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Behavior

당뇨병 쥐의 Y-미로를 통한 광운동 반응 및 인지 기능을 통한 시각 기능의 행동 평가

Published: October 23, 2020 doi: 10.3791/61806
Automatic Translation
*1,2, *1,3, 1,4, 1, 1, 1,2, 1,2
1Center for Visual and Neurocognitive Rehabilitation, Atlanta VA Medical Center, 2Department of Biomedical Engineering, Georgia Institute of Technology, 3Department of Neuroscience, Emory University, 4Gangarosa Department of Environmental Health, Emory University
* These authors contributed equally

ERRATUM NOTICE

Summary

당뇨병의 결과로 눈과 두뇌 둘 다에 있는 신경 변성은 설치류에 행해진 행동 시험을 통해 관찰될 수 있습니다. Y-미로, 공간 인식의 측정, 및 광운동 반응, 시각 기능의 측정, 둘 다 잠재적인 진단 및 치료에 대 한 통찰력을 제공.

Abstract

광차 반응과 Y-미로는 각각 시각 및 인지 기능을 평가하는 데 유용한 행동 테스트입니다. 광두운동 반응은 당뇨 망막증을 포함한 다수의 망막 질환 모델에서 시간이 지남에 따라 공간 주파수(SF) 및 콘트라스트 감도(CS) 임계값의 변화를 추적하는 귀중한 도구입니다. 유사하게, Y-미로는 중추 신경계에 영향을 미치는 여러 질병 모델에서 공간 인식(자발적인 교대로 측정된 대로) 및 탐사 행동(여러 항목으로 측정된 대로)을 모니터링하는 데 사용될 수 있다. 광차 반응과 Y-미로의 장점은 감도, 테스트 속도, 타고난 응답의 사용 (훈련이 필요하지 않음), 깨어있는 (non-마취) 동물에서 수행 할 수있는 능력을 포함한다. 여기서, 프로토콜은 타입-I 및 타입 II 당뇨병의 모형에 도시된 그들의 사용의 optomotor 반응 그리고 Y-미로 및 예 둘 다에 기술됩니다. 방법에는 설치류 및 장비의 준비, 광전차 반응 및 Y-미로의 성능 및 테스트 후 데이터 분석이 포함됩니다.

Introduction

4억 6,300만 명 이상이 당뇨병환자로 살고 있어 세계 최대의 질병 전염병 1중 하나입니다. 당뇨병에서 발생하는 심각한 합병증 중 하나는 당뇨병 성 망막증 (DR), 노동 연령 미국 성인을위한 실명의 주요 원인2. 향후 30년 동안 DR의 위험에 처한 인구의 비율은 두 배로 증가할 것으로 예상되므로 DR 개발을 예방하고 완화하기 위해 초기 단계에서 DR을 진단하는 새로운 방법을 찾는 것이 중요합니다3. DR은 전통적으로 혈관 질환으로 생각되었다4,5,6. 그러나, 지금 혈관 병리학 앞에 망막에 있는 신경 기능 장애 및 세포멸증의 기록으로, DR는 신경 및 혈관 분대4,5,6,7,8,9가 있기 위하여 정의됩니다. DR을 진단하는 한 가지 방법은 망막에 있는 신경 이상을 검토하는 것입니다, 다른 신경 조직 보다는 당뇨병에서 산화 긴장 및 신진 대사 긴장에 더 취약할 지도 모르다 조직10.

인지 기능 및 운동 기능의 감소는 또한 당뇨병과 함께 발생하고 수시로 망막 변경과 상관됩니다. 타입 II 당뇨병을 가진 더 오래된 개별은 더 나쁜 기준선 인지 성과를 묘사하고 통제 참가자보다는 더 악화된 인지 쇠퇴를 보여줍니다11. 추가적으로, 망막은 중앙 신경계의 연장으로 설치되고 병리는 망막12에서 명시할 수 있습니다. 임상적으로, 망막과 두뇌 사이 관계는 알츠하이머병과 그밖 질병의 맥락에서 공부되었습니다 그러나 당뇨병으로 일반적으로 탐구되지 않습니다12,13,14,15,16. 당뇨병의 진행 도중 두뇌및 망막에 있는 변경은 STZ 쥐 (독소, 연쇄상 조토신 또는 STZ가 췌장 베타 세포를 손상하기 위하여 이용되는 타입-I 당뇨병의 모형) 및 고토-Kakizaki 쥐 (동물이 고혈당증을 개발하는 타입 II 당뇨병의 polygenic 모형)를 포함하여 동물 모형을 사용하여 탐구될 수 있습니다. 이 프로토콜에서는, 당뇨병 설치류에 있는 인식 및 시각 변경을 평가하기 위하여 Y-미로 및 광전사 반응에 대한 설명이 각각 제공됩니다, 제공됩니다. 광운동 반응(OMR)은 각 eye17의 시각적 임계값을 측정하기 위해 특징적인 반사식 헤드 트래킹 움직임을 모니터링하여 공간 주파수(시각 시력과 유사)와 콘트라스트 감도를 평가합니다. 공간 주파수는 막대의 두께 또는 미세성을 나타내며, 대비 감도는 막대와 배경 사이에 얼마나 많은 대비가 있는지를 나타냅니다(그림 1E). 한편, Y-미로는 미로의 팔을 통해 자발적인 교대와 항목을 통해 관찰되는 단기 공간 기억과 탐사 기능을 테스트합니다.

두 테스트 모두 깨어 있는 비 마취 동물에서 수행 될 수 있으며 동물의 타고난 반응을 활용하는 이점이 있어 훈련이 필요하지 않습니다. 둘 다 상대적으로 민감하다는 점에서 설치류에서 당뇨병의 진행 초기에 적자를 감지하는 데 사용할 수 있으며, 다른 시각, 망막 또는 행동 테스트와 상관 관계가있는 결과를 생성한다는 점에서 신뢰할 수 있습니다. 또한, OMR 및 Y-미로를 전기 전세노그램 및 광학 일관성 단층 촬영 검사와 같은 테스트와 함께 사용하면 질병 모델에서 망막, 구조적 및 인지 변화가 서로 에 비해 발달할 때에 대한 정보를 제공할 수 있다. 이 조사는 당뇨병 때문에 생기는 신경 변성 을 확인하는 에 유용할 수 있었습니다. 궁극적으로, 이것은 효과적으로 진행의 초기 단계에서 DR을 식별하는 새로운 진단 방법으로 이어질 수 있습니다.

