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Artículo de método

Cultivos de rebanadas flotantes a corto plazo del cerebro humano adulto

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DOI:

10.3791/59845

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5 de noviembre de 2019

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En este artículo

Resumen

Se presenta un protocolo para preparar cultivos de rebanadas flotantes a partir del cerebro humano adulto. El protocolo es una variación del método de cultivo de rebanadas ampliamente utilizado utilizando inserciones de membrana. Es simple, rentable y recomendado para ejecutar ensayos a corto plazo destinados a desentrañar mecanismos de neurodegeneración detrás de las enfermedades cerebrales asociadas a la edad.

Resumen

Las culturas organotípicas, o de rebanadas, se han empleado ampliamente para modelar aspectos del sistema nervioso central que funcionan in vitro. A pesar del potencial de los cultivos de rebanadas en neurociencia, estudios que utilizan tejido nervioso adulto para preparar tales cultivos son todavía escasos, particularmente los de sujetos humanos. El uso de tejido humano adulto para preparar cultivos de rebanadas es particularmente atractivo para mejorar la comprensión de las neuropatologías humanas, ya que poseen propiedades únicas típicas del cerebro humano maduro que carece de rodajas producidas a partir de roedores (generalmente neonatales) tejido nervioso. Este protocolo describe cómo utilizar el tejido cerebral recogido de donantes humanos vivos sometidos a cirugía cerebral resectiva para preparar cultivos de rebanadas a corto plazo y flotantes. También se presentan procedimientos para mantener y realizar ensayos bioquímicos y de biología celular utilizando estos cultivos. Los resultados representativos demuestran que la laminación cortical humana típica se conserva en rodajas después de 4 días in vitro (DIV4), con la presencia esperada de los principales tipos de células neurales. Además, las rodajas en DIV4 se someten a una muerte celular robusta cuando se les reta con un estímulo tóxico (H2O2), lo que indica el potencial de este modelo para servir como plataforma en los ensayos de muerte celular. Este método, una alternativa más simple y rentable al protocolo ampliamente utilizado utilizando inserciones de membrana, se recomienda principalmente para ejecutar ensayos a corto plazo destinados a desentrañar mecanismos de neurodegeneración detrás de enfermedades cerebrales asociadas a la edad. Por último, aunque el protocolo se dedica al uso de tejido cortical recogido de pacientes sometidos a tratamiento quirúrgico de epilepsia del lóbulo temporal farmacorresistente, se argumenta que el tejido recogido de otras regiones/condiciones cerebrales también debe considerados como fuentes para producir cultivos similares de sectores flotantes.

Introducción

El uso de muestras humanas en la investigación es inequívocamente una gran opción para estudiar las patologías cerebrales humanas, y las técnicas modernas han abierto nuevas formas de experimentación robusta y ética utilizando tejido derivado del paciente. Métodos como cultivos organotípicos/rebanadas preparados a partir del cerebro humano adulto se han utilizado cada vez más en paradigmas como la optogenética1, la electrofisiología2,3,4,5, plasticidad 6,7

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Protocolo

Se obtuvieron tejidos cerebrales adultos vivos de pacientes sometidos a neurocirugía resectiva para el tratamiento de la epilepsia del lóbulo temporal farmacorresistente(Figura 1A). Todos los procedimientos fueron aprobados por el Comité de ética del Hospital de Clínicas de la Escuela de Medicina Ribeir-o Preto (17578/2015), y los pacientes (o su persona legal responsable) aceptaron y firmaron los términos de consentimiento informado. La recolección del tejido fue realizada por el equipo de neurocirugía del Centro de Cirugía de La Epilepsia (CIREP - Clinics Hospital de la Escuela de Medicina Ribeir-o Preto, Universidad de....

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Resultados

Un aspecto crítico para evaluar la calidad y la salud de las rebanadas cultivadas es la presencia y morfología típica de los tipos de células neurales, neuronas y células gliales esperadas. La arquitectura típica de la laminación cortical humana se observó en una rebanada en DIV4, revelada por inmunoetiquetado neuronal (Figura 2D). Además, también se observó la presencia esperada de microglia y astroglia(Figura 2B,C). Estos resu.......

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Discusión

Este protocolo para producir cultivos de sectores flotantes y a corto plazo es un método alternativo para el cultivo de rebanadas neocorticales humanas adultas. Tal protocolo para cultivos de sectores puede ser susceptible de estudios (pero no restringido a) optogenética1,44,45, electrofisiología2,3,4,5

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Este trabajo cuenta con el apoyo de FAPESP (Grant 25681-3/2017 to AS), CAPES (Post-Doctoral fellowship PNPD/INCT-HSM to A.F. y Pre-Doctoral fellowship to N.D.M.) y FAEPA. G.M.A. posee una beca de maestría de FAPESP (MS 2018/06614-4). N.G.C. tiene una beca de investigación CNPq. Agradecemos a los pacientes y sus familias por donar los tejidos resecados para este estudio. Nos gustaría reconocer el apoyo de los residentes, enfermeras, técnicos y el equipo del CIREP, del Hospital Clínico de la Escuela de Medicina Ribeir-o Preto, de la Universidad de Sao Paulo, quienes ayudaron en varias etapas del proceso.

