Este protocolo describe la detección de la migración de células madre esqueléticas periósticas mediada por CCL5 en tiempo real utilizando microscopía intravital de animales vivos.
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Artículo de método
Este protocolo describe la detección de la migración de células madre esqueléticas periósticas mediada por CCL5 en tiempo real utilizando microscopía intravital de animales vivos.
Las células madre esqueléticas periósticas (P-SSC) son esenciales para el mantenimiento y la reparación ósea de por vida, lo que las convierte en un foco ideal para el desarrollo de terapias para mejorar la curación de fracturas. Las células periósticas migran rápidamente a una lesión para suministrar nuevos condrocitos y osteoblastos para la curación de fracturas. Tradicionalmente, la eficacia de una citoquina para inducir la migración celular solo se ha llevado a cabo in vitro mediante la realización de un ensayo de transpozo o rasguño. Con los avances en la microscopía intravital utilizando excitación multifotónica, recientemente se descubrió que 1) las P-SSC expresan el gen migratorio CCR5 y 2) el tratamiento con el ligando CCR5 conocido como CCL5 mejora la cicatrización de fracturas y la migración de P-SSCs en respuesta a CCL5. Estos resultados han sido capturados en tiempo real. Aquí se describe un protocolo para visualizar la migración de P-SSC desde el nicho de células madre esqueléticas (SSC) de sutura calvarial hacia una lesión después del tratamiento con CCL5. El protocolo detalla la construcción de una sujeción del ratón y un soporte de imágenes, la preparación quirúrgica de la calvaria del ratón, la inducción de un defecto de la calvaria y la adquisición de imágenes de lapso de tiempo.
La reparación de fracturas es un proceso dinámico y multicelular que es distinto del desarrollo y la remodelación del esqueleto embrionario. Durante este proceso, la inducción de señales de lesión del tejido dañado es seguida por el rápido reclutamiento, proliferación y posterior diferenciación de las células madre/progenitoras esqueléticas, que son críticas para la estabilidad general y la fijación de las fracturas1. En particular, las primeras etapas de la cicatrización de la fractura requieren la formación de callos blandos, que se atribuye principalmente a las células residentes del periostio2. Cuando los huesos se l....
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Todos los ratones se mantuvieron en condiciones libres de patógenos, y todos los procedimientos fueron aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales (IACUC) del Baylor College of Medicine.
1. Preparación del ratón
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Se ha propuesto que los progenitores esqueléticos tienen potencial migratorio o circulatorio20. Recientemente, se generaron ratones reporteros Mx1-Cre+Rosa26-Tomato+α SMA-GFP+ (Mx1/Tomato/αSMA-GFP), en los que los P-SSC están marcados por el etiquetado dual Mx1+α SMA+ (Figura 2A,B). La migración sustancial de Mx1+α .......
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Durante la cicatrización ósea, las células periósticas son la principal fuente de condrocitos y osteoblastos recién diferenciados dentro de un callo lesionado3. Al igual que en la médula ósea, también se han identificado CSS osteogénicas/condrogénicas en el periostio4,5,6. La evaluación de las características funcionales endógenas de P-SSC es técnicamente un desafío. A menudo, la dinámica migratoria de la.......
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L.C.O. y D.P. divulgan una patente pendiente titulada "Periosteal Skeletal Stem Cells in Bone Repair" (BAYM. P0264US. P1). Los autores restantes no declaran intereses contrapuestos.
Este trabajo fue apoyado por el Bone Disease Program of Texas Award, el Caroline Wiess Law Fund Award y el NIAMS de los Institutos Nacionales de Salud bajo los números de premio R01 AR072018, R21 AG064345, R01 CA221946 a D.P. Agradecemos a M.E. Dickinson y T.J. Vadakkan en el BCM Optical Imaging and Vital Microscopy Core y bcM Advanced Technology Cores con fondos de NIH (AI036211, CA125123 y DK056338).
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| Nombre | Empresa | Número de catálogo | Comentarios |
|---|---|---|---|
| y frac12; ” poste óptico | ThorLabs | TR2 | Para montaje de imagen |
| jeringa de 1 mL | BD | 309659 | |
| aguja de 27G | BD PercisionGlide | 305111 | |
| jeringa de insulina de 29G | McKesson | 102-SN05C905P | |
| tubo de conicol de 50 mL | Falcon | 352098 | Para la sujeción del ratón |
| Placa de ángulo ajustable | Renishaw | R-PCA-5023-50-20 | Para montaje de imágenes |
| Toallitas con alcohol Coviden | 6818 | ||
| Betadine quirúrgica | Henry Schen | 67618-151-16 | |
| Buprenorfina SR-LAB | ZooPharm | 1 mg/mL Combo de liberación sostenida | |
| III | Obtenido del veterinario del personal | N/A | 37,6 mg/mL Ketamina; 1,9 mg/mL Xilacina; 0,37 mg/mL Acepronazina |
| Cobertor | Fisher | 12-545-87 | 24 x 40 premium superslip |
| Boquilla fina FST | 11254-20 | ||
| Ketamina | KetaVed | 50989-161-06 | 100 mg/mL |
| Leica TCS SP8MP con DM6000CFS | Leica Microsystems | N/A | |
| Matrigel | R & D Systems | 344500101 | |
| Cinta médica | McKesson 100199 | 3" x 10 yardas (7,6 cm x 9,1 m) | |
| Metocelulosa | Microscopía Electrónica Ciencias | 19560 | |
| Tijeras de microdisección | FST | 1456-12 | |
| Etapa motorizada | Anaheim automatización | N/A | |
| Portaagujas | FST | 12500-12 | |
| Suturas no absorbibles | McKesson | S913BX | monofilamento nylon 5-0 suturas no absorbibles con aguja de corte inverso C-1 adjunta |
| Pomada oftálmica | Rugby | 0536-1086-91 | |
| RANTES | Biolegend | 594202 | 10 µ g/50 y micro; L |
| Abrazadera de ángulo recto para ½ ” poste, 3/16" Hexagonal | ThorLabs | RA90 | Para montaje de imágenes |
| Accionado por resorte de 3/16" Bloqueo hexagonal y frac14; ” tornillo de mariposa | ThorLabs | TS25H | Para montaje de imágenes |
| Bastoncillos de algodón estériles | Henry Schen | 100-9249 | |
| DPBS estériles (1x) | Corning | 21-030-CV | |
| Paños estériles | McKessen | 25-517 | |
| McKessen | 3158VA | ||
| Pomada antibiótica triple | Taro Pharmaceuticals U.s.a., Inc. | 51672-2120-2 | |
| Vacutainer set de extracción de sangre | BD | REF 367298 | 25G set de infusión de agujas de mariposa con tubo de 12" |
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