Se requiere una suscripción a JoVE para ver este contenido. Inicie sesión o comience su prueba gratuita.

Artículo de método

Asignación de circuito asistida por Channelrhodopsin de largo alcance de neuronas coliculus inferiores con Channelrhodopsins de cambio azul y rojo

6.9K visualizaciones

DOI:

10.3791/60760

7 de febrero de 2020

En este artículo

Resumen

El mapeo de circuitos asistidos por Cifrodonina (CRACM) es una técnica de precisión para el mapeo funcional de proyecciones neuronales de largo alcance entre grupos de neuronas identificadas anatómicamente y/o genéticamente. Aquí, describimos cómo utilizar craCM para mapear las conexiones del tronco cerebral auditivo, incluyendo el uso de una opsin de cambio rojo, ChrimsonR.

Resumen

Al investigar los circuitos neuronales, una limitación estándar del enfoque de abrazadera de parche in vitro es que los axones de múltiples fuentes a menudo se mezclan, lo que dificulta aislar las entradas de fuentes individuales con estimulación eléctrica. Sin embargo, mediante el uso de la asignación de circuitos asistidos de channelrhodopsin (CRACM), esta limitación ahora se puede superar. Aquí, informamos de un método para utilizar el CRACM para mapear las entradas ascendentes de núcleos de tronco cerebral auditivo inferior y entradas commissurales a una clase identificada de neuronas en el colículo inferior (IC), el núcleo cerebral medio del sistema auditivo. En el IC, los axones locales, comisarios, ascendentes y descendentes están fuertemente entrelazados y, por lo tanto, son indistinguibles con la estimulación eléctrica. Mediante la inyección de una construcción viral para impulsar la expresión de una canalizarpsina en un núcleo presináptico, seguido de la grabación de abrazaderas de parche para caracterizar la presencia y fisiología de entradas sinápticas que expresan la canalizar, proyecciones de una fuente específica a una población específica de neuronas IC se puede mapear con precisión específica del tipo de célula. Mostramos que este enfoque funciona tanto con Chronos, un canal rhodopsin activado por luz azul, como con ChrimsonR, un canal de cambio rojo. A diferencia de los informes anteriores del anteceleo, encontramos que ChrimsonR se trafica sólidamente por los axones de las neuronas principales del núcleo coclear dorsal, lo que indica que ChrimsonR puede ser una herramienta útil para los experimentos CRACM en el tronco cerebral. El protocolo presentado aquí incluye descripciones detalladas de la cirugía de inyección de virus intracraneal, incluyendo coordenadas estereolíticas para apuntar las inyecciones al núcleo coclear dorsal y el IC de los ratones, y cómo combinar la grabación de la abrazadera de parche de células enteras con activación de la cdicrodona para investigar proyecciones de largo alcance a las neuronas IC. Aunque este protocolo está diseñado para caracterizar las entradas auditivas del IC, se puede adaptar fácilmente para investigar otras proyecciones de largo alcance en el tronco cerebral auditivo y más allá.

Introducción

Las conexiones sinápticas son críticas para la función del circuito neural, pero la topología precisa y la fisiología de las sinapsis dentro de los circuitos neuronales a menudo son difíciles de sondear experimentalmente. Esto se debe a que la estimulación eléctrica, la herramienta tradicional de la electrofisiología celular, activa indiscriminadamente los axones cerca del sitio de estimulación, y en la mayoría de las regiones cerebrales, los axones de diferentes fuentes (locales, ascendentes y/o descendentes) se entrelazan. Sin embargo, mediante el uso de channelrhodopsin asignación de circuito asistido (CRACM)1,2<....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Protocolo

Obtener la aprobación del Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales (IACUC) y adherirse a las directrices de NIH para el cuidado y uso de animales de laboratorio. Todos los procedimientos de este protocolo fueron aprobados por la Universidad de Michigan IACUC y estaban de acuerdo con las directrices de NIH para el cuidado y uso de animales de laboratorio.

1. Preparaciones de cirugía

  1. Realizar cirugías en condiciones asépticas. Autoclave/esterilizar todas las herramientas y materiales de cirugía antes de la cirugía. Use bata de cirugía y máscara para la cirugía.
  2. Desinfecte el área de la cirugía (rocíe y limpie con ....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Resultados

Cruzamos ratones VIP-IRES-Cre (Viptm1(cre)Zjh/J) y Ai14 Cre-reporter ratones (B6. Cg-Gt(ROSA)26Sortm14(CAG-tdTomato)Hze/J) para generar descendencia F1 en la que las neuronas VIP expresan la proteína fluorescente tdTomato. Se utilizaron descendencia F1 de ambos sexos, envejecida del día postnatal (P) 21 a P70. Un total de 22 animales fueron utilizados en este estudio.

