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Artículo de método

Fotometría multifibra para registrar la actividad neuronal en animales en movimiento libre

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DOI:

10.3791/60278

20 de octubre de 2019

En este artículo

Resumen

Este protocolo detalla cómo implementar y realizar grabaciones de fotometría multifibra, cómo corregir artefactos independientes del calcio y consideraciones importantes para la toma de imágenes de fotometría de doble color.

Resumen

Registrar la actividad de un grupo de neuronas en un animal que se mueve libremente es una tarea difícil. Además, a medida que el cerebro se disecciona en subgrupos funcionales más pequeños y más pequeños, se vuelve primordial registrar a partir de proyecciones y/o subpoblaciones genéticamente definidas de las neuronas. La fotometría de fibra es un enfoque accesible y potente que puede superar estos desafíos. Mediante la combinación de metodologías ópticas y genéticas, la actividad neuronal se puede medir en estructuras cerebrales profundas mediante la expresión de indicadores de calcio codificados genéticamente, que traducen la actividad neuronal en una señal óptica que se puede medir fácilmente. El protocolo actual detalla los componentes de un sistema de fotometría multifibra, cómo acceder a estructuras cerebrales profundas para entregar y recoger luz, un método para tener en cuenta los artefactos de movimiento y cómo procesar y analizar señales fluorescentes. El protocolo detalla consideraciones experimentales al realizar imágenes de color simple y doble, ya sea de fibras ópticas de implante simple o múltiple.

Introducción

La capacidad de correlacionar las respuestas neuronales con aspectos específicos del comportamiento de un animal es fundamental para entender el papel que desempeña un grupo particular de neuronas en la dirección o respuesta a una acción o estímulo. Dada la complejidad del comportamiento animal, con la infinidad de estados internos y estímulos externos que pueden afectar incluso a las acciones más simples, el registro de una señal con resolución de un solo ensayo dota a los investigadores de las herramientas necesarias para superarlas Limitaciones.

La fotometría de fibra se ha convertido en la técnica de elección para muchos investigadores ....

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Protocolo

Todos los experimentos se realizaron de acuerdo con los Comités Institucionales de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad de California, San Diego, y la Guía Canadiense para el Cuidado y Uso de Animales de Laboratorio y fueron aprobados por la Universidad Laval Animal Protection Comité.

1. Alineación de la trayectoria óptica entre la cámara CMOS (semiconductor de óxido metálico complementario) y el cable de conexión individual o ramificado

  1. Afloje todos los tornillos del traductor de 5 ejes (11, Figura 2B).
  2. Tornillo en el cable de conexión (12, Figur....

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Resultados

Los correlatos neuronales de las respuestas conductuales pueden variar dependiendo de una variedad de factores. En este ejemplo, utilizamos fotometría de fibra in vivo para medir la actividad de los terminales de axón desde el área hipotalámica lateral (LHA) que terminan en la habenula lateral (LHb). Los ratones de tipo salvaje fueron inyectados con un virus asociado a adeno (AAV) que codificaba GCaMP6s (AAV-hSyn-GCaMP6s) en la LHA y se implantó una fibra óptica con la punta inmediatamente por encima del LHb

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Discusión

La fotometría de fibra es un enfoque accesible que permite a los investigadores registrar la dinámica de calcio a granel de poblaciones neuronales definidas en animales que se mueven libremente. Este método se puede combinar con una amplia gama de pruebas de comportamiento, incluyendo tareas "pesadas de movimiento" tales como pruebas de natación forzada2, miedo-acondicionamiento18, interacciones sociales1,4, y otros.......

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Divulgaciones

Sage Aronson es el CEO y fundador de Neurophotometrics Ltd., que vende sistemas de fotometría multifibra.

