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Artículo de método

Microfoco CT de rayos X (microCT) Imagen de Actinia equina (Cnidaria), Harmothoe sp. (Annelida) y Xenoturbella japonica (Xenacoelomorpha)

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DOI:

10.3791/59161

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6 de agosto de 2019

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En este artículo

Resumen

Aquí, los protocolos para realizar imágenes de tomografía computarizada de rayos X de microfoco (microCT) de tres animales invertebrados marinos se explican en detalle. Este estudio describe los pasos tales como la fijación de muestras, la tinción, el montaje, el escaneo, la reconstrucción de imágenes y los análisis de datos. También se proporcionan sugerencias sobre cómo se puede ajustar el protocolo para diferentes muestras.

Resumen

Tradicionalmente, los biólogos han tenido que depender de métodos destructivos como la sección para investigar las estructuras internas de los organismos opacos. La tomografía computarizada por rayos X de microfoco no destructivo (microCT) se ha convertido en un protocolo potente y emergente en biología, debido a los avances tecnológicos en los métodos de tinción de muestras e innovaciones en hardware de microCT, computadoras de procesamiento y datos software de análisis. Sin embargo, este protocolo no se utiliza comúnmente, como lo es en los campos médico e industrial. Una de las razones de este uso limitado es la falta de un manual sencillo y comprensible que cubra todos los pasos necesarios: recolección de muestras, fijación, tinción, montaje, escaneo y análisis de datos. Otra razón es la gran diversidad de metazoos, particularmente invertebrados marinos. Debido a los diversos tamaños, morfologías y fisiologías de los invertebrados marinos, es crucial ajustar las condiciones experimentales y las configuraciones de hardware en cada paso, dependiendo de la muestra. Aquí, los métodos de imágenes microCT se explican en detalle utilizando tres invertebrados marinos filogenéticamente diversos: Actinia equina (Anthozoa, Cnidaria), Harmothoe sp. (Polychaeta, Annelida) y Xenoturbella japonica ( Xenoturbellida, Xenacoelomorpha). También se proporcionan sugerencias sobre la realización de imágenes microCT en varios animales.

Introducción

Los investigadores biológicos generalmente han tenido que hacer secciones delgadas y realizar observaciones por microscopía ligera o electrónica con el fin de investigar las estructuras internas de los organismos opacos. Sin embargo, estos métodos son destructivos y problemáticos cuando se aplican a especímenes raros o valiosos. Además, varios pasos en el método, como la incrustación y la sección, consumen mucho tiempo, y pueden tardar varios días en observar una muestra, dependiendo del protocolo. Además, al manipular numerosas secciones, siempre existe la posibilidad de dañar o perder algunas secciones. Las técnicas de limpieza de tejidos están disponibles para algu....

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Protocolo

1. Fijación

  1. Para Actinia equina,relajar a los animales en 10% MgCl2 agua de mar durante unos 15 minutos a temperatura ambiente. Transfiera al 70% de etanol y almacene a temperatura ambiente.
  2. Para Harmothoe sp., anestesiar a los animales colocándolos en agua de mar helada durante unos 15 minutos. Traslado a una solución de formalina del 10% (v/v) con agua de mar y almacenar a temperatura ambiente.
  3. Para Xenoturbella japonica,relaja al animal usando 7% MgCl2 en agua dulce. Fijar en 4% paraformaldehído (PFA) en agua de mar filtrada durante la noche. Colocar en 70% etanol y almacenar a 4oC.
    A....

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Resultados

Realizamos imágenes microCT en A. equina (Anthozoa, Cnidaria), Harmothoe sp. (Polychaeta, Annelida) y X. japonica (Xenoturbellida, Xenacoelomorpha) después de manchar las muestras con 25% de solución lugol. La tinción mejoró con éxito el contraste de las estructuras internas en todos los especímenes, permitiendo observaciones de los tejidos blandos internos (Figura6). Junto con informes anteriores6,7,<.......

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Discusión

Se sabe que los fijadores que utilizan formalina, como la solución de formalina del 10% (v/v) en el agua de mar utilizada en este estudio, preservan la morfología de diversos invertebrados marinos y se utilizan a menudo para imágenes microCT18,24,25 ,26,28,30,33. Sin embargo, las restriccio.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Nos gustaría agradecer a Toshihiko Shiroishi por su ayuda y por proporcionar el entorno de investigación durante este estudio. Agradecemos a Kensuke Yanagi y Takato Izumi por el asesoramiento sobre A. equina,y Masaatsu Tanaka por consejos sobre el espécimen Harmothoe sp. Nos gustaría agradecer al personal del Centro de Investigación Marina de Shimoda, universidad de Tsukuba, y de la Estación Biológica Marina misaki, la Universidad de Tokio, por su ayuda en colecciones de muestras. Nos gustaría agradecer a Editage (www.editage.jp) por la edición en inglés. Este trabajo fue apoyado por la JSPS Grant-in-Aid for Young Scientists (A) (JP26711022) a HN, y ....

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Matraz Erlenmeyer de 250 mlCorningCLS430183
5 ml Tubo de muestreo ST-500BIO-BIK103010
50 ml Tubo de polipropilenoGreiner Bio One International227261
60 mm Plato sin tratarIWAKI1010-060
AgarosaPromegaV3125
Punta de grado ecológico (azul) 1000 y micro; lBMBioBIO1000RF
EtanolWako Industrias Químicas Puras057-00451
FormalinaWako Industrias Químicas Puras061-00416
YodoWako Industrias Químicas Puras094-05421
Cloruro de magnesio hexahidratadoWako Industrias Químicas Puras135-00165
Visor DICOM OsiriXPixmeo SARLOsiriX MD v10.0
https://www.osirix-viewer.com ParaformaldehídoWako Pure Chemical Industries163-25983
Aguja peciolatoAS ONE2-013-01
Micropipeta Pipetman P200GILSONF123601
Pipetman P1000 MicropipetaGILSONF123602
Yoduro de potasioWako Pure Chemical Industries166-03971
Pinzas de precisión 5DUMONT0302-5-PS
QuickRack MultI punta de ajuste (amarillo) 200 ulSorenson10660
Hojas de afeitarFeatherFA-10
Pinzas de anilloNAPOXA-26
Microscopio estereoscópicoLeicaMZ95
sistema de imagen de micro-TC de rayos XComscantechnoScanXmate-E090S105

Referencias

  1. Susaki, E. A., Tainaka, K., Perrin, D., Yukinaga, H., Kuno, A., Ueda, H. R. Advanced CUBIC protocols for whole-brain and whole-body clearing and imaging. Nature Protocols. 10, 1709-1727 (2015).
  2. Susaki, E. A., Ueda, H. R.

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Reimpresiones y permisos

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