이 프로토콜을 개발하는 데 사용되는 OMR 및 Y-미로 시스템은 재료 표에 설명되어 있습니다. OMR에 대한 이전 연구, Prusky 외.18에 의해, 그리고 Y-미로, 모리스 등 al.19에 의해, 이 프로토콜을 개발하는 출발점으로 사용되었다.

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Protocol

모든 절차는 애틀랜타 재향 군인 사무 기관 동물 관리 및 사용위원회에 의해 승인되었으며 실험실 동물의 치료 및 사용에 대한 국립 보건 원 가이드 (NIH 간행물, 8 판 , 업데이트 2011)에 부합했습니다.

1. 광차 반응 (OMR)

  1. OMR 장치 설정(재료 표의 장치 및 소프트웨어에 대한 세부 정보)
    1. 설치류에 적합한 크기의 플랫폼을 선택하십시오: 마우스, 쥐 또는 크고 손상된 쥐(그림 1A).
    2. 옵션의 여러 탭과 OMR / 가상 드럼의 내부의 라이브 비디오 피드와 창에 열려야 OMR 소프트웨어를 엽니 다 (그림 1B). 플랫폼과 주변 환경이 보이면 필요에 따라 비디오 카메라를 확대 하거나 축소합니다.
    3. 라이브 이미지의 왼쪽을 따라 아이콘을 기록합니다(그림 1C). 별표 아이콘과 회전 줄무늬 아이콘을 클릭하여 녹색 별표와 녹색 회전 줄무늬가 라이브 피드에서 사라지않도록 합니다.
    4. 녹색 원과 두 개의 수직 선이 표시되도록 나침반 아이콘 을 클릭합니다. 녹색 원을 스트레칭하여 플랫폼의 검은 색 원과 완벽하게 정렬되어 OMR이 완벽하게 정렬되도록 합니다.
    5. 테스트 중에 원을 볼 필요가 없으므로 나침반 아이콘 을 클릭합니다. 녹색 별표 아이콘 과 녹색 회전 줄무늬 아이콘을 클릭하여 다시 나타납니다. 녹색 줄무늬가 드럼의 줄무늬와 같은 방향으로 회전하여 연구원이 줄무늬의 방향을 알 수 있습니다.
    6. 테스트 탭을 클릭합니다. 테스트 에서 심리 물리학 탭을 클릭합니다. 임계값 아래에서 주파수를 선택하여 공간 주파수를 측정합니다.
      참고: OMR 소프트웨어는 계단 패러다임을 사용하여 SF(공간 주파수)를 자동으로 계산합니다. 대비는 100%로 유지됩니다.
    7. 테스트 에서 사전 설정 탭을 클릭합니다. Mouse18 또는 Rat20의 기본 설정을 선택합니다.
    8. 테스트 에서 블랭킹 탭을 클릭합니다. 마우스가 마우스를 마우스오른쪽 단추로 클릭할 때마다 드럼의 컴퓨터 화면에서 줄무늬를 일시 중지/블랭크하는 추적 상자의 공백을 확인합니다.
    9. 테스트 결과가 표시되는 결과 탭을 클릭합니다.
  2. 공간 주파수 평가
    1. 12°/s의 속도로 챔버를 돌고 있는 수직 사인파 격자를 보여주는 4개의 컴퓨터 모니터로 구성된 가상 현실 챔버의 중앙에 설치류를 배치합니다(도 1D).
    2. 챔버 상단에 위치한 비디오 카메라가 설치류의 동작을 컴퓨터 모니터에 실시간으로 투사합니다.
    3. 격자가 시계 방향 또는 반시계 방향으로 이동함에 따라 설치류의 머리에 의한 반사 작용의 존재 또는 부재를 찾습니다. 프로그램에 그림막대가 표시되는지 확인합니다.
      1. 설치류의 머리가 격자와 같은 방향으로 이동하는 것을 지켜보십시오. 헤드 모션의 불규칙한 파열이 아닌 매끄러운 추격이 있을 때까지 기다렸다가 추적으로 계산하십시오.
      2. 적절하게 예 또는 아니오를 클릭합니다. SF는 0.042 cyc/deg로 시작하여 각 예 및 아니오로 조정하여 더 쉽거나 더 어려워집니다(그림 1E). 예및 아니오의 우발적이거나 잘못된 클릭으로 테스트를 재설정해야 하는 경우 리셋을 클릭합니다.
    4. 설치류를 테스트할 때 설치류의 머리 위에 별표를 배치해야 합니다.
      참고: 이것은 두 가지 효과가 있습니다: 1) 올바른 공간 주파수를 유지합니다. 예를 들어, 별표가 어깨 사이에 위치하는 경우 공간 주파수가 낮아지고 막대를 쉽게 볼 수 있으므로 거짓으로 높은 점수를 받게 됩니다. 2) 머리 움직임이 약간 있는 설치류의 경우 별표는 머리가 실제로 움직이는지 여부를 쉽게 측정할 수 있게 합니다.
    5. 설치류의 공간 주파수에 도달하면 시스템이 "완료"라고 말하는 것을 지켜보십시오. 예 및 아니오 단추를 더 이상 클릭할 수 없습니다.
    6. 왼쪽 눈, 오른쪽 눈 및 결합된 눈의 공간 주파수를 표시하는 결과 탭을 클릭합니다.
      참고: 때로는 결과가 뒤집히기 위해 소프트웨어가 설정되기도 합니다, 즉, 오른쪽 눈은 왼쪽 눈으로 보고되고 왼쪽 눈은 오른쪽 눈으로 보고됩니다. 이것은 녹내장 모형에 있는 단 1개의 눈 병변이 있던 설치류를 평가할 때 발견되었습니다.
  3. 대비 감도 평가
    참고: 콘트라스트 감도 테스트는 공간 주파수 테스트 후 설치류가 피로로 보이는 경우 같은 날 또는 다른 날에 공간 주파수 측정 단계 직후 또는 자체적으로 수행할 수 있습니다(대비 감도만 테스트하는 경우 1-2단계를 따르십시오).
    1. 테스트 탭을 클릭한 다음 심리 물리학 탭에서 클릭합니다. 임계값 아래에서 대비(단일)를 선택하여 대비 민감도를 측정합니다.
    2. 또한 계단 패러다임을 사용하여 콘트라스트 감도(CS) 곡선의 피크에서 SF 상수로 격자를 시작합니다. 이렇게 하려면 자극 탭을 클릭한 다음 Gratings 탭에서 클릭합니다. 공간 주파수 상자에서, 쥐에 대 한 0.064 유형 및 0.103 마우스에 대 한.
    3. 100%에서 콘트라스트를 시작하고 공간 주파수 테스트 중에 볼 수 있는 것과 동일한 반사식 헤드 움직임을 찾습니다. 설치류가 자극에 응하여 반사헤드 움직임을 더 이상 하지 않을 때까지 테스트가 진행됨에 따라 대비가 저하됩니다(그림 1E).
    4. 설치류가 더 이상 시각적 자극에 응답하지 않고 대비 감도 임계값에 도달하면 "완료"와 예 및 아니오 버튼을 더 이상 클릭할 수 없습니다. 왼쪽 눈, 오른쪽 눈 및 결합된 눈의 대비 감도가 나열되는 결과 탭을 클릭합니다.
  4. 테스트 후 분석 수행
    1. 두 눈이 비슷한 적자를 가질 것으로 예상되는 당뇨병 망막증 연구의 경우 분석을 위해 합산 점수 (오른쪽 눈과 왼쪽 눈의 평균)를 사용합니다. 눈에 차동 손상을 일으키는 모델(예: 폭발 부상 또는 녹내장)의 경우 왼쪽 및 오른쪽 눈 데이터를 분리하십시오.
    2. 공간 주파수의 경우 원시 점수( 결과 탭의 데이터)를 사용하여 이러한 점수를 그룹별로 함께 분석하고 평균합니다(예: 당뇨병, 제어 등).
    3. 대비 감도의 경우 원시 값을 사용하여 미켈슨 대비로 보고된 콘트라스트 감도를 화면 의 휘도의 이전 측정값과 계산합니다.

