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Sistema de matriz 3D derivado de fibroblastos aplicable al ensayo de formación de tubos endoteliales

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DOI:

10.3791/60304

26 de diciembre de 2019

En este artículo

Resumen

El objetivo de este método es obtener matrices 3D derivadas de fibroblastos como un andamio natural para ensayos celulares posteriores. Los fibroblastos se sembran en una placa de cultivo pretratada y se estimulan con ácido ascórbico para la generación de matrices. Las matrices se descelularizan y se bloquean para cultivar células relevantes (por ejemplo, células endoteliales).

Resumen

La matriz extracelular (ECM) es un andamio tridimensional que actúa como el principal soporte para las células en los tejidos. Además de su función estructural, el ECM también participa en la migración celular, la proliferación y la diferenciación. Los fibroblastos son el principal tipo de células que modifican la disposición y producción de fibra ECM. En el cáncer, los CAC (fibroblastos asociados al cáncer) están en estado de activación permanente, participando en la remodelación de ECM, facilitando la migración de células tumorales y estimulando la angiogénesis asociada a tumores, entre otros roles protumoraligénicos. El objetivo de este método es crear una matriz tridimensional con una composición de fibra similar a las matrices in vivo, utilizando fibroblastos inmortalizados o CAC primarios humanos. Los fibroblastos se cultivan en placas de cultivo celular pretratadas y se cultivan bajo estimulación de ácido ascórbico. Luego, se eliminan los fibroblastos y las matrices se bloquean para una mayor sembración celular. En este modelo ECM, los fibroblastos se pueden activar o modificar para generar diferentes tipos de matriz, cuyos efectos se pueden estudiar en el cultivo celular. Las matrices 3D también están formadas por señales celulares, como la degradación o enzimas reticuladas que podrían modificar la distribución de fibra. En este contexto, se puede estudiar la angiogénesis, junto con otros tipos de células como las células tumorales epiteliales.

Introducción

La matriz extracelular (ECM) es una estructura dinámica presente en todos los tipos de tejido. Consiste en proteínas y polisacáridos que crean una red de fibras cruciales para la adhesión celular, migración y comunicación1. La composición de ECM varía dependiendo del tejido. Mientras que el colágeno tipo I es la proteína estructural más prevalente, los tipos de colágeno II, III, V y XI también se pueden encontrar en varios tejidos2. La fibronectina generada por los fibroblastos es necesaria para la adhesión celular2. Además, hay otras moléculas estructurales como los receptores de elastina, lamini....

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Protocolo

Las muestras de tejido humano se obtuvieron con la aprobación del Consejo de Ética de Investigación del Hospital Ramón y Cajal de Madrid.

1. Preparación de soluciones

  1. Preparar 0,2% de solución de gelatina: añadir 1 g de gelatina a 500 ml de PBS. Autoclave la solución y mantener a 4 oC. Filtrar con un filtro de 0,22 m antes de su uso.
  2. Preparar 1% glutaraldehyde: Añadir 1 ml de 25% de solución de stock de glutaraldehyde a 24 ml de PBS. Filtrar con un filtro de 0,22 m antes de su uso.
  3. Preparar 1 M de etanolamina: preparar la solución de etanolamina con un filtro estéril H2O. con un filtro de 0,22 m ante....

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Resultados

Los fibroblastos estimulados PDGF-BB crean un ECM más grueso. Herrera y otros. mostraron cómo los fibroblastos estimulados por PDGF generaron una matriz más gruesa, así como una mayor orientación de fibra7. Los fibroblastos de BJ-hTERT fueron incubados con o sin PDGF y las áreas representativas observadas mostraron una distribución celular más alineada en matrices producidas por fibroblastos estimulados por PDGF(Figura 1a

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Discusión

Las matrices se pueden generar con fibroblastos inmortalizados o cultivos primarios de fibroblastos. Los fibroblastos son fáciles de mantener en cultivo in vitro con una alta tasa de crecimiento y resistencia al estrés. Incluso se pueden aislar del tejido post mortem3,aunque la contaminación podría ser una restricción, dependiendo del origen del tejido.

El modelo de matriz 3D aquí ofrece un sistema novedoso y eficaz para estudiar con éxito la composición de ECM y la ori.......

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Divulgaciones

Los autores no declaran conflicto de intereses.

Agradecimientos

El desarrollo de este protocolo fue apoyado por PI12/02037, PI15/02101, PI17/01847, PI18/01034 y RD12/0036/0041 del Instituto de Salud Carlos III; por el Fondo Europeo de Desarrollo Regional (FEDER); por "CIBER Cáncer de Cáncer", CB16/12/00273 y CB16/12/00446, del Instituto de Salud Carlos III-FEDER; y por la Fundación Científica AECC (un enfoque multifacético para el cáncer de páncreas dirigido). Cristina Peña es beneficiaria de un Contrato Miguel Servet del Instituto de Salud Carlos III. M. Eaude ayudó con el texto en inglés. Agradecemos a los miembros del laboratorio por su ayuda y asesoramiento a lo largo de esta investigación.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Hidróxido de amonio (NH4OH)RothA990.1
Anfotericina-BCorning30-003-CF
Albúmina sérica bovina (BSA)SigmaA7906-50G
Medio Eagle modificado de Dulbecco (DMEM)Corning10-014-CVR
Medio basal endotelial (EBM)LonzaCC-3121añadir suplementos antes de usar
Suplementos de medio basal de células endoteliales (EGM-2)LonzaCC-4176
EtanolaminaSigma411000-100ML
Suero fetal bovino (FBS)BiowestS181B-500inactivado por calor antes de usar
Medio basal de crecimiento de fibroblastos (FBM)LonzaCC-3131añadir suplementos antes de usar
Suplementos de Medio de Crecimiento de Fibroblastos y Factores de Crecimiento (FGM-2)LonzaCC-4126
Gelatina de piel bovinaSigmaG9391-100G
GlutaraldehídoSigmag5882
Ácido L-AscórbicoSigmaA92902-100G
L-GlutaminaLonzaBE17-605E
NormocinInvivogen3ANT-NR-2
Pencillin/Estreptomicina (Pluma/Estreptococo)Gibco15140122
solución salina tamponada con fosfato (PBS)Corning21-040-CVR
Triton X100Roth3051
Fibroblastos del prepucio humano inmortalizados transfectados con telomerasa recombinante (BJ-hTERT)ATCCATCC CRL-4001
Vena umbilical humana células endoteliales (HUVECs)ATCCPCS-100-013
sensible a la luz

Referencias

  1. Frantz, C., Stewart, K. M., Weaver, V. M. The extracellular matrix at a glance. Journal of Cell Science. 123 (24), 4195-4200 (2010).
  2. Kular, J. K., Basu, S., Sharma, R. I. The extracellular matrix: Structure, comp....

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Etiquetas

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