Inyección estereotaxi.......

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Discusión

Hemos encontrado que craCM es una técnica poderosa para identificar y caracterizar entradas sinápticas de largo alcance a las neuronas en el IC del ratón. Siguiendo el protocolo detallado aquí, logramos una transfección robusta de las neuronas en el DCN y el IC, así como el tráfico axonal confiable de Chronos y ChrimsonR a terminales sinápticos en el IC. Además, demostramos que esta técnica permite la medición y el análisis de eventos postsinápticos, incluyendo amplitud de PSP, medio ancho, tiempo de decaimiento y farmac.......

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Este trabajo fue apoyado por una Beca Deutsche Forschungsgemeinschaft Research Fellowship (GO 3060/1-1, número de proyecto 401540516, a DG) y la beca de los Institutos Nacionales de Salud R56 DC016880 (MTR).

....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
AAV1. Syn.ChrimsonR-tdTomato.WPRE.bGHAddgene59171-AAV1
AAV1. Syn.Chronos-GFP.WPRE.bGHAddgene59170-AAV1
Ai14 ratones reporteros (B6. Cg-Gt(ROSA)26Sortm14(CAG-tdTomate)Hze/J)Stock de laboratorio Jackson#007914
Ámbar (590nm) LUXEON Rebel LEDLuxeon Star LEDsSP-01-A8
Azul (470nm) LUXEON RebelLED Luxeon Star LEDsSP-01-B4
Carproject (carprofeno)Henry Schein Animal Health59149
Capilares de glas de DrummondEmpresa Científica Drummond3-000-203-G/X
Drummond Nanoject 3Drummond Scientific Company3-300-207
Biseladora de electrodosInstrumentoSutter FG-BV10-D
Ethilon 6-0 (0.8 métrico) suturas de nylonFarmaciaEthicon
Microscopio de platina fijacualquieran/a
Soporte de cabeza de anestesia con gasDavid Kopf Instrumentos933-B
Herramientas de cirugía generalFine Science ToolsN/A
Golden A5 cortadora de mascotasOster078005-010-003
Almohadilla térmicaHecho a medidaN/A
Cámara de inducción con capucha con sistema de vacíoPatterson Scientific 78917760
esterilizador de perlas calientes Steri 250InotechIS-250
Solución de yodo 10%FarmaciaMedChoice
Vaporizador de isofluranoPatterson Scientific07-8703592
Jalea tópica de lidocaína 2%Farmaciade Akorn
Taladro de micromotor 1050Henry Schein Animal Health7094351
Brocas de micromotor 0,5 mmFine Science Tools19007-05
Micromanipulador motorizadoSutter InstrumentMP-285/R
Pomada oftálmica Lágrimas artificialesFarmaciaAkorn
P-1000 extractor de electrodosSutter InstrumentP-1000
Amplificador de pinza de parche incl. software de adquisición de datoscualquieran/a
Máquina de anestesia portátilPatterson Scientific07-8914724
Armazón esterosexico para animales pequeñosDavid Kopf Instruments930-B
Productos químicos estándarProveedores localesN/A
soluciones
Paños de toalla estérilesDynarex4410
Rotulador quirúrgicoFine Science Tools18000-30
Controlador de temperaturaConstrucción personalizadaN/A
Vibratomecualquieran/a
Ratones VIP-IRES-Cre (Viptm1(cre)Zjh/J)Jackson Laboratorystock #010908
Baño de aguacualquieran/a
local local local local de imagen estándar

Referencias

  1. Petreanu, L., Huber, D., Sobczyk, A., Svoboda, K. Channelrhodopsin-2-assisted circuit mapping of long-range callosal projections. Nature Neuroscience. 10, 663-668 (2007).
  2. Atasoy, D., Aponte, Y., Su, H. H., Sternson, S. M.

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Reimpresiones y permisos

Etiquetas

Coordenadas estereotáxicaspatch clamp de célula completaChronos ChrimsonRnúcleo coclear dorsalproyecciones de largo alcancetronco encefálico auditivocirugía de inyección viralactivación óptica