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Artículo de método

In Vivo CRISPR/Cas9 Screening para evaluar simultáneamente la función génica en la piel del ratón y la cavidad oral

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DOI:

10.3791/61693

2 de noviembre de 2020

En este artículo

Resumen

Aquí describimos una metodología de detección CRISPR/Cas9 rápida y directa in vivo utilizando inyecciones lentivirales embrionarias de tero guiadas por ultrasonido para evaluar simultáneamente las funciones de varios genes en la piel y la cavidad oral de ratones inmunocompetentntes.

Resumen

Los modelos de ratón modificados genéticamente (GEMM) han sido fundamentales para evaluar la función génica, modelar enfermedades humanas y servir como modelo preclínico para evaluar las vías terapéuticas. Sin embargo, su naturaleza de tiempo, mano de obra y costo intensivo limita su utilidad para el análisis sistemático de la función génica. Los recientes avances en las tecnologías de edición del genoma superan esas limitaciones y permiten la rápida generación de perturbaciones genéticas específicas directamente dentro de órganos específicos del ratón de una manera multiplexada y rápida. Aquí, describimos un método basado en CRISPR/Cas9 (Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats) para generar miles de clones genéticos knock-out dentro del epitelio de la piel y la cavidad oral de ratones, y proporcionar un protocolo que detalle los pasos necesarios para realizar una pantalla CRISPR directa in vivo   para los genes supresores tumorales. Este enfoque se puede aplicar a otros órganos u otras tecnologías CRISPR/Cas9 como la activación CRISPR o la inactivación CRISPR para estudiar la función biológica de los genes durante la homeostasis tisular o en diversos entornos de la enfermedad.

Introducción

Uno de los desafíos para la investigación del cáncer en la era post-genómica es extraer la gran cantidad de datos del genoma para mutaciones genéticas causales e identificar nodos en la red genética que pueden ser dirigidos terapéuticamente. Si bien los análisis bioinformáticas han ayudado enormemente hacia estos objetivos, establecer modelos eficientes in vitro e in vivo es un requisito previo para descifrar la complejidad de los sistemas biológicos y los estados de enfermedades y para permitir el desarrollo de fármacos. Si bien los modelos convencionales de ratón transgénico se han utilizado ampliamente para estudios genéticos in vivo sobre el cáncer, su naturaleza ....

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Protocolo

Este protocolo fue aprobado y realizado de acuerdo con la UACUC de la Universidad de Toronto.

1. Diseño y clonación de bibliotecas CRISPR agrupadas

  1. Seleccione 4-5 sgRNAs dirigidos a genes de ratón de interés de recursos como el diseñador de esgRNA de Broad Institute (https://portals.broadinstitute.org/gpp/public/analysis-tools/sgrna-design) o el servidor CHOPCHOP (https://chopchop.cbu.uib.no). Seleccione un número igual de sgRNAs no dirigidos de, por ejemplo, Sanjana y otros9 para generar una biblioteca de gRNA de controles no dirigidos de igual tamaño.
  2. Mientras construye las bibliotecas de sgRNA,....

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Resultados

La Figura 1A muestra el diseño de los oligonucleótidos para multiplexar varias bibliotecas CRISPR personalizadas de una manera rentable en un solo chip de oligo de 12k o 92k. Una vez seleccionados los sgRNAs (color azul codificado), los oligonucleótidos están diseñados con sitios de restricción (BsmBI de color naranja) y pares de imprimación PCR específicos de la biblioteca (codificados en color verde). Varias bibliotecas se pueden diseñar mediante el uso de una combinación única de pares de.......

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Discusión

La edición del genoma CRISPR/Cas9 ha sido ampliamente utilizada en estudios in vitro e in vivo para investigar las funciones genéticas y los procesos celulares. La mayoría de los estudios in vivo utilizan células editadas por genes CRISPR/Cas9 injertadas en un modelo animal (aloinjerto o xenoinjerto). Si bien esta es una poderosa herramienta para estudiar la genética del cáncer y las funciones celulares, todavía carece del microambiente de tejido nativo y podría provocar heridas y/o respuestas inmunes.

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Este trabajo fue apoyado por una subvención de proyectos del Instituto Canadiense de Investigación de la Salud (CIHR 365252), la Fundación Krembil y la Ronda 8 de Excelencia en Investigación del Fondo de Investigación de Ontario (RE08-065). Sampath Kumar Loganathan es el receptor de una beca de la Sociedad Canadiense del Cáncer (BC-F-16#31919).

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Filtro de 0,45 micrasSigmaS2HVU02RE
chip de oligo de 12k o 92kCustomarray Inc. (Genscript)
Placas de cultivo celular de 15 cmCorning
293FTInvitrogenR70007
293NTSystems BiosciencesLV900A-1
Fosfatasa alcalinaNEBM0290L
AmplicillinaFisher ScientificBP1760-25
ATPNEB9804S
BsmBINEBR0580L
Sutura intestinalcrómica Covidien
Secuenciación profunda (Next-Seq o Hi-Seq)Illumina
Kit de limpieza de ADNZymo ResearchD4008
Kit de extracción de ADN para sangre y tejidos DNAesyQiagen69506
Células electrocompetentes EnduraLucigen60242-1
Capilares de vidrioDrummond3-000-203-G/X
HEK293T célulasATCCCRL-3216
Centrífuga de alta velocidadBeckman CoulterMLS-50
LB AgarWisent Technologies800-011-LG
Extractor de micropipetasSutter InstrumentP97
Aceite mineralSigmaM5904
Mini-prep plásmidoKit Frogga BioPDH300
Sistema de anestesia con oxígeno para ratónVisual Sonics
Micromanipulador Nanoject IIDrummond
NEBuffer 3.1 ( Tampón para BsmBI)NEBR0580L
Afilador de agujasSutter InstrumentBV-10
Kit de limpieza de oligonucleótidosZymo researchD4060
PAGE imprimación de secuenciación illumina purificadaIDT DNA
PEI (polietileneimina)Sigma408727-100ML
Arcillade modelar Permoplast
Petridish con apertura centralVisual Sonics
pMD2.GAddgene12259
psPAX2Addgene12260
Q5 Polymerase 2x Master mixNEBM0494L
Qubit Fluorometric QuantificationInvitrogenQ33327
Semicircular Tapón de siliconaCorning
Membrana de siliconaVisual Sonics
T4 DNA ligasaNEBM0202L
Tubos ultracentrífugosBeckman Coulter344058
sistema de ultrasonido Vevo2000Visual Sonics

Referencias

  1. Beronja, S., Fuchs, E. RNAi-mediated gene function analysis in skin. Methods in Molecular Biology. 961, 351-361 (2013).
  2. Beronja, S., Livshits, G., Williams, S., Fuchs, E. Rapid functional dissection of genetic networks via tissue-specific transduct....

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