2. Y-미로

  1. 테스트를 위한 설치류 준비
    1. 테스트 전에 설치류를 30분 동안 방에 조정합니다.
      참고 : 연구원은 조명이 켜져있는 방에 남아있을 수 있지만이 시간 동안 침묵해야합니다.
    2. Y-미로를 동물에게 안전한 살균 용액으로 청소하고 종이 타월로 모든 살균 용액을 닦아냅니다. 미로가 건조한지 확인합니다.
  2. Y-미로 실시
    1. Y-미로의 초기 암을 B로, 다른 2개의 팔을 A와 C로 레이블을 지정합니다(그림 2A). Y-미로의 중심 근처에 연구원(팔 B)과 가장 가까운 팔에 설치류 1개를 놓습니다. 설치류가 배치되면 타이머( 재료 표의 미로 및 타이머에 대한 세부 정보)를 시작합니다.
      1. 각 설치류가 8분 동안 Y-미로를 탐험할 수 있도록 허용합니다. 이 시간 동안 녹음을 가지고 어떤 관찰을 기록합니다. 미로에서 몇 미터 떨어진 곳에 앉아 시야에 보관하고 소음을 피하십시오.
      2. 시작 위치를 A로 기록하고 설치류가 새 팔에 들어갈 때마다 설치류의 새 위치를 기록합니다(그림 2B). 설치류의 네 개의 팔다리가 모두 팔 중 하나에 있는 것으로 항목을 정의합니다.
      3. 설치류가 미로의 한 팔에 숨기고 고정된 상태로 유지되는 것을 지켜보십시오. 설치류가 60s 이상 같은 장소에 남아 있고 탐색적 행동을 보이지 않는 경우 설치류를 Y-미로의 중심으로 이동하고 재판을 계속합니다.
    2. 각 설치류 후, 어떤 배설물제거하고 살균 용액으로 미로를 청소합니다.
      1. 모든 살균 용액이 종이 타월로 닦아내고 미로에 다음 설치류를 놓기 전에 미로가 완전히 건조되었는지 확인하십시오.
  3. 자발적인 교대 및 탐색 동작 계산
    1. 8분 동안 이루어진 총 항목 수로 탐색 동작을 계산합니다.
    2. 자발적인 교대로 측정된 공간 인식을 계산합니다.
      성공적인 교대체 수/(총 출품작 수 - 2)
      1. 설치류가 세 개의 서로 다른 위치로 순차적으로 이동함에 따라 성공적인 교대를 정의합니다(예: ABC, CAB, BCA 등). 각 성공적인 교대조(그림 2B)에 유의하십시오.
      2. 움직임이 ACABCABABCABC로 기록된 경우 자발적인 교대조를 계산할 때 두 개의 초기 시작 위치를 무시합니다(분모에 11개의 움직임이 있음). 정확한 움직임 의 수를 계산합니다 (정확한 움직임 = 8). 8/(13 - 2) = 72.7%로 백분율 정확도를 계산합니다.

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Representative Results

OMR은 설치류로부터 공간 주파수 및 대비 감도 임계값을 얻을 수 있는 경우 성공한 것으로 간주됩니다. 여기서, 공간 주파수를 평가하기 위하여 OMR의 사용은 순진한 통제 브라운 노르웨이와 긴 에반스 쥐, 둘 다 젊은 (3-6 달) 및 나이 (9-12 달)에 도시됩니다. 갈색-노르웨이 쥐는 일반적으로 긴 에반스 쥐 보다 더 높은 기준선 공간 주파수를 보여줍니다. 또한, 공간 주파수에 대한 노화 효과는 긴 에반스 쥐에서 관찰되었다(도 3A). 데이터는 일방적인 ANOVA를 사용하여 분석되었으며, 홈스-시닥 후 비교는 젊고 노화된 결과가 다른 집단에서 나왔습니다.

