Artículo de método

Aislamiento, proliferación y diferenciación de células madre derivadas de tejido adiposo de macaco rhesus

DOI:

10.3791/61732

26 de mayo de 2021

En este artículo

Resumen

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En este artículo, describimos el aislamiento de células madre derivadas de tejido adiposo derivadas de macaco rhesus (ADSC) utilizando un protocolo de digestión enzimática de tejidos. A continuación, describimos la proliferación de ADSC que incluye el desprendimiento celular, el conteo y el recubrimiento. Por último, la diferenciación de ADSC se describe utilizando agentes inductores adipogénicos específicos. Además, describimos técnicas de tinción para confirmar la diferenciación.

Resumen

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El tejido adiposo proporciona una fuente rica y accesible de células madre multipotentes, que son capaces de autorrenovarse. Estas células madre derivadas de tejido adiposo (ADSC) proporcionan un sistema celular ex vivo consistente que es funcionalmente similar al de los adipocitos in vivo. El uso de ADSC en la investigación biomédica permite la investigación celular de la regulación metabólica y la función del tejido adiposo. La diferenciación ADSC es necesaria para la expansión adecuada de los adipocitos, y la diferenciación subóptima es un mecanismo importante de la disfunción adiposa. Comprender los cambios en la diferenciación de ADSC es crucial para comprender el desarrollo de la disfunción metabólica y la enfermedad. Los protocolos descritos en este manuscrito, cuando se siguen, producirán adipocitos maduros que pueden usarse para varias pruebas funcionales in vitro para evaluar la función metabólica de ADSC, que incluyen, entre otros, ensayos que miden la absorción de glucosa, lipólisis, lipogénesis y secreción. Los macacos Rhesus (Macaca mulatta) son fisiológica, anatómica y evolutivamente similares a los humanos y, como tales, sus tejidos y células se han utilizado ampliamente en la investigación biomédica y para el desarrollo de tratamientos. Aquí, describimos el aislamiento de ADSC utilizando tejido adiposo subcutáneo y omental fresco obtenido de macacos rhesus de 4 a 9 años de edad. Las muestras de tejido adiposo se digieren enzimáticamente en colagenasa seguida de filtración y centrifugación para aislar las ADSC de la fracción vascular estromal . Las ADSC aisladas proliferan en medios estromales seguidas de aproximadamente 14-21 días de diferenciación utilizando un cóctel de 0,5 μg/ml de dexametasona, 0,5 mM de isobutilmetilxantina y 50 μM de indometacina en medios estromales. Los adipocitos maduros se observan aproximadamente a los 14 días de diferenciación. En este manuscrito, describimos protocolos para el aislamiento, proliferación y diferenciación de ADSC in vitro. Aunque nos hemos centrado en las ADSC del tejido adiposo del macaco rhesus, estos protocolos se pueden utilizar para el tejido adiposo obtenido de otros animales con ajustes mínimos.

Introducción

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El tejido adiposo está compuesto por una mezcla heterogénea de células, predominantemente adipocitos maduros y una fracción vascular estromal que incluye fibroblastos, células inmunes y células madre derivadas de tejido adiposo (ADSC)1,2,3. Las ADSC primarias pueden aislarse directamente del tejido adiposo blanco y estimularse para diferenciarse en adipocitos, cartílagos o células óseas4. Las ADSC exhiben características clásicas de células madre, como el mantenimiento de la multipotencia in vitro y la autorrenovación; y son adherentes al plástico en c....

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Protocolo

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Todos los tejidos y procedimientos obtenidos fueron aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales en el Centro de Ciencias de la Salud de la Universidad Estatal de Louisiana y se realizaron de acuerdo con las pautas del Instituto Nacional de Salud (publicación de los NIH No. 85-12, revisada en 1996).

1. Preparación de tampones y soluciones

  1. Prepare una solución estéril de tampón de lavado salino tamponado con 5-fosfato (5-PBS) agregando 5% de penicilina/estreptomicina (pluma/estreptococo) y 0,25 μg/ml de inhibidor fúngico a 1x PBS. Prepare una solución estéril de tampón de lavado de 2-PBS (2-PBS) agregando 2% d....

