Method Article

Fractura de diseño de aparatos y optimización de protocolo para las fracturas cerradas-estabilizado en roedores

DOI:

10.3791/58186

⸱

August 14th, 2018

 ,  ,  , 
1College of Osteopathic Medicine, Michigan State University, 2Department of Orthopaedic Surgery, University of Michigan Medical School, 3Lymann Briggs College, Michigan State University, 4College of Engineering, Michigan State University

In This Article

Summary

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

El objetivo del protocolo es optimizar los parámetros de generación de la fractura para producir fracturas constantes. Este protocolo representa las variaciones en el tamaño del hueso y la morfología que puede existir entre los animales. Además, se describe un aparato de fractura económica, ajustable.

Abstract

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

La generación confiable de constantes fracturas estabilizadas en modelos animales es esencial para entender la biología de la regeneración ósea y desarrollar terapias y dispositivos. Sin embargo, modelos de daño disponible están plagados por inconsistencia resultando en animales perdidos y los recursos y datos imperfectos. Para abordar este problema de la heterogeneidad de la fractura, el propósito del método descrito aquí es optimizar parámetros de generación de fractura específicos de cada animal y una ubicación coherente fractura y patrón. Este protocolo representa variaciones en el tamaño del hueso y morfología que puede existir entre las cepas de ratón y puede adaptarse para generar constantes fracturas en otras especies como la rata. Además, se describe un aparato de fractura económica, ajustable. En comparación con las técnicas actuales de fractura estabilizada, el protocolo de optimización y nuevos aparatos de fractura demuestran mayor consistencia en los patrones de fractura estabilizada y ubicaciones. Utilizando optimizado parámetros específicos del tipo de muestra, el protocolo descrito aumenta la precisión de traumas inducidos, minimizar la heterogeneidad de fractura observada típicamente en procedimientos de generación de fractura cerrada.

Introduction

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Investigación sobre la curación de la fractura es necesaria abordar un problema clínico y económico grande. Cada año más 12 millones de fracturas se tratan en los Estados Unidos1, cuesta $ 80 billones por año2. La probabilidad de que un hombre o mujer sufre una fractura en su vida es de 25% y 44%, respectivamente3. Problemas asociados con la curación de la fractura se esperan que aumenten con mayor comorbilidad como la población envejece. Para estudiar y resolver este problema, se requieren sólidos modelos de generación de la fractura y estabilización. Modelos de roedores son ideales para este propósito. Proporciona relevancia clínica y puede ser modificados para condiciones específicas de la dirección (es decir, múltiples lesiones, fracturas abiertas, cerradas, isquémicas e infectadas). Además de replicar escenarios clínicos, modelos de fractura animales son importantes para entender la biología ósea y desarrollar terapias y dispositivos. Sin embargo, intenta estudiar las diferencias entre las intervenciones puede ser complicada por la variabilidad introducida por generación de fractura inconsistente. Por lo tanto, generando fracturas reproducibles y constantemente cerradas en modelos animales es esencial para el campo de Investigaciones Musculo-esqueleticas.

A pesar de correctamente controlar por heterogeneidad de sujeto potencial asegurándose de que el fondo genético apropiado, sexo, edad y condiciones ambientales, la producción de lesiones clínicamente relevantes hueso constante es una variable importante que afecta a reproducibilidad que debe ser controlada. Comparaciones estadísticas mediante fracturas incompatibles están plagadas de ruido experimental y una alta variabilidad4; Además, fractura de variabilidad puede resultar en la muerte innecesaria de animales debido a la necesidad de aumentar el tamaño de la muestra o la necesidad de eutanasia a animales con fracturas conminutas o malpositioned. El propósito del método descrito aquí es optimizar los parámetros de generación de fractura que son específicos al tipo de muestra y una ubicación consistente de la fractura y patrón.