대비 감도를 평가하기 위해 OMR의 사용은 운동 내정간섭 처리를 수신한 타입-I 당뇨병의 STZ 모형에서 도시됩니다. 긴 에반스 쥐는 네 개의 그룹 중 하나에 할당되었다: 제어, 제어 + 활성, 당뇨병, 및 당뇨병 + 활성. 당뇨병 쥐는 췌장 베타 세포를 손상시키고 고혈당증을 유도하기 위해 독소 STZ의 정맥 주사를 투여하였다. 활성 쥐는 러닝 머신 운동의 30 분, 일주일에 5 일을 받았다. 비활성 쥐는 잠긴 러닝머신을 가지고 있었다. 대조적 인감 (도 3B)에서 상당한 적자는 당뇨병 쥐에서 관찰되었다. 운동 치료는 이러한 적자를 감소 (그림 3B). 이러한 결과는 OMR이 시간이 지남에 따라 망막 적자를 감지하고 추적하고 망막 질환에 대한 치료 및 개입의 영향을 평가하는 데 유용하다는 것을 보여줍니다22. 데이터는 양방향 반복 측정 ANOVA를 사용하여 분석되었으며, 그 다음으로 홈스-시닥 후 비교가 뒤따랐습니다. 결과는 제어하기 위해 정규화된 데이터(그림 3B) 또는 원시 값(그림 3A; 공간 주파수: 사이클/도 또는 c/d; 대비 감도: 임의 단위 또는 a.u.)로 표시될 수 있습니다. 일반적으로, 6-10 동물, 부상의 심각도에 따라, OMR와 상당한 차이를 찾을 필요가 있다.

설치류가 8분 이내에 미로의 최소 5개의 팔에 들어가면 Y-미로가 성공한 것으로 간주됩니다. 여기서, 인지 기능 및 탐색적 행동을 평가하는 Y-미로의 능력은 2-3주에서 시작하여 적당한 고혈당증을 개발하고 인슐린 보충을 필요로 하지 않는 타입 II 당뇨병의 polygenic, 비비만 모형인 고토-카키자키 쥐에 도시되어 있습니다. 자발적인 교대(그림 4A)에 의해 측정된 공간 인식의 상당한 적자및 탐사 적 행동은 항목 수(도 4B)로 측정된 바와 같이, 고토-카키자키 쥐에서 7주에서 시작되는 Wistar 대조군과 비교하여 관찰되었다. 제어 쥐에서 탐색 적 행동에 있는 감소를 표시 하는 것 4 받는 것 8 주. 이 경향은 또한 장기 연구 (8+ 나이의 달)에서 관찰됩니다. 운동의 감소는 반복되는 미로 노출과 참신의 부족 또는 나이에 일반적인 감소 운동 때문일 수 있습니다. 대조군 쥐는 4 주에서 8 주까지 공간 인식의 증가를 표시하는 것으로 보인다. 이러한 경향은 동물이 매주 대신 매월 실행되는 장기 연구에서 관찰되지 않으며 (실제로 노화가 감소하는 것이 종종 관찰됨), 따라서 공간 인식의 증가는 일주일에 한 번 미로를 실행하는 학습 효과 때문일 수 있습니다. 데이터는 양방향 반복 측정 ANOVA를 사용하여 분석되었으며, 그 다음으로 홈스-시닥 후 비교가 뒤따랐습니다. 최소 10 마리의 동물은 부상의 심각도에 따라 Y-미로와 상당한 차이를 찾는 데 필요합니다.

이 프로토콜은 타입 I 및 타입 II 당뇨병의 모형에서 시각 기능 및 인식 기능 데이터를 생성했습니다. 개별 적인 동물을 위한 점수는 함께 평균되고 당뇨병의 진행에서 초기에 처리 단 사이 중요한 다름을 검출하기 위하여 이용되었습니다. 당뇨병과 같은 전신 질환의 모델에서 시간이 지남에 따라 망막 및 인지 평가를 모두 수행하면 시간이 지남에 따라 적자의 일시적인 출현을 모니터링 할 수 있습니다. 예를 들어, 고토-카키자키 모델에서는 망막 기능 적자가 인지 및 탐색적 행동 적자(그림 5)보다 선행되는 것으로 나타났다.

Figure 1
그림 1: OMR 장비 설정. (A) 마우스, 쥐 및 크고 크거나 손상된 쥐 플랫폼의 그림. (B) 테스트 중 컴퓨터 화면 그림입니다. (C) 테스트 중 버튼 패널. (D) 챔버의 플랫폼에 쥐의 회로도. (E) 공간 주파수 및 대비 감도증가를 나타내는 예제 그라데이션. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

Figure 2
그림 2: Y-미로 장비 의 설정. (A) 무기라벨이 달린 Y-미로의 그림. (B) Y-미로 레코딩의 예와 함께 실험실 노트북의 그림. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

Figure 3
그림 3: OMR을 사용하여 시각적 기능을 추적합니다. (A) 젊은 (n = 11) 및 세 (n = 15) 브라운 노르웨이 (BN) 및 젊은 (n = 20) 및 노인 (n = 13) 긴 에반스 (LE) 쥐에 대한 공간 주파수 임계 값. 이 수치는 Feola 등에서 브라운 노르웨이 데이터를 제공합니다., 201921. (B) OMR을 사용하여 제1형 당뇨병의 STZ 쥐 모델에서 시간이 지남에 따라 감소된 망막 기능및 운동의 보호 효과를 추적한다. 활성 당뇨병 쥐 대 활성 당뇨병 쥐 및 제어 쥐에 대 한 대비 감도 임계값. 어두운 회색 별표는 대조군과 당뇨병 그룹 둘 다 의 차이를 나타냅니다. 오렌지 별표는 비활성 당뇨병 쥐와 활성 당뇨병 쥐 사이의 차이를 나타냅니다. 이 수치는 201822년 알렌 등쥐의 하위 집합에서 얻은 데이터를 제공합니다. 평균 ± SEM. ** p < 0.01, *** p < 0.001. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

Figure 4
그림 4: Y-미로를 사용하여 Wistar 컨트롤에 비해 타입 II 당뇨병의 고토 카키자키 모델에서 시간이 지남에 따라 인지 기능 및 탐색 적 행동을 추적합니다. (A) 고토-카키자키(당뇨병 환자) 및 위스타(대조군)의 인지 기능(자발적 교대) 4~8주. (B) 4~8주 의 예비 행동(출품작 수). 평균 ± SEM. ** p < 0.01, *** p < 0.001. 별표는 각 시점에서 고토 카키자키와 위스타 쥐의 차이를 나타냅니다. 쥐의 단 하나 코호트는 4 주에서 8 주까지 실행되었습니다 (GK : n = 7; 위스타: n = 10). 다른 모든 집단은 5주에서 8주까지 실행되었습니다(GK: n = 22; Wistar: n = 23) 주 5 ~8주에 29 (GK) 및 33 (Wistar)의 총 n. 이 수치는 201923년 Allen 등에서 수정되었습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

Figure 5
그림 5: 타입 II 당뇨병의 고토 카키자키 모델의 기능적 변화의 타임 라인. 고혈당증의 출현 후, 고토-카키자키 쥐에서 관찰된 첫 번째 변화는 4주에 나타나는 전하전도(ERG)에 의해 측정된 망막 기능에 있었다. 인지 및 탐구 행동 변화는 6 주 후에 나타났습니다. 이 수치는 201923년 Allen 등에서 수정되었습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

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Discussion

OMR과 Y-미로는 시간이 지남에 따라 설치류의 시각 기능 및 인지 기능 적자에 대한 비침습적 평가를 허용합니다. 이 프로토콜에서 OMR과 Y-미로는 당뇨병의 설치류 모델에서 시각 및 인지 적자를 추적하는 것으로 입증되었습니다.