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Resultados

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Las ADSC aisladas de muestras de tejido adiposo de macaco rhesus se sembraron en placas de cultivo y se muestra en la Figura 1. El día del recubrimiento, las células no son adherentes y flotan en la placa de cultivo como se muestra en la Figura 1A. Dentro de las 72 h, las ADSC se volverán 80% confluentes y estarán listas para la diferenciación de adipocitos (Figura 1B). Las ADSC exhiben fuertes características adipogénicas después d.......

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Discusión

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Los protocolos de aislamiento, proliferación y diferenciación de ADSC son sencillos y reproducibles, pero requieren una técnica cuidadosa para garantizar un aislamiento adecuado, una expansión saludable y una diferenciación eficiente. Un entorno de trabajo estéril es fundamental para todos los experimentos de cultivo celular. Las bacterias u hongos pueden introducirse en cultivos celulares a través de herramientas, medios o entornos de trabajo contaminados. La contaminación por hongos está indicada por el crecimiento de .......

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Agradecimientos

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Los autores desean agradecer a Curtis Vande Stouwe por su asistencia técnica. La investigación subyacente al desarrollo de los protocolos fue apoyada por subvenciones del Instituto Nacional sobre el Abuso del Alcohol y el Alcoholismo (5P60AA009803-25, 5T32AA007577-20 y 1F31AA028459-01).

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
0,4 % azul de tripanoThermo-Fisher15250061
tubo de microcentrífuga de 1,5 mlDot Scientific707-FTG
100 % isopropanolSigma-AldrichPX1838-P
placa de cultivo celular de 100 mmCorning430167
3-Isobutil-1-metilxantinaSigma-AldrichI7018
50 mL tubo cónico de plásticoFisher Scientific50-465-232
70-µ colador de células mCorningCLS431751
a-MEMThermo-Fisher12561056
Papel de aluminioReynolds Wrap
BODIPYThermo-FisherD3922
Albúmina sérica bovina (BSA)Sigma-Aldrich05470
CentrífugaEppendorf5810 R
Colagenasa, Termo-Fishertipo I 17100017
dexametasona-soluble en aguaSigma-AldrichD2915
Dimetilsulfóxido, DMSOSigma-AldrichD2650
Agua destiladaThermo-Fisher15230162
Suero bovino fetal, aprobado por el USDASigma-AldrichF0926
Fungizone/Anfotericina B (250 ug/mL)Thermo-Fisher15290018
Hanks' Balanced Salt Solution (HBSS)Thermo-Fisher14175095
Hemacitómetro con cubreobjetosSigma-AldrichZ359629
IndometacinaSigma-AldrichI7378
Microscopio óptico invertidoNikonDIAPHOT-TMD
L-glutamina (200 mM)Thermo-Fisher25030081
Balancín de laboratorio, de 0,5 a 1,0 HzModelo científico fiable55 Balanceo
Formalina tamponada neutra (10 %)Pharmco8BUFF-FORM
Aceite Rojo OSigma-AldrichO0625
ParaformeldehídoSigma-AldrichP6148
Penicilina-Estreptomicina (10.000 U/mL)Thermo-Fisher15140122
solución salina tamponada con fosfato (PBS), pH 7,4Thermo-Fisher10010023
tampón de lisis de glóbulos rojos (RBC)Qiagen158904
Pipetas serológicas, de 2 a 25 mlCostar Stripettes
cultivo celular humidificada estándar, 37 & grados; C, 5 % CO2SanyoMCO-17AIC
Tripsin-EDTA (0,25%)Thermo-Fisher25200056
Incubadora de

Referencias

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  1. Fain, J. N. Release of interleukins and other inflammatory cytokines by human adipose tissue is enhanced in obesity and primarily due to the nonfat cells. Vitamins and Hormones. 74, 443-477 (2006).
  2. Ibrahim, M. M.

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Reimpresiones y permisos

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Etiquetas

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