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Artículo de método

Tinción de inmunofluorescencia utilizando IBA1 y TMEM119 para la densidad microglial, morfología y análisis de infiltración de células mieloides periféricas en el cerebro del ratón

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DOI:

10.3791/60510

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27 de octubre de 2019

En este artículo

Aviso de erratum

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Resumen

Este protocolo describe un flujo de trabajo paso a paso para la costaría inmunofluorescente de IBA1 y TMEM119, además del análisis de la densidad microglial, la distribución y la morfología, así como la infiltración de células mieloides periféricas en el tejido cerebral del ratón.

Resumen

Este es un protocolo para la visualización dual de microglia e infiltración de macrófagos en el tejido cerebral del ratón. TMEM119 (que etiqueta la microglia selectivamente), cuando se combina con IBA1 (que proporciona una visualización excepcional de su morfología), permite investigar los cambios en la densidad, distribución y morfología. La cuantificación de estos parámetros es importante para proporcionar información sobre los roles ejercidos por la microglia, los macrófagos residentes del cerebro. En condiciones fisiológicas normales, la microglia se distribuye regularmente en un patrón similar a un mosaico y presenta un pequeño soma con procesos ramificados. Sin embargo, como respuesta a factores ambientales (es decir, trauma, infección, enfermedad o lesión), la densidad microglial, la distribución y la morfología se alteran de diversas maneras, dependiendo del insulto. Además, el método de doble tinción descrito permite la visualización de macrófagos infiltrados en el cerebro en función de su expresión de IBA1 y sin colocalización con TMEM119. Por lo tanto, este enfoque permite la discriminación entre la microglia y la infiltración de macrófagos, que se requiere para proporcionar información funcional sobre su participación distinta en la homeostasis cerebral en diversos contextos de salud y enfermedad. Este protocolo integra los últimos hallazgos en neuroinmunología que se refieren a la identificación de marcadores selectivos. También sirve como una herramienta útil tanto para los neuroinmólogos experimentados como para los investigadores que buscan integrar la neuroinmunología en los proyectos.

Introducción

Ya sea aguda o crónica, la neuroinflamación está fuertemente influenciada por la microglia, los macrófagos residentes del cerebro. Visualizar la microglia a través de la inmunomancha es valioso para el estudio de la neuroinflamación con el uso de microscopía de luz, una técnica altamente accesible. En condiciones homeostáticas, la microglia se distribuye típicamente en un patrón no superpuesto, similar a un mosaico. Exhiben pequeños somas que se extienden procesos ramificados1, que a veces se ponen en contacto entre sí2. Los procesos ramificados microgliales examinan dinámicamente el parénquima cerebral, interactuando co....

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Protocolo

Todos los procedimientos experimentales se llevaron a cabo de acuerdo con las directrices de los comités institucionales de ética animal, de conformidad con el Consejo Canadiense de Cuidado de Animales y el Comité de Cuidado de Animales de la Universidad Laval.

1. Inmunomanchación

  1. Seleccione tres secciones del cerebro del ratón que contengan la región de interés (ROI) (es decir, el hipocampo) con la ayuda de un atlas cerebral. Coloque las secciones en una placa de plástico multipocillos y cúbralas con 350 ml de solución salina con fosfato (PBS)(Tabla 1).
    NOTA: Para obtener resultados óptimos, los cerebros deben....

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Resultados

La Figura 1 muestra el coetiquetado de microglia utilizando IBA1 y TMEM119 en una sección coronal del hipocampo dorsal que se muestra a 20 veces mediante microscopía de fluorescencia. Una tinción exitosa revela cuerpos celulares microgliales y sus procesos finos(Figura 1A-C). Esta tinción permite determinar la densidad microglial y la distribución e identificación de los cúmulos microgliales(.......

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Discusión

Este protocolo se puede dividir en dos partes críticas: calidad de la tinción y análisis. Si la tinción no es óptima, no representará adecuadamente las células microgliales, afectando así las mediciones de densidad, distribución y morfología. Además, se puede subestimar la proporción de células mieloides periféricas de infiltración. Esta es una versión optimizada del protocolo de tinción, pero hay varios factores que pueden resultar en imágenes subóptimas. A pesar de que la perfusión del animal no está incluida en este p.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Agradecemos a Nathalie Vernoux por su orientación y ayuda con los experimentos. También queremos dar las gracias a los Doctores Emmanuel Planel y Serge Rivest por el uso de su fluorescencia y microscopios confocales, respectivamente. Este trabajo fue financiado en parte con becas del Consejo Mexicano de Ciencia y Tecnología (CONACYT; a F.G.I), Fundación Famille-tette y Centre thématique de recherche en neurosciences (CTRN; to K.P.), Fonds de Recherche du Québec - Santé (a M.B.), y Choqueté Shastri Indo-Canadian Institute (a K.B.), así como una beca Discovery del Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada (NSERC) a M.E.T. M.E.T. tiene una Cátedra de In....

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Alexa Fluor 488 burro anti-ratónInvitrogen/ThermofisherA21202
Alexa Fluor 568 cabra anti-conejoInvitrogen/ThermofisherA11011
Biolite 24 Well multiplatoThermo Fisher930186
Albúmina sérica bovinaEMD Millipore Corporation2930
Ácido cítricoSigma-AldrichC0759-500G
DAPI Tinción de ácido nuceléicoInvitrogen/ThermofisherMP 01306
Fine Brush Tienda
de arte Fluoromount-GSouthern Biotech0100-01
Gelatina de piel de pescado de agua fríaSigma-AldrichG7765
Cubreobjetos de microscopioFisher Scientific1254418
Microportaobjetos cargados positivamenteVWR48311-703
Ratón monoclonal Anti-IBA1MilliporeMABN92
Na2H2PO4· H2OBioShop Canada Inc.SPM306, SPM400
Na2HPO4BioShop Canada Inc.SPD307, SPD600
NaBH4Sigma-Aldrich480886
NaClFisher ScientificS642500
Suero normal de burro (NDS)Jackson ImmunoResearch laboratories Inc.017-000-121
Suero de cabra normal (NGS)Jackson ImmunoResearch laboratories Inc.005-000-121
Parafilm-MParafilmPM-999
Conejo monoclonal Anti-TMEM119Abcamab209064
Baño de agitación recíproca modelo 25Pipeta
TRS002/TRS004
Triton-X-100Sigma-AldrichT8787
Tween 20Sigma-AldrichP7949-100ML
de precisión Scientific-Transfer Clorhidrato tampón Tris BioShop Canada Inc.

Referencias

  1. Lawson, L. J., Perry, V. H., Dri, P., Gordon, S. Heterogeneity in the distribution and morphology of microglia in the normal adult mouse brain. Neuroscience. 39 (1), 151-170 (1990).
  2. Milior, G., et al.

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Reimpresiones y permisos

Erratum


Formal Correction: Erratum: Immunofluorescence Staining Using IBA1 and TMEM119 for Microglial Density, Morphology and Peripheral Myeloid Cell Infiltration Analysis in Mouse Brain
Posted by JoVE Editors on 10/12/2019. Citeable Link.

An erratum was issued for: Immunofluorescence Staining Using IBA1 and TMEM119 for Microglial Density, Morphology and Peripheral Myeloid Cell Infiltration Analysis in Mouse Brain. An author name was updated.

The name was corrected from:

Maude Bordelau

to:

Maude Bordeleau

Etiquetas

Análisis de la densidad microglialmarcador TMEM119marcador IBA1microscopía de fluorescenciamicroscopía confocalanálisis con ImageJtejido cerebral de ratóntrazado de la morfología celular