프로토콜의 중요한 단계

The OMR

시각 기능을 평가하기 위해 OMR을 수행할 때 고려해야 할 몇 가지 중요한 사항은 사용되는 테스트 매개 변수, 실험 설계 및 테스트 타이밍 및 측정을 수행하는 연구원의 경험입니다. 프로토콜에서 가장 중요한 단계 중 하나는 매개 변수가 올바르게 설정되어 있는지 확인하는 것입니다. 또한, 설치의 일환으로 OMR 챔버는 각 설치류 전후에 살균 용액 또는 다른 승인된 소독제로 청소해야 합니다. 또한 대책을 수행하는 연구원이 교육을 받았으며 대책을 수행하는 데 경험이 있는 것도 중요합니다. 최상의 결과는 설치류가 차분하고 실험을 시작하기 전에 30 분 동안 케이지에 남겨서 방에 적응할 때 볼 수 있습니다. 또한 새로운 변형으로 작업을 시작할 때마다 기준선 공간 주파수 및 대비 감도를 결정하고 모든 균주가 동일한 기준 수준을 나타내는 것은 아닙니다. 갈색-노르웨이 쥐는 긴 에반스 쥐 보다 더 큰 기준선 공간 주파수. 한편, 알비노 쥐의 일부 변종은 공간 주파수를 손상 한 것 같다24, 알비노 쥐의 다른 긴장은 전혀 추적 행동을 전시하지 않는 동안. 많은 요인은 OMR에 알비노 동물의 제한된 반응에 기여할 수 있습니다: 시신경 섬유의 차동 감착으로 인한 방해 쌍안경, 눈 의 뒤쪽에 멜라닌의 부족, 그리고 이중 opsin 콘의 큰 비율. 에 관계 없이, albino 쥐 그들의 성능 검출의 한계에 너무 가까이 수 있기 때문에 OMR 테스트에 대 한 적절 한 과목 되지 않을 수 있습니다.

Y-미로

Y-미로를 수행하는 중요한 구성 요소는 기록 기간 동안 장애를 최소화하는 것을 포함합니다. 미로에 설치류의 초기 배치는 설치류가 30 분 동안 방에 적응 할 수 있도록 한 후에만 수행해야합니다. 이를 통해 설치류를 새로운 환경에 맞게 조정할 수 있으며 혼란스러운 요인이 설치류의 정상적인 동작에 영향을 미치지 못하게 됩니다. 각 시험 기간 동안 장애를 최소화하는 것은 매우 중요합니다. 여기에는 시끄러운 소음을 피하고 연구원이 설치류의 시야에서 벗어났는지 확인하는 것이 포함됩니다. 이러한 산만 설치류에 스트레스를 일으킬 수 있습니다. 또한 방의 벽은 중립적 인 색상으로 가능한 한 맨손으로 유지되어야한다는 점에 유의해야합니다. 벽이나 포스터의 밝은 색상은 설치류를 산만하게 할 수 있으며 탐색 동작 패턴에 영향을 미칠 수 있습니다.

메서드의 방법 및 수정 및 문제 해결의 제한 사항

The OMR

OMR의 잠재적인 제한은 실험자 바이어스의 영향을 받을 수 있으며 OMR 점수가 주관적이기 때문에 다른 실험자가 약간 다른 결과를 가질 수 있다는 것입니다. 너무 미묘하거나 머리 움직임으로 탐색 적 행동을 분류하는 머리 움직임을 놓치기 쉬울 수 있습니다. 바이어스는 OMR 결과에 영향을 미칠 수 있기 때문에, 실험자가 가능한 경우 치료 그룹과 연구 설계를 마스크하는 것이 가장 좋습니다. 자동 OMR의 개발 또는 두 테스터의 결과를 비교하는 것은 또한 실험자 편견을 감소시키는 데 도움이 될 수 있습니다.

OMR 테스트 중에 발생할 수 있는 한 가지 일반적인 문제는 설치류가 반복적으로 플랫폼에서 점프하여 시각적 임계값을 얻기 가 어렵습니다. 이 경우, 그것을 기록하고 부드럽게 플랫폼에 다시 쥐를 배치; 또한 다음 날 다시 쥐를 측정할 필요가 있을 수 있습니다. 또한, 이전에 측정된 적이 없는 쥐는 OMR에 배치될 때 탐색적인 행동에 관여할 수 있습니다. 이 문제가 발생하면 첫 번째 측정 후 1주일 정도 기준 측정을 추가하면 정확도를 향상시키는 데 도움이 될 수 있습니다. 이러한 동작의 과도한 양을 가진 테스트는 폐기해야 합니다.

나이 또는 후각 단서와 같은 그밖 요인은 또한 원치 않는 활동에 기여할 수 있었습니다. 따라서, 쥐의 시각 시스템 개발 의 타임 라인에 따라 실험을 설계하고 각 설치류를 테스트하기 전과 후에 플랫폼과 챔버를 철저히 청소하는 것이 중요합니다. 이전 연구에서 공간 주파수25에 circadian 리듬이 있음을 보여주었기 때문에 OMR 측정이 수행되는 시간도 고려해야합니다. 정오 전에 쥐를 실행하는 것은 초점 (레이첼 알렌의 실험실 - 개인 관찰)에 가장 적합한 것으로 보인다. 쥐가 너무 산만해지면 OMR의 바깥쪽을 부드럽게 두드리는 것이 도움이 될 수 있습니다.

