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Las interacciones dinámicas proteínas y proteínas controlan el comportamiento celular, desde la motilidad hasta la replicación del ADN y la transducción de la señal. Sin embargo, monitorear las interacciones dinámicas entre múltiples proteínas en una red de interacción proteica es técnicamente difícil. Aquí, presentamos un protocolo para la Inmunoprecipitación Cuantitativa múltiple (QMI), que permite la evaluación cuantitativa de los cambios de pliegue en las interacciones proteicas basadas en mediciones relativas de fluorescencia de Proteínas en Complejos Compartidos detectadas por Exposed Epítopos superficiales (PiSCES). En el QMI, los complejos proteicos de los lysaatos celulares se inmunoprecipitan en las microesferas y luego sondean con un anticuerpo etiquetado para una proteína diferente con el fin de cuantificar la abundancia de PiSCES. Los anticuerpos de inmunoprecipitación se conjugan en diferentes regiones espectrales de MagBead, lo que permite que un citómetro de flujo diferencie múltiples inmunoprecipitaciones paralelas y cuantifique simultáneamente la cantidad de anticuerpo de sonda asociado con cada una. QMI no requiere etiquetado genético y se puede realizar utilizando biomaterial mínimo en comparación con otros métodos de inmunoprecipitación. QMI se puede adaptar para cualquier grupo definido de proteínas que interactúan, y hasta ahora se ha utilizado para caracterizar las redes de señalización en las células T y las sinapsis de glutamato neuronal. Los resultados han dado lugar a una nueva generación de hipótesis con posibles aplicaciones diagnósticas y terapéuticas. Este protocolo incluye instrucciones para realizar QMI, desde la selección inicial del panel de anticuerpos hasta la ejecución de ensayos y el análisis de datos. El montaje inicial de un ensayo QMI implica la detección de anticuerpos para generar un panel y determinar empíricamente un búfer de lisis adecuado. La preparación posterior de reactivos incluye el acoplamiento covalente de anticuerpos de inmunoprecipitación a MagBeads, y anticuerpos de sonda biotinylantes para que puedan ser etiquetados por un fluoróforo conjugado con estreptavidina. Para ejecutar el ensayo, el islato se mezcla con MagBeads durante la noche, y luego las cuentas se dividen e incuban con diferentes anticuerpos de sonda, y luego una etiqueta de fluoróforo, y se lee por citometría de flujo. Se realizan dos pruebas estadísticas para identificar PiSCES que difieren significativamente entre las condiciones experimentales, y los resultados se visualizan mediante mapas de calor o diagramas de borde de nodo.