Modelos actuales de generación de la fractura se dividen en dos grandes categorías, cada una con sus propias fortalezas y debilidades. Modelos de fractura abierta (osteotomía) someterse a una cirugía para exponer el hueso, después de que una fractura es inducida por el corte del hueso o debilitarlo y luego manualmente romperla5,6,7,8. Los beneficios de este método son la visualización directa del sitio de la fractura y un lugar de fractura más consistente y un patrón. Sin embargo, la importancia fisiológica y clínica del enfoque y mecanismo de lesión es limitadas. Además, métodos abiertos de generación de la fractura requieren un abordaje quirúrgico y cierre con periodos prolongados durante el cual los roedores están expuestos a un mayor riesgo de contaminación.

Técnicas cerradas abordar muchas de las limitaciones de la técnica abierta. Técnicas cerradas producen fracturas con un trauma de fuerza bruta aplicado externamente que induce lesiones en el hueso y los tejidos circundantes, más similares a las observadas en las lesiones clínicos humanos. El método más común fue descrito por Bonnarens y Einhorn en 19849. Describieron una guillotina ponderada se utiliza para impartir trauma embotado para romper el hueso sin causar heridas externas de la piel. Este método ha sido ampliamente adoptado para estudiar el efecto de la genética10,11, tratamiento farmacológico12,13,14,15, mecánica16, 17y fisiología18,19,20 hueso curativo en ratones y ratas. Mientras que el beneficio de métodos cerrados es fisiológicamente relevantes fracturas, rigor y reproducibilidad experimental está limitada por la heterogeneidad de la fractura. La generación de fractura inconsistente resulta en una diferenciación entre los grupos limitada, muestras perdidas y aumento de animales necesario para alcanzar significación estadística.

Controlar la variabilidad en la generación de la fractura y estabilización es esencial para producir resultados significativos. Para estudiar adecuadamente la biología de la reparación de la fractura, se necesita un modelo de fractura simple, pero muy sólida. El modelo debe ser traducible a roedores, tipos de hueso (fémur o tibias, por ejemplo) y a través de fondos genéticos del ratón variable e inducidos por mutaciones. Además, el procedimiento ideal debe ser técnicamente simple y produce resultados consistentes. Heterogeneidad de fractura de dirección, el método descrito aquí es la construcción de un dispositivo de fractura bien controlada que puede utilizarse para optimizar parámetros y generar fracturas cerradas consistente sin importar edad, sexo o genotipo.

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Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Este protocolo fue desarrollado para garantizar que los animales no se utilizan innecesariamente y se ahorran todo dolor innecesario y sufrimiento; se adhiere a las leyes federales, estatales, locales e institucionales y directrices que rigen la investigación con animales. El protocolo fue desarrollado bajo la dirección de un laboratorio de Universidad de todo programa de medicina Animal dirigido por veterinarios especializado en medicina de animales de laboratorio. El protocolo fue revisado y aprobado por el cuidado institucional del Animal y el Comité uso (IACUC).

1. fractura torre construcción

Nota: Todas las partes se enumeran en la sección de materiales (Tabla de materiales). Dibujos técnicos detallados se proporcionan para las piezas mecanizadas y 3D impreso en las figuras complementarias 1-12. Los dibujos técnicos de subconjunto incluyen los datos de cierre de todas las partes montadas (complementario las figuras 1, 2, 7 y 9).