테스트를 수행하는 속도도 결과에 영향을 줄 수 있습니다. 설치류가 자극에 관심을 잃으면 30 분 정도 후에 측정이 덜 정확해질 수 있습니다. 따라서 약 ≤20분 에서 측정을 할 때 보다 정확한 결과를 얻을 수 있습니다. 단일 평가판(SF 또는 CS의 경우)의 기간은 전문가의 경우 5~10분, 초보자는 30분입니다. 설치류가 움직임을 거의 보이지 않거나, 대부분의 시간을 그루밍하거나, 바 방향으로 바라지 않으면 피로할 수 있습니다. 설치류는 다른 날에 다시 실행될 수 있습니다. 또한 SF 및 CS 테스트는 특히 속도가 느려질 수 있는 최신 테스터의 경우 다른 날에 수행할 수 있습니다. 시험이 수행되는 빈도는 결과에영향을 미칠 수 있습니다 - 매주 또는 격주로 수행하면 동물이 시험에 익숙해지는 데 도움이되지만 매일 또는 격일로 수행하면 hyperacuity26이 발생할 수 있습니다. 우리는 하루에 하나 이상의 시험을 실행하지 않습니다, 우리는 종종 같은 날 또는 같은 좌석에서 모두 SF와 CS를 실행하지만. 쥐의 코호트를 실행하기위한 누적 일일 시간 (n = 10)은 전문가를위한 2 시간입니다.

OMR은 각 눈을 독립적으로 측정하여 각 눈에 대해 별도의 시각적 점수를 생성합니다. 녹내장의 모리슨과 미생물 모델과 시신경 호감 모델에서, 우리의 실험실은 손상되지 않은 눈27에 손상된 눈의 영향을 관찰하지 않았습니다. 한 쪽 눈을 향한 폭발과 함께 폭발 모델에서, 단면 눈은 손상을 보였지만, 이것은 또한 부분적인 폭발 효과 때문일 수 있습니다28. 제어 쥐에서, 시계 방향 또는 시계 반대 방향 사이의 결과에 차이가 없어야하지만, 일부 설치류는 편견을 가질 수있다; 따라서 OMR 시스템이 자동으로 번갈아 가며 교체하지 않는 경우 방향을 번갈아 하는 것이 가장 좋습니다29.

질병 모델에 따라, 시각 기능의 치료 그룹 차이는 사용되는 매개 변수에 따라 다를 수 있습니다. 예를 들어, 대비 감도를 테스트할 때 공간 주파수가 정상 공간 주파수 임계값보다 높은 수준으로 설정되고 해결하기 어려운 경우 그룹 간의 대비 감도의 차이가 작아집니다. 그러나, 공간 주파수가 일반적으로 쥐가 보기 쉬운 수준으로 설정된 경우, 그룹 간의 대비 감도의 차이는 더 커질 것이다30. 따라서 OMR을 수행하기 위한 매개 변수를 설정할 때 설치류의 학습 설계 및 정상적인 공간 주파수 임계값을 고려하는 것이 중요합니다.

Y-미로

동물이 무서워하는 경우 미로의 한 구석에 얼어 붙을 수 있습니다. 또한, 방 밖에서 시끄러운 소음이 발생하면 동물이 무서워서 미로에서 움직이지 않을 수 있습니다. 이러한 문제를 설명하기 위해 연구자들은 쥐를 먼저 방으로 데려가거나, 얼어붙은 동물을 선택 지점으로 옮기거나, 다른 날에 동물을 다시 달거나, 붉은 빛으로 동물을 달릴 수 있으며, 이는 일반적으로 어둠 속에서 활동적이기 때문에 덜 긴장하게 하는 것으로 생각됩니다(레이첼 알렌의 실험실-개인 의사소통). 또한 일주기 리듬으로 인해 하루 종일 활동 수준의 변화를 설명하기 위해 매일 Y-미로를 동시에 실행하는 것이 좋습니다. 우리는 일반적으로 정오 전에 쥐를 실행 (레이첼 알렌의 실험실 - 개인 관찰). 단일 시험 의 기간은 8 분 (10 분, 정리)입니다. 우리는 하루에 한 번 이상의 시험을 실행하지 않습니다. 추가 재판이 필요한 경우 다른 날에 재판이 수행됩니다. 쥐의 코호트를 실행하기위한 누적 일일 시간 (n = 10)은 2-3 h입니다. 공간 교대에 있는 나이 관련 감소는 나이의 9-12 달에 쥐에서 그리고 12 의 나이에 탐구적인 행동에서 관찰되었습니다28.

두 사람은 당뇨병 설치류의 탐색적 행동과 공간 인식 감소가 모두 감소하지만, 두 사람은 단단히 상관관계가 있는 것으로 보이며, 따라서 Y-미로 테스트 전에는 운동 활동을 독립적으로 평가하지 않는다.

기존/대체 방법에 대한 방법의 중요성

The OMR

광피 추적과 같은 시각적 기능 테스트의 다른 방법은 동물의 머리를 제자리에 고정하고 눈의 움직임을 추적하는 데 의존합니다. 억제되지 않은 광운동 반응(OMR) 테스트를 통해 설치류의 시야 기능의 세로, 비침습적 및 안정적인 측정이 가능합니다. 이 프로토콜에서, OMR을 각 눈에 대한 공간 주파수 및 대비 감도 임계값을 정량화하는 데 어떻게 사용될 수 있는지 설명되었다. 이 방법은 당뇨병과 같은 질병에서 초기 단계 신경 기능 장애를 검출하는 데 매우 유용 할 수 있습니다. 시각적 물 작업과 같은 다른 테스트는 공간 주파수31을 측정하는 데 사용할 수 있지만 수정 된 Y-미로에서 그라데이션을 향해 수영하는 설치류를 훈련하는 작업이 포함되기 때문에 작업이 시간이 많이 걸리고 많은 교육이 수반됩니다. 또한 OMR은 각 눈의 값을 독립적으로 측정하며, 이는 부상이 한쪽 눈을 향하고 다른 눈이 모순된 대조군(예: 많은 녹내장 모델)의 역할을 하는 모델에서 유용합니다. 추가적으로, OMR는 그밖 시각 평가 보다는 더 빨리 3-4 주 후 변경을 검출할 수 있는 민감한 평가입니다. 전기 생리학적 인 소는 행동 시각적 검사의 대안입니다. 전기 전도 (ERG)는 OMR보다 더 이용 가능하며 ERG wave32 의 상이한 구성 요소를 사용하여 정확한 세포 유형의 적자를 결정할 수 있습니다 (-파는 광수용체 세포 기능을 나타내고, b-파는 양극성 세포 기능을 나타냅니다). 한편, OMR은 경로를 따라 정확한 고장 지점을 밝히지 않고 시각 기능의 적자를 결정하는 데 사용할 수 있습니다. 그러나, OMR은 ERG 보다는 DR의 더 민감한 측정입니다, OMR 적자는 일반적으로 설치류에 있는 고혈당증 후 4-8 주 관찰된 2-4 주 후 고혈당증 및 ERG 적자 사이에서 전형적으로 관찰됩니다. 심한 당뇨병 백내장은 OMR에 영향을 미칠 수 있습니다. 그러나, 설치류에 있는 당뇨병 백내장은 마취의 밑에 나타나거나 악화되고, 따라서, 마취를 요구하는 ERG 및 광학 일관성 단층 촬영과 같은 시험은 깨어있는 동물에서 수행되는 OMR이 훨씬 더 자주 영향을 받는다는 것을.

