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Artículo de método

Desentrañando los jugadores claves de inmunidad Humoral: avanzada y Protocolo de aislamiento de linfocitos de parches Murine placas de Peyer

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DOI:

10.3791/58490

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21 de noviembre de 2018

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En este artículo

Resumen

En este estudio, presentamos un novedoso y eficaz protocolo para el aislamiento de los linfocitos de las placas de Peyer (PP), que pueden utilizarse posteriormente para ensayos funcionales en vivo y en vitro como en estudios de citometría de flujo folicular t helper y células del centro germinal B.

Resumen

En la mucosa intestinal, células inmunes constituyen una entidad única de la inmunológica, que promueve la tolerancia inmunológica mientras que al mismo tiempo que confiere defensa inmune contra patógenos. Está bien establecido que placas de Peyer (PPs) tienen un papel esencial en la red inmune mucosa alojando varios efectoras T y células B subconjuntos. Una cierta fracción de estas células efectoras, ayudante T folicular (TFH) y las células de B de centro germinal (CG) se profesionalizó en la regulación de la inmunidad humoral. Por lo tanto, la caracterización de estos subconjuntos de la célula dentro de PPs en términos de su programa de diferenciación y propiedades funcionales puede proporcionar información importante sobre inmunidad mucosa. Para ello, un método fácilmente aplicable, eficiente y reproducible de aislamiento de linfocitos de PPs sería valioso para los investigadores. En este estudio, el objetivo fue generar un método efectivo para aislar los linfocitos de ratón PPs con rendimiento alto de la célula. Nuestro enfoque reveló ese tejido inicial procesamiento tales como el uso de reactivos digestivos y agitación de tejido, así como coloración condiciones y selección de los paneles de anticuerpos de la célula, tienen gran influencia en la calidad y la identidad de los linfocitos aislados y en resultados experimentales.

Aquí, describimos un protocolo permitiendo a los investigadores aislar eficientemente las poblaciones de linfocitos de PPs permitiendo reproducible flujo cytometry-evaluación de subconjuntos de T y células B centrándose principalmente en TFH y GC B subconjuntos de la célula.

Introducción

Todo el tracto gastrointestinal desde el principio hasta el final se viste de gala con una extensa red linfoide que contiene las células inmunes más que cualquier otro órgano humano y ratón1. Peyer de parches (PPs) constituyen un componente importante de la sección intestinal de esta organización celular inmune, llamado tejido linfoide asociado a intestino (GALT)2,3. En PPs, miles de millones de antígenos derivados de materiales alimenticios, patógenos y microbiota comensal que se muestrean continuamente, y cuando es necesarias respuestas inmunes adecuadas hacia ellos están montado así ....

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Protocolo

Todos los estudios y experimentos descritos en este protocolo se llevaron a cabo bajo los lineamientos de acuerdo institucional cuidado Animal y el Comité uso (IACUC), de Beth Israel Deaconess Medical Center.

1. diseño de montaje Experimental y grupos de ratón

  1. (Opcional) Co casa de los ratones experimentales para facilitar la transmisión horizontal de la microbiota intestinal entre ratones experimentales y para reducir la variabilidad no específicos dentro de los linfocitos PP. Además, utilizar controles littermate del mismo género para reducir al mínimo variabilidad.

2. extirpación y pasos de prepa....

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Resultados

En contraste con un anterior protocolo20, hemos observado que PPs no se distribuyen uniformemente a lo largo de la is, pero se localizan más densamente hacia el extremos distal y proximal de la is como se muestra en figura 1A. Análisis cytometric del flujo demostró que, si siguen correctamente nuestro protocolo da una población de linfocitos PP que demuestra la distribución de dispersión hacia delante.......

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Discusión

Aquí, describimos un protocolo optimizado para caracterización de citometría de flujo de células TFH y B GC. Una de las principales ventajas de nuestro protocolo es que permite el aislamiento de hasta 107 (promedio 4 a 5 x 106 células) total PP las células de un ratón (cepa C57BL/6) sin ningún proceso digestivo. Observamos que el rendimiento total de la célula se correlacionó positivamente con el número de PPs y que podría estimarse de la siguiente ecuación simple que es útil para la planificación e.......

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Divulgaciones

No hay conflicto de interés declarado.

Agradecimientos

Nos gustaría agradecer a Laura Strauss y Peter Sage para discusiones útiles y ayuda con los análisis de citometría de flujo.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
anticuerpo CD4 contra ratoneseBioscience, Biolegend*17-0041-81 ,10054*Para obtener información detallada, consulte la Tabla 1
anticuerpo CD19 contra ratoneseBioscienceMA5-16536Para obtener información detallada, consulte la Tabla 1
anticuerpo PD-1 contra ratoneseBioscience61-9985-82Para obtener información detallada, consulte la Tabla 1
Anticuerpo anti-ratones ICOSeBioscience12-9942-82Para obtener información detallada, consulte la Tabla 1
anti-ratón GL7 anticuerpo Biolegend144610Para obtener información detallada, consulte la Tabla 1
anti-ratón CXCR5 anticuerpo Biolegend*, BD Bioscience145512*, 551960Para obtener información detallada, consulte la Tabla 1
anti-ratón BCL-6 anti-ratón Biolegend358512Para obtener información detallada, consulte la Tabla 1
anti-ratón Foxp3 anticuerpoeBioscience17-5773-82Para obtener información detallada, consulte la Tabla 1
Estreptavidina-BV421BD Bioscience563259Para obtener información detallada, consulte la Tabla 1
Tinte de viabilidad fijableeBioscienceL34957Para obtener información detallada, consulte la Tabla 1
7AADBiolegend420404Para obtener información detallada, consulte la Tabla 1
FcBlock (CD16/32)BD Bioscience553141Para obtener información detallada, consulte la Tabla 1
Colagenasa IIWorthingtonLS004176
Colagenasa IVWorthingtonLS004188
Foxp3/Juego de tampones de tinción de factor de transcripcióneBioscience00-5523-00
Placas de 6 pocillos, 12 pocillos y 96 pocillosFalcon/Corning353046,353043/3596
Tubos cónicos de 50 mLFalcon3520
40 y micro; colador de célulasm Falcon352340
10 mL émbolo de jeringaExel INT26265
RPMICorning15-040-CV
PBSCorning21-040-CM
FBSAtlanta BiologicalsS11150
Agitador orbitalVWRModelo 200
Tijera
dentada fina
Tijera
de extremo curvoPinza curva pequeña

Referencias

  1. van den Berg, T. K., van der Schoot, C. E. Innate immune ‘self’ recognition: a role for CD47-SIRPα interactions in hematopoietic stem cell transplantation. Trends in Immunology. 29 (5), 203-206 (2008).
  2. Mowat, A. M., Agace, W. W.

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Reimpresiones y permisos

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