  1. Subensamble soporte
    Nota: Para un dibujo técnico del subconjunto soporte, ver figura 1 complementaria.
    1. Coloque la Viga de apoyo--sección de mandíbula en el punto medio de la Viga de apoyo, sección Horizontal.
    2. Coloque la Viga de apoyo--1 Vertical a la superficie superior de la Viga soporte--sección de quijada, 2 en la Viga de apoyo, sección Horizontal.
    3. Coloque la Viga de apoyo--2 Vertical a la superficie superior de la Viga de apoyo, sección Horizontal en el punto medio (7 en la final).
    4. Fije la viga, soporte, placa de montaje al extremo de Apoyo viga Vertical 1 y Viga de apoyo--2 Vertical. El extremo del placa soporte debe quedar al ras con la parte posterior de la Viga de apoyo--2 Vertical.
  2. Subconjunto de RAM
    Nota: Para un dibujo técnico del subconjunto de ram, consulte suplementario Figura 2.
    1. La máquina la deje de bloque y el bloque guía complementaria Figura 3; la barra Ram suplementario figura 4; la alineación del tornillo (suplementario Figura 5); y la placa de montaje (suplementario Figura 6).
    2. Fije la Placa de montaje a la Viga de apoyo--placa de montaje el subconjunto de apoyo.
    3. En el orden siguiente, deslice el primer Cojinete lineal de manga; el bloque guía; el segundo Cojinete lineal de manga; y el bloque de parada en la barra Ram. Conecte las guías y los bloques a la Placa de montaje.
    4. Coloque tres anillado en tuercas en la parte roscada de la Varilla de Ram. Uno debe quedar al ras con el extremo de la varilla con el electroimán. Los otros 2 se utilizará para ajustar la profundidad de la fractura.
    5. Alinee el grove en la Barra de Ram la cara hacia adelante y Inserte el Tornillo de alineación en la rosca del Bloque de guía.
  3. Subconjunto de imán
    Nota: Para un dibujo técnico del subconjunto de imán, vea suplementario Figura 7.
    1. El electroimán se conduce al alambre de la soldadura (la polaridad no es un factor para el funcionamiento del electroimán). Permite la suficiente longitud llegar a la planta, donde se colocará el dispositivo de la fractura. Mediante abrazaderas de cremallera u otra forma de apego al estrés aliviar el cable.
    2. La Fuente de alimentacióndel extremo de la tira y conectar el Pedal de pie. Por último, conecte el cable al Pedal del pie en una configuración de "off" (normalmente abierto). Pruebe el circuito para asegurar que el electroimán está encendido cuando no se presiona el Interruptor de pie . Esto mantendrá la ram antes de la fractura.
    3. Imprimir el Montaje de imán (complementario figuras 8A y 8B) usando un dispositivo de fabricación aditiva, o la parte de aluminio de la máquina.
    4. Conectar el electroimán al Montaje de imán.
    5. Coloque las 2 abrazaderas de esquina la viga soporte, imán.
    6. En el siguiente orden, el Imán de barra a través de la Abrazadera de la esquina del hilo de rosca y añadir una ¼ de tuerca; el Imán de montaje; tuercas de ¼ dos; y el Soporte de esquinainferior. Asegure el conjunto con dos ¼ en las tuercas en cada extremo.
  4. Conjunto completo
    Nota: Para un dibujo técnico de la Asamblea completa, ver complementarios Figura 9.
    1. Fije el Sub-ensamble parcial del imán a la superficie superior de la viga, soporte, placa de montaje.
    2. Ajustar la alineación de la Viga de apoyo--imán para que el imán de encaje con la barra, Ram.
      Nota: Si la varilla no la liberan cuando se presiona el pedal, reducir el área de contacto entre el electroimán y la barra moviendo el Imán viga de apoyo.
    3. La máquina de los soportes de la pierna de la mandíbula (suplementario Figura 10).
    4. Fije los dos Soportes de pierna quijada a la Viga de apoyo--sección de mandíbula. Cuando se deja caer, la punta de la ram debe ser a la misma distancia de cada mandíbula.
    5. Lugar de la Fractura de la plataforma (figuras complementarias 11A y 11B) por encima de las mandíbulas.
    6. Imprimir la Plantilla posicionamiento fractura (figuras complementarias 12A y 12B) y el Calibrador de perno de plantilla (figuras complementarias 13A y 13B) usando un dispositivo de fabricación aditiva, o máquina de la piezas de aluminio.
      Nota: Las dimensiones de las plantillas se calculará en los pasos de optimización detallados en el paso 2.
    7. Coloque la plantilla posicionamiento fractura a la fractura de la plataforma.
    8. Confirmar que se puede ajustar la profundidad del impacto con las tuercas de dos parada en la Barra de memoria Ram.
    9. Confirmar que la velocidad del impacto se puede ajustar moviendo el Imán de montaje hacia arriba y hacia abajo.
    10. Confirmar que la anchura de la fractura se puede ajustar moviendo la Mandíbula de pierna de los soportes más cerca o más lejos de la Barra de memoria Ram.