Y-미로

Y-미로는 모리스 물 미로와 같은 공간 인식에 의존하지만 강한 음의 자극 (즉, 물)을 사용하여 동물이 작업을 수행하도록 동기를 부여하지 않습니다. 따라서 Y-미로는 동물에 대한 스트레스가 적고 수행하기도 쉽습니다. 그러나 Y-미로는 모리스 의 물 미로 나 반즈 미로만큼 민감하지 않을 수 있습니다. 모리스 의 물 미로와는 달리, Y-미로는 자동 행동이며 훈련이 필요하지 않습니다. 따라서 Y-미로 수행에 관련된 시간 부담은 훨씬 낮습니다.

방법의 결론 및 향후 응용 프로그램 또는 방향

The OMR

OMR은 헤드 움직임을 추적하여 설치류의 시각적 기능을 측정하는 데 유용합니다. 효과적인 방법이지만 프로토콜을 개선하기 위해 지속적으로 업데이트 및 추가가 있습니다. 일부 새로운 방법은 양수 지표로 헤드 트래킹과 결합 된 음의 OMR 지표로 머리를 일시 중지 설치류를 활용33. 이를 통해 시각적 기능34를 보다 빠르고 정확하게 측정할 수 있습니다. 이 프로세스가 수정된 또 다른 방법은 인공 마커없이 머리를 자동으로 추적하여 인간의 테스터35로 인해 발생할 수있는 불일치를 줄이는 시스템을 개발하는 것입니다. 2016년 현재 qOMR이라는 자동화또는 정량적 OMR 시스템이 잘 개발되어 상용화되었습니다. 상기 프로토콜에서, OMR은 당뇨병 쥐의 공간 주파수 및 대비 감도에 있는 적자를 검출할 수 있었습니다, 뿐만 아니라 처리를 가진 적자에 대하여 보호 (운동).

Y-미로

Y-미로는 탐사 행동과 공간 인식에 대한 정보를 공개하고 7 주에 당뇨병 설치류의 행동 적자를 감지하기 위해 여기에 사용되었다. 인지 기능을 관찰하는 다른 테스트 (즉, 모리스 물 미로, 반즈 미로, 새로운 개체 인식) 이러한 테스트는 이전에 인지 감소를 공개하거나 인식의 다른 측면에 대한 정보를 제공 할 수 있습니다. Y-미로에 대한 향후 방향에는 새로운 물체 나 음식 자극을 무기 중 하나에 배치하고 설치류36의 탐색 패턴을 관찰하는 것이 포함됩니다. 이 것의 변형은 Y-미로의 팔 중 하나를 차단, 설치류가 나머지 두 팔을 탐구 할 수 있도록, 다음 세 번째 팔에 대한 액세스를 다시 열고 설치류가 세 번째 소설 팔에 지출 하는 시간을 평가 포함. Y-미로와 관련하여 발생할 수 있는 또 다른 귀중한 개선 사항은 이동을 기록하기 위해 설치류의 자동 추적을 개발하고 있습니다. 이렇게 하면 설치류의 움직임을 수동으로 기록할 필요가 없으며 자발적 교대를 계산하는 것이 보다 정확하고 효율적입니다.

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Disclosures

저자는 공개 할 것이 없습니다.

Acknowledgments

이 작품은 재향 군인 사무 재활 R&D 서비스 경력 개발 상 (CDA-1, RX002111)에 의해 지원되었다; CDA-2; RX002928) RSA 및 (CDA-2, RX002342) AJF 및 국립 보건 원 (NIH-NICHD F31 HD097918 에 DACT 및 NIH-NIEHS T32 ES012870 DACT) 및 NEI 코어 그랜트 P30EY00000600.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
OptoMotry HD CerebralMechanics Inc. OMR apparatus & software
Timer Thomas Scientific 810029AR
Y-Maze apparatus San Diego Instruments 7001-043 Available specifically for rats

