

Exámenes de las estructuras morfológicas de la lesión periférica del nervio y regeneración son frecuentes temas de estudio13. En este protocolo, describimos los pasos para obtener imágenes de alta calidad para cuantificaciones de datos histológicos utilizando tejido de nervio ciático de rata incrustados en bloques de resina y teñidas con azul de toluidina. Esta técnica proporciona una imagen de la morfología del nervio en el que la regeneración del nervio puede ser cuantificada midiendo el número .......

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Divulgaciones

Los autores declaran que tienen no hay conflictos de intereses.

Agradecimientos

Los autores desean a thankthe instalaciones de microscopía de Jenkins en la Universidad de Wyoming por su ayuda y los miembros del laboratorio de bosquimano, Kelly Roballo, verdadera de Hayden, Wupu Osimanjiang y Subash Dhunghana, para la asistencia en el cuidado de los animales. Esta publicación ha sido posible por una concesión de desarrollo institucional (IDeA) desde el Instituto Nacional de General médica Ciencias de los institutos nacionales de salud, bajo la subvención # 2P20GM103432.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Tampón de fosfato de Dulbecco solución salinaGibco14200-075
Solución de glutaraldehídoSigma-AldrichG6257
ParaformaldehídoSigma-AldrichP6148
Fosfato de sodio monobásico monohidratoSigma-AldrichS9638
Azul de toluidina OSigma-AldrichT3260
Tetraborato de sodio DecahidratoAcros Organics205950010
IsofluranoPiramalNDC 66794-013-25
Kit de medio de inclusión epoxiSigma-Aldrich45359
Solución de hidróxido de sodioSigma-Aldrich72068Para ajustar el pH fijador de Trump
AcetonaFisher Chemical170942
Solución de tetróxido de osmioSigma-Aldrich75632
Microportaobjetos VWR, Superfrost PlusVWR48311-703
Cubierta de vidrio para microscopioFisher Scientific12545102
Pelco Fundido de incrustaciónFisher ScientificNC9671811
Fabricante de cuchillos de vidrioProductos RMCUltramicrótomo GKM-2
RMC ProductosMT-XL
15 mL Tubo cónicoFalconISO 9001
Eppendorf 1,5 mL Tubos de microcentrífugaSigma-AldrichT9661
4 mL Vial de vidrioSigma-Aldrich854190
Hojas de afeitarVWR55411-050Para recortar bloques de resina
Perfect LoopElectrónica Microscopía Ciencias70944Para recoger secciones finas de resina
Tiras de cuchilla de vidrio ultra 6,4 mm x 25 mm x 400 mmCiencias de la microscopía electrónica71012
Horno de 100 vatiosMillipore 
Whatman Papelde filtro Sigma-AldrichWHA10010155
pipeta de plástico de 3 mLZ331740Sigma-Aldrich
Instrumentosprecisión mundial
MicroscopioCámara CCD dual en color y monocromática, DP80
6350115 Kit microquirúrgico de de fluorescencia Olympus

Referencias

  1. Zacchigna, S., Ruiz de Almodovar, C., Carmeliet, P. Similarities between angiogenesis and neural development: What small animal models can tell us. Current Topics in Developmental Biology. 80, 1-55 (2008).
  2. Grinsell, D., Keating, C. P.

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Reimpresiones y permisos

Etiquetas

Corte con ultramicrotomoProtocolo de fijaci n de nerviosPosfijaci n con tetr xido de osmioInclusi n en resina epoxiTransferencia de cortes finosAn lisis por microscop a pticaEvaluaci n de la mielinizaci n axonal