2. optimización de la fractura

  1. Localización de la fractura
    1. Obtener radiografías de las extremidades (fémur o tibia) a ser fracturada en una muestra representativa de 5 animales de sacrificio.
      Nota: La muestra debe corresponder a los ejemplares, que serán utilizados en el protocolo experimental basado en edad, genotipo y sexo. Aunque el protocolo final pide sólo una extremidad fracturada, se utilizarán ambos miembros de la muestra.
    2. Posición de la extremidad tangencial al haz de rayos x adquirir vistas true-lateral y anterior posterior hasta el hueso. Coloque un objeto de dimensiones conocidas en el plano de proyección de imagen para proporcionar una escala de análisis.
    3. Nota: Si imagen fémur, asegúrese que la extremidad está en extensión completa, donde el fémur está en el mismo plano axial como la tibia.
    4. Marque la ubicación de la fractura en la radiografía de la extremidad que fractura (figura 1A - línea discontinua). Medida de la articulación calcáneo tibial a nivel de la fractura marcado (figura 1A). Calcular la longitud de fractura media (FL) de todos los especímenes de ensayo. Mida desde la muesca intercondílea para fracturas de fémur.
  2. Plantilla de colocación de fractura
    1. Mida la distancia desde la superficie exterior del yunque de apoyo al centro de las repercusiones de la guillotina (CGI) (figura 2). Reste el CGI de la FL, descrito en el paso 2.1.4, para calcular la profundidad de plantilla colocación de fractura (JD). Máquina o 3D-impresión de un canal en forma de U con una altura y una anchura igual al yunque y una profundidad igual a la JD (figura 3A). Una muestra de dibujo técnico y CAD archivo se incluyen en figuras complementarias 12A y 12B.
      Nota: Cuando el miembro se coloca en la plantilla, el dorso del pie debe mentir contra la superficie más alejados del impacto de la guillotina. Modificar el canal en forma de U si el espacio adicional es requerido para la extremidad.
    2. Coloque al espécimen en el aparato de fractura en la posición prona para fracturas de fémur o en la posición supina para las fracturas de la tibia (figura 4). Presiona el dorso de los pies contra el extremo de la plantilla de colocación de fractura. Presione manualmente la guillotina hasta las fracturas de la extremidad. Obtener una radiografía de la extremidad fracturada para confirmar la localización de fractura y tamaño de plantilla (figura 2B).
    3. Aumentar JD si la fractura es demasiado distal del hueso, o disminuir JD si la fractura es muy proximal del hueso.
  3. Estabilización de los parámetros de pin
    1. Longitud de pin: Con las radiografías obtenidas en el paso 2.1, mida la longitud de la extremidad (LL) de la meseta tibial a nivel del maléolo posterior para las fracturas de la tibia o la muesca intercondílea para el trocánter mayor de fémur fracturas. Multiplique la longitud del hueso por 0,9 para calcular la longitud del perno (PL) (figuras 1A y 3B).
    2. Perno ancho: Con las radiografías obtenidas en el paso 2.1, mida el diámetro medular mínimo (MD) en la extremidad fracturada (figura 1A). Seleccione la aguja con un calibre de aproximadamente equivalente al diámetro medular y una longitud de más de 1,5 x PL.
      Nota: Un tamaño aproximado de pin para un ratón C57BL/6J de 14 semanas de edad es de 22 G, 1½ en y G 27, 1¼ en fémur y tibia, respectivamente.
  4. Medidor de corte de PIN
    1. 2.4.1. la máquina o 3D-impresión de un calibre con una longitud igual a PL menos la longitud de la aguja (CGL) (figura 3B; Complementarias figuras 13A y 13B). Un extremo debe tener un saliente para descansar contra el eje de la aguja y el otro debe indicar donde se debe cortar el pin. Una muestra de dibujo técnico y CAD archivo se incluyen en complementario figuras 13A y 13B.
  5. Estabilización de fractura pin intramedular
    1. Usando a los especimenes de ensayo no fracturada de paso 2.1, quitar el pelo con una maquinilla eléctrica o crema depilatoria de medio tibia fémur media, exponer la articulación de la rodilla.
