Describimos un protocolo de inoculación retardada para generar infecciones crónicas por heridas en ratones inmunocompetentes.
Artículo de método
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Describimos un protocolo de inoculación retardada para generar infecciones crónicas por heridas en ratones inmunocompetentes.
Pseudomonas aeruginosa (P. aeruginosa) es un importante patógeno nosocomial de creciente relevancia para la salud humana y la enfermedad, particularmente en el establecimiento de infecciones crónicas de heridas en pacientes diabéticos y hospitalizados. Existe una necesidad urgente de modelos de infección crónica para ayudar en la investigación de la patogénesis de heridas y el desarrollo de nuevas terapias contra este patógeno. Aquí, describimos un protocolo que utiliza la inoculación retrasada 24 horas después de la herida escisión de espesor completo. La infección de la matriz de heridas provisionales presente en este momento es un aclaramiento rápido o la diseminación de la infección y, en su lugar, establece una infección crónica que dura de 7 a 10 días sin necesidad de implantación de materiales extraños o supresión inmunitaria. Este protocolo imita un curso temporal típico de infección postoperatoria en humanos. El uso de una cepa luminiscente de P. aeruginosa (PAO1:lux) permite una evaluación diaria cuantitativa de la carga bacteriana para las infecciones de la herida de P. aeruginosa. Este nuevo modelo puede ser una herramienta útil en la investigación de la patogénesis bacteriana y el desarrollo de nuevas terapias para infecciones crónicas de la herida de P. aeruginosa.
Pseudomonas aeruginosa (P. aeruginosa) es una bacteria Gram-negativa en forma de varilla con creciente relevancia para la salud humana y la enfermedad. Es responsable de la extensiva morbilidad y mortalidad en entornos nosocomiales, particularmente involucrando infecciones de heridas en pacientes inmunocomprometidos1,2. La aparición de cepas multirresistentes de este patógeno ha proporcionado un mayor impulso para la investigación de factores que contribuyen a la virulencia de P. aeruginosa, mecanismos de resistencia a los antibióticos P. aeruginosa, y nuevos métodos para la....
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Todos los métodos descritos aquí han sido aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales (IACUC) de la Universidad de Stanford.
1. Preparación y crecimiento de bacterias
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Utilizando una cepa luminiscente de PAO1 con un plásmido que codifica el sistema de reportero luxABCDE (PAO1:lux), realizamos heridas escisiones en ratones, inoculamos estas heridas con P. aeruginosa planctónica 24 h más tarde, y medimos la carga bacteriana a lo largo del tiempo(Figura 1 y Figura 2). Una imagen representativa obtenida mediante un sistema óptico de imágenes demuestra que este modelo da como resultado una .......
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Hemos desarrollado un nuevo modelo de infección por heridas de inoculación retardada P. aeruginosa. La estrategia de retrasar la inoculación con bacterias hasta 24 h después de la herida escisión permite la evaluación de infecciones de heridas durante un período de 1 semana. Mediante el uso de una cepa luminiscente de P. aeruginosa, es posible realizar un seguimiento de la progresión de la infección a lo largo del curso de la infección. El curso más largo de la infección en comparación con otros modelos.......
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Los autores no tienen intereses financieros en competencia que revelar.
El vector de construcción luminiscente pUT-Tn5-EM7-lux-Km1 fue un regalo amable de J. Hardy. Los esquemas se crearon con BioRender.com. Agradecemos al laboratorio de G. Gurtner por su consejo sobre el modelo de infección de heridas. También agradecemos a T. Doyle del Centro Stanford para la Innovación en In Vivo Imaging por su experiencia técnica. Este trabajo fue apoyado por las subvenciones R21AI133370, R21AI133240, R01AI12492093, y las subvenciones de Stanford SPARK, Falk Medical Research Trust y la Cystic Fibrosis Foundation (CFF) a P.L.B. C.R.D fueron apoyados por T32AI007502. Una Beca Gabilan Stanford Graduate para Ciencia e Ingeniería y una Beca de Gra....
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| Nombre | Empresa | Número de catálogo | Comentarios |
|---|---|---|---|
| Cloruro de sodio al 0,9% inyectable | Hospira | 2484457 | |
| 18 G x 1 aguja estéril | BD | 305195 | |
| 25 G x 1 1/5 aguja estéril | BD | 305127 | |
| Hisopo con alcohol | BD | 326895 | |
| Aura Software de imágenes | Spectral Instruments Imaging | n/a | |
| Betadine | Purdue Frederick Company | 19-065534 | |
| Buprenorfina SR LAB | Zoopharm | n/a | |
| C57BL/6J ratones machos | The Jackson Laboratory | 000664 | |
| Punzón de biopsia desechable, 6 mm | Integra | 33-36 | |
| Tijeras finas - Carburo de tungsteno | Fine Science Tools | 14568-09 | |
| Esterilizador seco de perlas de vidrio | Aparato Harvard | 61-0183 | |
| Agar granulado | Fisher BioReagents | BP9744 | |
| Almohadilla térmica | Milliard | 804879481218 | |
| Jeringa de insulina con aguja de 28 G | BD | 329461 | |
| Lago X Imaging System | Spectral Instruments Imaging | n/a | |
| Caldo LB | Fisher BioReagents | BP1426 | |
| Leur-Lok Jeringa de 1 mL | BD | 309628 | |
| Mini Arco Animal Trimmer | Wahl Professional | 919152 | |
| Nair Loción Depilatoria con Aceite de Bebé | Church y Dwight | n/a Disponible | en cualquier farmacia |
| Pinzas de octágono | Herramientas de ciencia fina | 11041-08 | |
| Placa de Petri | Falcon | 351029 | |
| solución salina tamponada con fosfato (PBS) 1x | Corning | 21-040-CV | |
| Envoltura adhesiva para prensar y sellar | Glad | n/a Jeringa | |
| de insulina SafetyGlide con aguja de 30 G | BD | 305934 | |
| Jeringa de insulina Safetyglide, 1/2 mL, 30 G x 5/16 TW | Báscula de | 305934 | |
| BD Ohaus Scout Pro | SP202 | ||
| Suplemento Nutricional Suplical Henry | Schein Salud Animal | 29908 | |
| Tegaderm, 6 cm x 7 cm | 3M | 1624W |
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