Agradecimientos

Este trabajo fue apoyado por una subvención del Consejo de Investigación de Ciencias Naturales e Ingeniería de Canadá (NSERC: RGPIN-2017-06131) a C.P. C. P. es un FRSQ Chercheur-Boursier. También agradecemos al Plateforme d'Outils Moléculaires (https://www.neurophotonics.ca/fr/pom) la producción de los vectores virales utilizados en este estudio.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Tornillo de cabeza de acero inoxidable de 1/4"-20,Thorlabs deSH25S100
Tornillo de cabeza de acero inoxidable de 1/4"-20,Thorlabs deSH25S050
Tornillo de cabeza de acero inoxidable de 1/4"-20,ThorlabsSH25S038
1000 µ m, 0,50 NA, SMA-SMA Cable de conexión de fibraThorlabsM59L01
Poste óptico de 12,7 mmThorlabsTR30/M
12,7 mm Soporte de poste de pedestalThorlabsPH20EM
15 V, 2,4 A Unidad de fuente de alimentación con conector Jack de 3,5 mm para T-CubeThorlabsKPS101
Objetivo 20xThorlabsRMS20X#10 en la Figura 2, #11 en la Figura 5
Cubo de jaula de 30 mm con montura de filtro dicroicoThorlabsCM1-DCH/M#8-9 en la Figura 2, #8-10 en la Figura 5
Lentes dóricasLED de 405 nmCLED_405#2 en la Figura 2
Filtro de paso de banda de 410 nmThorlabsFB410-10#5 en la Figura 2; #7 en la Figura 5
465 nm. LentesdóricasCLED_465#1 en la Figura 2
Filtro de paso de banda de 470 nmThorlabsFB470-10#4 en la Figura 2; #6 en la Figura 5
Filtro de paso de banda de 560 nmSemrockFF01-560/14-25#5 en la Figura 5
Lentes DoricLED de 560 nmCLED_560#1 en la Figura 3
Montura cinemática de 5ejes ThorlabsK5X1#11 en la Figura 2, #12 en la Figura 5
Doblete acromáticoThorlabsAC254-035-A-ML#7 en la Figura 2
Adaptador para el colimador 405ThorlabsAD11F#3 en la Figura 2; #4 en la Figura 5
Adaptador para el colimador ajustableThorlabsAD127-F#3 en la Figura 2; #4 en la Figura 5
Placa de pruebas de aluminioThorlabsMB1824
Horquilla de aprieteThorlabsCF125
Conector cúbicoThorlabsCM1-CC
Dual 493/574 dicroicoSemrockFF493/574-Di01-25x36#10 en la Figura 5
Filtro de emisión para GCaMP6SemrockFF01-535/22-25#6 en la Figura 2
Carcasa con paneles de madera prensada negraThorlabsXE25C9
Tapa de extremo roscada externamente SM1 para el mecanizadode Thorlabs
Portafiltros de tubo de lente SM1 de cambio rápidoThorlabsSM1QP#4-6 en la Figura 2, #5-7 en la Figura 5
Colimador fijo para luz de 405 nmThorlabsF671SMA-405#3 en la Figura 2; #4 en la Figura 5
Colimador fijo para luz de 470 y 560 nmThorlabsF240SMA-532#3 en la Figura 2; #4 en la Figura 5
Filtro de emisión verdeSemrockFF01-520/ Divisor de haz de luz de 35-25pulgadas
Cámara CMOS USB 3.0 de alta resoluciónThorlabsDCC3260M#13 en la Figura 2, #15 en la Figura 5
Divisor de haz de luzNeurofotometría SPLIT#14 en la Figura 5
Espejo dicroico de paso largo,ThorlabsDMLP425R#8 en la Figura 2, #9 en la Figura 5
Espejo dicroico de paso largo, Semrockde corte de 495 nmFF495-Di03#9 en la Figura 2, #8 en la Figura 5
Cemento dental MetabondC& Cable B
M8 - M8Lentes dóricasCable_M8-M8
Cánulas de fibra ópticaLentesEs necesario especificar que se utilizarán para experimentos de fotometría que requieran baja autofluorescencia
Fibra óptica Latiguillos LentesdóricasEs necesario especificar que se utilizarán para experimentos de fotometría que requieran baja autofluorescencia Filtro
emisión rojaSemrockFF01-600/37-25Divisor de haz de luz
T7 LabJackLabJack
T-cube Controlador LEDThorlabsLEDD1B
Cable de E/S USB 3.0, Hirose 25, para DCC3240ThorlabsCAB-DCU-T3
1" de largo 1/2" de largo de 3/8" de largo LED SM1CP2M de corte de 425 nm dóricas de

Referencias

  1. Gunaydin, L. A., et al. Natural Neural Projection Dynamics Underlying Social Behavior. Cell. 157 (7), 1535-1551 (2014).
  2. Proulx, C. D., et al. A neural pathway controlling motivation to exert effort. Proceedings of th....

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Reimpresiones y permisos

Etiquetas

Registro de la actividad neuronalsistema de multifibraimplantación de fibras ópticasindicadores de calciocorrección de artefactos de movimientoimagen de doble colorprocesamiento de señales fluorescentesproyecciones de regiones cerebrales