    2. Fijación de tibia: introducir la aguja por vía percutánea lateral al ligamento rotuliano. Retracción del ligamento patelar medial y alinear la punta de la aguja al eje de la tibia. Suavemente con un movimiento de escariado, incumplimiento de la meseta tibial y guiar la aguja hacia abajo de la cavidad medular.
    3. Clavos de fémur: introducir la aguja por vía percutánea lateral al ligamento rotuliano. Retracción del ligamento patelar medial y alinear la punta de la aguja al eje del fémur en la muesca intercondílea. Suavemente con un movimiento de escariado, romper la superficie articular de la muesca intercondílea y guiar la aguja hacia abajo de la cavidad medular.
    4. Usando el calibre fabricado en el paso 2.4, escariar hasta que la aguja expuesta es igual a la longitud de la galga. Retraer la aguja para proporcionar suficiente espacio (~ 3 mm) para cortar la aguja en el nivel indicado por el manómetro.
      Nota: Asegúrese de sostener el extremo proximal (plástico) de la aguja durante el corte, por lo que no se vuelve un proyectil peligroso.
    5. 0.3 mm del extremo distal del perno usando un cortador de perno de la encrespadura y cortan el perno a nivel del manómetro. Hunde el pasador de la superficie articular con una varilla con un diámetro de 1.5 x más grande que el diámetro de la aguja.
      Nota: Prensa evita la rotación de la aguja y la migración aumentando el contacto de la aguja de hueso.
    6. Obtener radiografías para confirmar la aguja extiende a lo largo del canal medular de la extremidad y no sobresalga del extremo proximal o distal (figura 1C).
  6. Profundidad del impacto
    1. Con las radiografías obtenidas en el paso 2.1, mida el diámetro de la corteza a nivel de la fractura deseada (figura 1A). Calcular el diámetro medio de la cortical (CD) para todos los especímenes de ensayo.
    2. Coloque a un ejemplar de prueba fijado de paso 2.5 en el dispositivo de la fractura con la plantilla fractura de posicionamiento, fabricada en el paso 2.2. El martillo de impacto se basan en las extremidades lesionadas.
      Nota: No permita que la memoria ram a la gota; el hueso debe permanecer intacto durante este paso de optimización.
    3. Aplique fuerza hacia abajo lo suficiente en el memoria ram para comprimir los tejidos blandos, pero no fracturar el hueso. Ajuste la profundidad del impacto (ID) a 0.75 x CD (figura 2).
      Nota: La profundidad de impacto ideal es 0,5 x CD cuando se fractura un hueso sin ningún tejido blando. Utilizando cuentas de 0,75 para la compresión de tejido blando adicional.
  7. Anchura de yunque
    1. Establecer el ancho de yunque (AW) a 0,4 cm para el ratón tibia o fémur (figura 2).
      Nota: Una anchura más amplia se recomienda para muestras más grandes tales como las ratas.
  8. Peso de RAM
    1. Se recomienda un peso mínimo de 250 g para ejemplares murinos.
      Nota: Peso adicional puede enroscarse en la ram para especímenes más grandes (figura 2).
  9. Velocidad de impacto
    1. Ajustar la altura de descenso (DH) a 2 cm (figura 2). Coloque el pistón en su posición inicial conectando al electroimán activado.
    2. Posición de miembro de ensayo en el aparato de fractura. Presiona el dorso de los pies contra la plantilla fractura de posicionamiento, fabricado en el paso 2.2. Presione brevemente el pedal para liberar la memoria ram y luego restaura a su posición inicial.
    3. Radiografía de la extremidad afectada ensayo. Análisis de la extremidad para cualquier evidencia de una fractura (figura 1D).
      Nota: Esto puede ser sutil cuando se usa a bajas velocidades con una profundidad de impacto controlado.
    4. Si no hay fractura se genera, repita los pasos 2.9.1 - 2.9.3 y aumentar la altura de la gota de 2 cm.
    5. Si se genera una fractura, registrar la altura de caída y multiplicar por 1.1. Este es el nuevo DH.
    6. Usando el DH de paso 2.9.5, fractura de la extremidad ensayo siguiente.
    7. Si no hay fractura se genera, repita los pasos 2.9.1 - 2.9.6 y aumentar la altura de la gota de 2 cm.
    8. Si una fractura es generados, repita pasos 2.9.6 - 2.9.7 hasta que todas las muestras de prueba se utilizan. Registrar el final DH y todos los parámetros (FL, CGI, JD, PL, MD, PS, CGL, CD, ID, AWy RW) de la optimización. Registrar las muestras prueba edad, sexo, genotipo y peso.

