Se describe un sencillo procedimiento litográfico para la inmovilización de las moléculas de ADN del gen-longitud sobre una superficie, que puede utilizarse para llevar a cabo experimentos de expresión génica sin células en biochips.
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Artículo de método
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Se describe un sencillo procedimiento litográfico para la inmovilización de las moléculas de ADN del gen-longitud sobre una superficie, que puede utilizarse para llevar a cabo experimentos de expresión génica sin células en biochips.
Inmovilización de genes en superficies litográfico estructurados permite el estudio del gen compartimentado procesos de expresión en un sistema de biorreactor de microfluidos abierto. En contraste con otros enfoques hacia sistemas celulares artificiales, tal configuración permite un suministro continuo con gene expresión reactivos y drenaje simultáneo de productos de desecho. Esto facilita la implementación de procesos de expresión génica sin células durante largos períodos de tiempo, lo cual es importante para la realización de sistemas de retroalimentación reguladora de genes dinámico. Aquí proporcionamos un protocolo detallado para la fabricación de biochips genéticos utilizando una técnica litográfica de simple-to-use basada en reacciones de desplazamiento de hebra de ADN, que utiliza exclusivamente los componentes comercialmente disponibles. También proporcionamos un protocolo sobre la integración de genes compartimentadas con un polidimetilsiloxano (PDMS)-sistema de microfluidos. Por otra parte, nos muestran que el sistema es compatible con microscopía de fluorescencia (TIRF) de reflexión interna total, que puede ser utilizado para la observación directa de las interacciones moleculares entre el ADN y las moléculas contenidas en la mezcla de la expresión.
Libre expresión génica, las reacciones son de gran interés para diversas aplicaciones en Bioquímica, biotecnología y biología sintética. Libre expresión de las proteínas fue instrumental para la preparación de las muestras de proteína pura, que fueron la base para numerosos estudios de biología estructural. Por ejemplo, sistemas libres de células fueron utilizados con éxito para la expresión de la proteína complejos1 o membrana proteínas2, que son difíciles de producir con la expresión de la célula. En particular, libre expresión génica reacciones también fueron utilizadas para dilucidar la estructura del código genético....
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Nota: Un calendario para las medidas en las diferentes secciones se da en la información complementaria (sección 1).
1. fabricación de microchips
Nota: como substratos obleas de silicio de uso (100 mm de diámetro, 0,525 mm de espesor) con una capa gruesa de 50 nm de dióxido de silicio o vidrio portaobjetos (24 mm x 24 mm, no. 1.5; 22 mm x 50 mm, no. 4). Dependiendo de la aplicación, otros tamaños y espesores pueden ser más convenientes.
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Litografía de dos etapas: la figura 5 muestra el resultado de un proceso de dos pasos litográficos en un portaobjetos de vidrio con la superposición de patrones de fluorescencia etiquetada DIS hilos.
Expresión de una proteína fluorescente de un cepillo de gene: figura 6 demuestra la expresión de la proteína fluorescente YPet de DNA inmovilizado. En varios puntos de tiem.......
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Bephore litografía es una técnica robusta y versátil para el modelado inmovilización de ADN o ARN. Sin embargo, el procedimiento incluye varios pasos, que - si - pueden ser una fuente de fracaso o menor rendimiento del sistema.
Un paso crucial en la fabricación de chips de Bephore es la pegilación del sustrato, que proporciona la biocompatibilidad de la superficie. Aquí, el paso de limpieza con un procedimiento RCA es importante, ya que también activa la superficie para la silanización posteri.......
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Los autores declaran que no tienen intereses que compiten.
Agradecemos el apoyo financiero para este proyecto por la Volkswagen Stiftung (grant no. 89 883) y el Consejo Europeo de investigación (beca Convenio Nº 694410 - AEDNA). M.S.-S. agradece apoyo por el DFG a través de GRK 2062.
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| Nombre | Empresa | Número de catálogo | Comentarios |
|---|---|---|---|
| Oblea de silicio con dióxido de silicio de 50 nm (sustrato Bephore)Espesor de | la oblea | (µ m): 525 y más; 25, diámetro (mm): 100 | |
| oblea de silicio (para molde maestro PDMS) | de la oblea | (µ m): 525 y más; 25, Diámetro (mm): 76.2 (3") | |
| Portaobjetos de vidrio n.º 4 | Menzel | 22 mm x 50 mm | |
| Portaobjetos de vidrio n.º 1.5 | Auxiliar | 24 mm x 24 mm | |
| Biotina-PEG-Silano | Laysan Bio | MW 5.000 | |
| Tolueno anhidro | Sigma Aldrich (Merck) | 244511 | |
| Estreptavidina | Thermo-Fisher Scientific | S888 | |
| ADN | Tecnologías de ADN integradas ( IDT) | ||
| Phusion Mezcla maestra de PCR de alta fidelidad con tampón HF New | England Biolabs | M0531S | Kit de PCR |
| Wizard SV Gel y sistema de limpieza de PCR | Promega | A9281 | Kit de limpieza de PCR con columna de centrifugación |
| PURExpress | New England Biolabs | E6800S | Sistema de expresión libre de células |
| PDMS | Dow Corning | Slygard 184 | |
| FluoSpheres | Thermo-Fisher Scientific | F8771 | |
| Tubo de PTFE (ID: 0,8 mm, OD: 1,6 mm) | Bola | S 1810-10 | |
| EpoCore 20 | tecnología micro resist | Photoresist | |
| mr-Dev 600 | micro resist technology | Revelador fotorresistente | |
| Ti-Prime | MicroChemicals | Promotor de adherencia | |
| Pegamento de silicona de dos componentes | Picodent | Twinsil | |
| Lámina amarilla con protección UV | Lithoprotect (via MicroChemicals) | Y520E212 | |
| Equipment | |||
| Mascarillas para fotolitografía | Zitzmann GmbH | 64.000 dpi, 180x240 mm | |
| Microscopio vertical | Olympus | BX51 | Fotolitografía e imágenes de fluorescencia |
| Objetivo de inmersión en agua 60x | Olympus | LumPlanFl | Utilizado con Olympus BX51, NA 0.9 |
| Objetivo de inmersión en agua 20x | Olympus | LumPlanFl | Utilizado con cámaras Olympus BX51, NA 0.5 |
| Fotometría | Coolsnap HQ | Utilizado con Olympus BX51 | |
| Fuente de luz | EXFO | X-Cite 120Q | Utilizado con Olympus BX51 |
| Microscopio invertido | Nikon | Ti2-E | Fluorescencia Imagen de la expresión génica |
| Objetivo 4x | Nikon | CFI P-Apo 4x Lambda | Se utiliza con la cámara Nikon Ti2-E |
| Andor | Neo5.5 | Se utiliza con Nikon Ti2-E | |
| Fuente de luz | Lumencor | SOLA SM II | Se utiliza con la incubadora de jaula Nikon Ti2-E |
| Okolab bold | line | Se utiliza con el controlador de presión Nikon Ti2-E | |
| Elveflow | OB1 MK3 | ||
| Nanofotómetro | Implen | Medición de la concentración | |
| Limpiador de plasma | Diener | Femto | 200 W, operado a 0,8 mbar con la muestra en una jaula de Faraday |
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