Se requiere una suscripción a JoVE para ver este contenido. Inicie sesión o comience su prueba gratuita.

Artículo de método

Trazado anatómico y funcional combinado in vivo de terminales de glutamato del área tegmental ventral en el hipocampo

3.7K visualizaciones

⸱

DOI:

10.3791/61282

⸱

9 de septiembre de 2020

 ,  , 

En este artículo

Resumen

El protocolo actual demuestra un método simple para el rastreo de las proyecciones de glutamato del área tegmental ventral (VTA) al hipocampo. La fotoestimulación de las neuronas de glutamato VTA se combinó con el registro de CA1 para demostrar cómo los terminales de glutamato VTA modulan la tasa de disparo piramidal putativa CA1 in vivo.

Resumen

La modulación optogenética de las subpoblaciones neuronales en el cerebro ha permitido a los investigadores diseccionar los circuitos neuronales in vivo y ex vivo. Esto proporciona una premisa para determinar el papel de los tipos de neuronas dentro de un circuito neuronal y su importancia en la codificación de la información en relación con el aprendizaje. Del mismo modo, el método se puede utilizar para probar la importancia fisiológica de dos o más regiones cerebrales conectadas en animales despiertos y anestesiados. El estudio actual demuestra cómo las neuronas de glutamato VTA modulan la tasa de disparo de las neuronas piramidales putativas en el CA1 (hipocampo) de ratones anestesiados. Este protocolo emplea el etiquetado dependiente del virus adenoasociado (AAV) de las neuronas de glutamato VTA para el rastreo de los terminales presinápticos de glutamato VTA en las capas del hipocampo. La expresión de opsina controlada por la luz (canalrodopsina; hChR2) y proteína de fluorescencia (eYFP) albergada por el vector AAV permitió el rastreo anterógrado de los terminales de glutamato VTA y la fotoestimulación de los cuerpos celulares de las neuronas de glutamato VTA (en el VTA). Se colocaron electrodos de silicio agudo de alta impedancia en el CA1 para detectar respuestas de unidades múltiples y de una sola unidad a la fotoestimulación VTA in vivo. Los resultados de este estudio demuestran la distribución dependiente de capas de los terminales presinápticos de glutamato VTA en el hipocampo (CA1, CA3 y DG). Además, la fotoestimulación de las neuronas VTA glutamato aumentó la velocidad de disparo y estallido de las supuestas unidades piramidales CA1 in vivo.

Introducción

En la última década, se desarrolló una serie de herramientas genéticas para aumentar la especificidad de la modulación de tipo neuronal y el mapeo de redes neuronales complejas1. En particular, los virus neurotrópicos con una capacidad inherente para infectar y replicarse en las células neuronales se han desplegado para expresar o extirpar proteínas específicas en subclases de neuronas. Al albergar proteínas de fluorescencia o indicadores de actividad sináptica codificados genéticamente, los vectores AAV transfectados etiquetan y delinean las redes neuronales a través de las regiones cerebrales2,

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Protocolo

Todos los procedimientos experimentales y de manejo de animales fueron aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales (IACUC) de la Facultad de Medicina Veterinaria de la Universidad Estatal de Louisiana.

1. Animal de experimentación

  1. Use ratones de 5 a 6 semanas de edad.
  2. Casa de 3 a 5 animales por jaula en condiciones estándar de 12 h alternando ciclo de luz y oscuridad. Los alimentos y el agua deben proporcionarse ad libitum.

2. Craneotomía y preparación animal

NOTA: Esta sección describe los procedimientos pre y perioperatorios para la cran....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Resultados

Rastreo anterógrado

La expresión de AAV se verificó mediante imágenes de inmunofluorescencia de la proteína reportera (eYFP) en el VTA de ratones C57BL/6 21 días después de la inyección(Figura 2). El etiquetado anterógrado exitoso de las proyecciones presinápticas de glutamato VTA en el hipocampo también se verificó mediante la detección de eYFP en las capas de DG, CA3 y CA1 (Figura 6a-d; Películas 2 y 3).

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Discusión

En la última década, el diseño de las construcciones AAV ha avanzado significativamente. Como tal, se han incorporado más promotores específicos de neuronas en una serie de serotipos AAV para mejorar la especificidad de la transfección14. Al combinar genes para proteínas de fluorescencia, transportadores, receptores y canales iónicos, ahora existen bibliotecas de AAV para imágenes, neuromodulación y detección de actividad sináptica. En construcciones AAV disponibles comercialmente, una combinación.......

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Este trabajo está financiado por CBS Bridging Grant otorgado a OOM. OOM, PAA y AS diseñaron el estudio y realizaron los experimentos. AS y PAA analizaron los resultados. OOM y PAA prepararon el manuscrito. Agradecemos al Dr. Karl Disseroth (Universidad de Stanford) por hacer que el AAV esté disponible para nuestro uso.

....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Peróxido de hidrógeno al 3% FisherquímicoH312
AAV-CaMKIIα-ChR2-eGYPPlásmido de Addgene #26969
Cable
BNC Amazon BNC SplitterAmazon
Ceramic Split Taguito de acoplamiento para Ø Casquillos de 1,25 mm.ThorlabsADAL1-5
TaladroDremelLR 39098
Portaobjetos recubiertos de gelatinaFisher scientificOBSLD01CS
Jeringa de Hamilton (Neuros)WPI Inc.06H
Adaptador de platinade cabeza NeuronexusAdpt-Q4-OM32
Sonda de silicio de alta impedanciaNeuronexusQ1x1-tet-5mm-121-CQ4
Controlador de grabación INTAN 512ch SoluciónINTAN RHD2000
Dynarex1425
IsofluranoPiramalNDC 66794-017-25
Espectro de ketaminaK1068
Controlador LEDThorlabsLEDD1B
Fuente de luz LED (470 nm)-luz azulThorlabsM470F3
MicromanipuladorNarishigeM0-203
Fibra ópticaThorlabsCFMLC14L05
Tornillo philips de cabeza plana (M0.6 X 2 mm)AmazonM0.6 X 2 mm
Cabezal de preamplificador (32 canales)INTANC3314
Marco estereotáxicoKopf1530
TTL PulsadorPrizmatix4031
UretanoSigmaU2500
XilacinaAlfa AesarJ61430
SoftwareCompany Version
Graphpad PrismaSoftware GraphPadversión 8
Intan Recording ControllerIntantechversión 2.07
NeuroexplorerNex Technologiesversión 5.215
Plexon Offline Spike SorterPlexon Incversión 4.5
ACSF Composición: ACSF fuertemente oxigenado con 95% > oxígeno/5%CO2 que se burbujea constantemente a través de
la ACSF (ACSF; en mM 125 NaCl, 25 NaHCO3, 3 KCl, 1,25 NaH2PO4, 1 MgCl2, 2 CaCl2 y 25 de glucosa).
de yodo

Referencias

  1. Lo, L., Anderson, D. J. A Cre-dependent, anterograde transsynaptic viral tracer for mapping output pathways of genetically marked neurons. Neuron. 72 (6), 938-950 (2011).
  2. Li, J., Liu, T., Dong, Y., Kondoh, K., Lu, Z. Trans-synaptic Neura....

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Reimpresiones y permisos

Explorar más artículos

Neuronas glutamatérgicas del VTAcapa CA1 del hipocampomarcaje dependiente de AAVestimulación optogenéticarastreo anterógradoelectrodos de alta impedanciaregistro multiunitarioimagen de fluorescenciacirugía estereotáxicaoptogenética in vivo