3. cerrado-estabilizar fractura generación

  1. Puesta a punto
    1. Esterilizar todo el equipo y los instrumentos por medio de autoclave, inmersión caliente del grano o sus equivalentes.
    2. Coloque un elemento de calentamiento en la mesa quirúrgica y ajustar a la temperatura óptima. Cubrir el elemento con un paño quirúrgico. Preparar 3 x 3 en la2 del paño quirúrgico con un círculo de 0.75 en cortar en el medio.
    3. Confirmar el ajuste de la torre de fractura antes de cada ensayo (figura 2). Establezca la ID, AW, RWy DH en los valores derivados del Protocolo de optimización específico para el sexo, la edad y el genotipo de la muestra a estudiar.
    4. Pesar y registrar el peso del animal.
  2. Cirugía
    1. SEDAR adecuadamente el ratón utilizando anestésicos inhalantes (isoflurano: 4-5% para la inducción; 1-2% para mantenimiento) u otro establecido protocolo de anestesia del laboratorio. La frecuencia respiratoria debe ser 55-100 respiraciones/min. El animal no deberían responder a una pizca de-extremidades del dedo del pie.
    2. Administrar la primera dosis de buprenorfina de la analgesia postoperatoria (0.1 mg/kg por vía subcutánea).
    3. Aplique lubricación ocular para prevenir la desecación corneal.
    4. Quite pelo del animal con una maquinilla eléctrica de medio tibia fémur media, exponer la articulación de la rodilla. Limpie el sitio de exceso de vello usando cinta no reactiva. Prepare el sitio de fijación con un bastoncillo mojado humedecido con el 70% EtOH. Repita como sea necesario para eliminar todo el vello de la zona de incisión.
    5. Prepare y limpie el área de fijación con hisopos alternativos de povidona-yodo y el 70% EtOH. Utilice dos secuencias de hisopo alternativo para garantizar la esterilidad.
    6. Una cortina se coloca alrededor del sitio quirúrgico después de que la piel ha sido desinfectada apropiadamente.
    7. Eje de la extremidad a ser fracturada usando el protocolo descrito en el paso 2.5. Adquirir las radiografías para confirmar el perno extiende a lo largo del canal medular pero no sobresalga del extremo proximal o distal.
    8. Encienda el electroimán y conecte el martillo de impacto para colocarlo en la posición inicial.
    9. Coloque al espécimen en el aparato de fractura colocando en una posición propensa para fracturas de fémur o en supinación para las fracturas de tibia. La extremidad fijada debe colocarse en los yunques y en la plantilla de colocación de fractura con el dorso del pie prensado contra la parte exterior de la plantilla.
    10. Mientras presiona el pie con una mano y garantizar que sólo la extremidad está en el impacto ram área objetivo, presione brevemente el pedal para liberar la memoria ram. Vuelva a colocar el pistón en la posición inicial.
    11. Adquirir las radiografías y confirmar la localización de la fractura y el tipo.
  3. Tratamiento postoperatorio
    1. Supervisar al animal cada 15 minutos durante su recuperación de la anestesia hasta que el animal está consciente, puede mantener recumbency esternal y es ambulatoria. Confirmar que el animal es capaz de andar durante un período de 72 h.
    2. Casa el animal individualmente hasta que haya recuperado completamente.
    3. Mantener analgesia durante un período de 48 h con buprenorfina (0.1 mg/kg por vía subcutánea) administrada cada 12 h.
    4. Supervisar y registrar el estado de salud del animal diariamente durante 7-10 d o hasta la eutanasia.
  4. Análisis de la fractura
    1. Medida FL, PL, CD, MD y el patrón de fractura. Anote las mediciones en un archivo de datos principal.