....

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
2-PropanolMerck1096341000
Acrilamida/Bis-Acrilamida, solución al 30%Sigma AldrichA3449 
AgarosaSigma AldrichA9539
Persulfato de amonioSigmaA3678-25G
Anfotericina BGibco15290-018
Anticuerpo anti-ERK 2 (conejo)Santa Cruz Biotecnologysc-154Dilución 1:1.000 en BSA 2.5%
Anticuerpo anti-pERK (ratón)Santa Cruz Biotecnologysc-7383Dilución 1:1.000 en BSA 2.5%
B27Gibco17504-044
BDNFSigma AldrichSRP3014
Albúmina sérica bovinaSigma AldrichA7906
Bradford 1x Reactivo de coloranteBioRad500-0205
EDTASigmaT3924Utilizado en tampón RIPA
GlucosaMerck108337
GlutamaxGibco35050-061
Sales equilibradas de HankSigma AldrichH1387-10X1L
HepesSigma AldrichH4034
Ácido clorhídricoMerck1003171000
Peróxido de hidrógeno (H2O2)Vetec194
IgG de ratón, Ab entero ligado a HRP (anti-ratón)GENA931-1ML
NaClMerck1064041000Utilizado en tampón RIPA
Neurobasal AGibco10888-022
Leche en polvo descremada (Molico)NestléSe utiliza para el bloqueo de membranas
Tampón PBS pH 7,2Laborclin590338
Penicilina/EstreptomicinaSigma AldrichP4333
Cloruro de potasioMerck1049361000
Prime Western Blotting Reactivo de detecciónRPN2232
Rabbit IgG, Ab entero ligado a HRP (anti-conejo)GENA934-1ML
SDSSigmaL5750Utilizado en tampón RIPA
TEMEDGE 17-1312-01
Bromuro de tetrazolio azul de tiazolilo (MTT)Sigma AldrichM5655
TrisSigmaT-1378Utilizado en tampón RIPA
Triton x-100SigmaX100Utilizado en tampón RIPA
Millipore de agua ultrapuraAgua estéril, derivada del sistema de purificación de agua MiliQ
Equipo y material
24 pocillosplacas CorningCL S3526Fondo plano con tapa
Amersham Potran Premium (membrana de nitrocelulosa) GE29047575
Mezcla de cárbogo WhiteMartins95% O2, 5% CO2
Incubadora de CO2New Brunswick ScientificCO-24Incubación de rodajas 5% CO2, 36º C
Lector de microplacasMolecular Devices
MicrotubosGreiner0016081,5mL
Microtubo Mortero motorizadoKimble Chase
Cuchara de plástico Tamañode una cuchara de postre Cuchilla de
afeitarBicCromo Platino, utilizada en el corte con vibratomo
Hoja debisturíBecton Dickinson (BD)Número 24Utilizado para cortar tejidos; recomendado del mismo tamaño o más pequeño
Superglue (Loctite Super Bonder)HenkelComposición: Etilcianoacrilato; Ácido 2-propenoico; 6,6'-di-terc-butil-2,2'-metilenodi-p-cresol; homopolímero
Vibratome Leica14047235612 - VT1000S
Nombre del material/ Equipo para inmunohistoquímica
Anticuerpo anti-NeuN (ratón)Millipore MAB377Dilución 1:1.000 en tampón de fosfato
Anticuerpo anti-GFAP (ratón)MerckMAB360Dilución 1:1.000 en tampón de fosfato
Anticuerpo anti-Iba1 (conejo)AbcamEPR16588 - ab178846Dilución 1:2.000 en tampón de fosfato
Anticuerpo IgG anti-ratón biotinilado (H+L)VectorBA-9200
DABSigma AldrichD-9015
EntellanMerck107960
EtanolMerck1.00983.1000
Gelatina Synth 00G1002.02.AEUtilizado para el recubrimiento de portaobjetos
MicrotomoLeica SM2010REquipado con etapa de congelación (BFS-10MP, Physiotemp), ajustado a -40º C
Suero de burro normalJackson Immuno Research017-000-121
ParaformaldehídoSigma Aldrich158127
IgG de conejo, Ab entero ligado a HRP (anti-conejo)GENA934-1ML
Portaobjetos (Star Frost)Knittel GlaserPortaobjetos recubiertos de gelatina
SacarosaVetec60REAVET017050
Vectastain ABC HRP Kit (Peroxidasa, Estándar)VectorPK-4000, Kit Estándar
Sintetizador deXileno01X1001.01.BJ
GE

Referencias

  1. Andersson, M., et al. Optogenetic control of human neurons in organotypic brain cultures. Scientific Reports. 6, April issue 1-5 (2016).
  2. Granholm, A. C., et al. Morphological and electrophy....

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