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Results

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

La guillotina usada previamente en nuestro laboratorio se desarrolló en 2004 y se basó en modelos publicados por Einhorn21. El diseño no permite ajustes para tener en cuenta adecuadamente las diferencias en la morfología ósea y no permite un posicionamiento reproducible de la extremidad. Además, el aparato anterior requiere dos personas para operarla. Por lo tanto, diseñamos, diseñado y había construido un nuevo aparato de fractura. El objetivo de diseño principal ...

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Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Este protocolo de optimización y generación de fractura ofrece a los investigadores con un método eficiente para derivar en parámetros de fractura y realizar un procedimiento mínimamente invasivo, que produce fracturas precisas, repetibles y transversales. Además, este Protocolo establece un conjunto común de parámetros de generación de fractura, que promueve la consistencia del método entre los investigadores. Estos parámetros permitirán la creación de una base de datos común de fractura para establecer patrones de frac...

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Disclosures

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Los autores no tienen nada que revelar.

Acknowledgements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

La investigación en esta publicación fue apoyada por el Instituto Nacional de artritis y lesiones músculo-esqueléticas y enfermedades de la piel de los institutos nacionales de salud, bajo la concesión número F30AR071201 y R01AR066028.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
soporte fuerte< / Figurasuplementaria
1 viga, soporte--sección de mordaza 80/201003 x 9.00con #7042 en A, C, en el extremo izquierdo
Viga, Soporte--Sección Horizontal80/201002 x 14.00
Viga, Soporte--Vertical 180/201050 x 10.50 con #7042 en la A en el extremo izquierdo y en la A en el extremo derecho
Viga, Soporte--Vertical 280/201010 x 10.50 con #7042 en D, B en el extremo izquierdo y en A en el extremo derecho
Viga, soporte: montaje de placa80/201030 x 8.00  con #7036 en el extremo izquierdo
Viga, soporte--Imán80/201010 x 13.50 con #7042 en A, C, en el extremo derecho
Anclajes (3)80/203392
Anclaje doble (3)80/203091
Conjunto de pernos (6)80/2033861/4-20 x 3/8"
Tornillo de cabeza hueca de botón (6)80/2036041/4-20 x 3/4
"Conjunto de arieteFigura suplementaria 2
Bloque, topeFigurasuplementaria
, guíaFigura suplementariapersonalizada
Varilla, arieteFigura suplementariapersonalizada
Tornillo de alineaciónFigura suplementariapersonalizada
placa, montajeFigura suplementariapersonalizada
Cojinete de manguito lineal (2)McMaster-Carr8649T2
Tuerca hexagonal (3)McMaster-Carr92673A1253/8-16 UNC
Tornillo de cabeza hueca (8)McMaster-Carr92196A1084/40 x 3/8"
Tornillo de cabeza hueca (6)McMaster-Carr92196A0324/40 x 1 1/8"
Tornillo de cabeza hueca (1)McMaster-Carr92196A267 10/32 3/8"
imán fuerteFigura 7
Montaje, imánFigura complementariapersonalizada
Fuente de alimentaciónInterruptor de pie McMaster-Carr70235K23
Electroimán McMaster-Carr7376k2
CableMcMaster-Carr5698k111
- 10 piesMcMaster-Carr9936k12
Varilla, ImánMcMaster-Carr95412A566Varilla roscada de 1/4" x
Soporte de esquina de 7" (6)80/204108
Tornillo de cabeza hueca (1)McMaster-Carr92196A70510/32 1 1/4"
Tuerca hexagonal (4)McMaster-Carr92673A1131/4-20 UNC
Montaje completoFigura suplementaria Soporte 9
, mandíbula de la pierna (2)Figura suplementariapersonalizada
Plataforma, fracturaPlantilla suplementariapersonalizada
posicionamiento-fracturaFigura suplementariapersonalizada
Otro
pasadorSuministros y equipos médicos150S Agujas
Sigma Z192430, Z192376 23g x 1.5" - fémur de ratón, 27g x 1.25" - tibia de ratón
> personalizada Bloque 3 3 4 5 Figura 6 8 10 figura 11, 12Cortador de

References

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