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References

  1. IDF. International Diabetes Federation Diabetes Atlas, 9th edn. , Available from: https://diabetesatlas.org/upload/resources/material/20200302_133351_IDFATLAfinal-web.pdf (2019).
  2. Wang, W., Lo, A. C. Y. Diabetic retinopathy: pathophysiology and treatments. International Journal of Molecular Sciences. 19 (6), (2018).
  3. Akpek, E. K., Smith, R. A. Overview of age-related ocular conditions. The American Journal of Managed Care. 19 (5), Suppl 67-75 (2013).
  4. Urano, F. Wolfram syndrome: diagnosis, management, and treatment. Current Diabetes Reports. 16 (1), 6 (2016).
  5. Adeva-Andany, M. M., Funcasta-Calderón, R., Fernández-Fernández, C., Ameneiros-Rodríguez, E., Domínguez-Montero, A. Subclinical vascular disease in patients with diabetes is associated with insulin resistance. Diabetes & Metabolic Syndrome: Clinical Research & Reviews. 13 (3), 2198-2206 (2019).
  6. Chin, J. A., Sumpio, B. E. Diabetes mellitus and peripheral vascular disease: diagnosis and management. Clinics in Podiatric Medicine and Surgery. 31 (1), 11-26 (2014).
  7. Barber, A. J., Gardner, T. W., Abcouwer, S. F. The significance of vascular and neural apoptosis to the pathology of diabetic retinopathy. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 52 (2), 1156-1163 (2011).
  8. Pardue, M. T., Allen, R. S. Neuroprotective strategies for retinal disease. Progress in Retinal and Eye Research. 65, 50-76 (2018).
  9. Aung, M. H., Kim, M. K., Olson, D. E., Thule, P. M., Pardue, M. T. Early visual deficits in streptozotocin-induced diabetic long evans rats. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 54 (2), 1370-1377 (2013).
  10. Antonetti, D. A., et al. Diabetic retinopathy: seeing beyond glucose-induced microvascular disease. Diabetes. 55 (9), 2401-2411 (2006).
  11. Logroscino, G., Kang, J. H., Grodstein, F. Prospective study of type 2 diabetes and cognitive decline in women aged 70-81 years. BMJ. 328 (7439), 548 (2004).
  12. London, A., Benhar, I., Schwartz, M. The retina as a window to the brain-from eye research to CNS disorders. Nature Reviews Neurology. 9 (1), 44-53 (2013).
  13. Archibald, N. K., Clarke, M. P., Mosimann, U. P., Burn, D. J. The retina in Parkinson's disease. Brain. 132 (5), 1128-1145 (2009).
  14. Sakai, R. E., Feller, D. J., Galetta, K. M., Galetta, S. L., Balcer, L. J. Vision in multiple sclerosis: the story, structure-function correlations, and models for neuroprotection. Journal of Neuroophthalmology. 31 (4), 362-373 (2011).
  15. Wong, T. Y., et al. Retinal microvascular abnormalities and incident stroke: the Atherosclerosis Risk in Communities Study. The Lancet. 358 (9288), 1134-1140 (2001).
  16. Marquié, M., et al. Association between retinal thickness and β-amyloid brain accumulation in individuals with subjective cognitive decline: Fundació ACE Healthy Brain Initiative. Alzheimer's Research & Therapy. 12 (1), 37 (2020).
  17. Thomas, B. B., Seiler, M. J., Sadda, S. R., Coffey, P. J., Aramant, R. B. Optokinetic test to evaluate visual acuity of each eye independently. Journal of Neuroscience Methods. 138 (1-2), 7-13 (2004).
  18. Prusky, G. T., Alam, N. M., Beekman, S., Douglas, R. M. Rapid quantification of adult and developing mouse spatial vision using a virtual optomotor system. Investigative Ophthalmology & Vision Science. 45 (12), 4611-4616 (2004).
  19. Maurice, T., et al. Behavioral evidence for a modulating role of σ ligands in memory processes. I. Attenuation of dizocilpine (MK-801)-induced amnesia. Brain Research. 647 (1), 44-56 (1994).
  20. Douglas, R. M., et al. Independent visual threshold measurements in the two eyes of freely moving rats and mice using a virtual-reality optokinetic system. Visual Neuroscience. 22 (5), 677-684 (2005).
  21. Feola, A. J., et al. Menopause exacerbates visual dysfunction in experimental glaucoma. Experimental Eye Research. 186, 107706 (2019).
  22. Allen, R. S., et al. TrkB signalling pathway mediates the protective effects of exercise in the diabetic rat retina. European Journal of Neuroscience. 47 (10), 1254-1265 (2018).
  23. Allen, R. S., et al. Retinal deficits precede cognitive and motor deficits in a rat model of type II diabetes. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 60 (1), 123-133 (2019).
  24. Prusky, G. T., Harker, K. T., Douglas, R. M., Whishaw, I. Q. Variation in visual acuity within pigmented, and between pigmented and albino rat strains. Behavioural Brain Research. 136 (2), 339-348 (2002).
  25. Hwang, C. K., et al. Circadian rhythm of contrast sensitivity is regulated by a dopamine-neuronal PAS-domain protein 2-adenylyl cyclase 1 signaling pathway in retinal ganglion cells. Journal of Neuroscience. 33 (38), 14989-14997 (2013).
  26. Mui, A. M., et al. Daily visual stimulation in the critical period enhances multiple aspects of vision through BDNF-mediated pathways in the mouse retina. PLoS One. 13 (2), 0192435 (2018).
  27. Feola, A. J., et al. Menopause exacerbates visual dysfunction in experimental glaucoma. Experimental Eye Research. 186, 107706 (2019).
  28. Allen, R. S., et al. Long-term functional and structural consequences of primary blast overpressure to the eye. Journal of Neurotrauma. 35 (17), 2104-2116 (2018).
  29. Maaswinkel, H., Li, L. Spatio-temporal frequency characteristics of the optomotor response in zebrafish. Vision Research. 43 (1), 21-30 (2003).
  30. Benkner, B., Mutter, M., Ecke, G., Münch, T. A. Characterizing visual performance in mice: an objective and automated system based on the optokinetic reflex. Behavioral Neuroscience. 127 (5), 788-796 (2013).
  31. Lehmann, K., Schmidt, K. F., Löwel, S. Vision and visual plasticity in ageing mice. Restorative Neurology and Neuroscience. 30, 161-178 (2012).
  32. Leinonen, H., Tanila, H. Vision in laboratory rodents-tools to measure it and implications for behavioral research. Behavioral Brain Research. 352, 172-182 (2018).
  33. Spielmann, M., Schröger, E., Kotz, S. A., Pechmann, T., Bendixen, A. Using a staircase procedure for the objective measurement of auditory stream integration and segregation thresholds. Frontiers in Psychology. 4, 534 (2013).
  34. Shi, C., et al. Optimization of optomotor response-based visual function assessment in mice. Scientific Reports. 8 (1), 9708 (2018).
  35. You, M., Yamane, T., Tomita, H., Sugano, E., Akashi, T. A novel rat head gaze determination system based on optomotor responses. PLoS One. 12 (4), 0176633 (2017).
  36. Whyte, A. J., et al. Reward-related expectations trigger dendritic spine plasticity in the mouse ventrolateral orbitofrontal cortex. The Journal of Neuroscience. 39 (23), 4595-4605 (2019).

Tags

행동 문제 164 당뇨병 망막병증 망막 Y-미로 광운동 반응 탐사 행동 공간 주파수 대비 감도 공간 기억 자발적인 교대

Erratum

Formal Correction: Erratum: Behavioral Assessment of Visual Function via Optomotor Response and Cognitive Function via Y-Maze in Diabetic Rats
Posted by JoVE Editors on 01/05/2022. Citeable Link.

An erratum was issued for: Behavioral Assessment of Visual Function via Optomotor Response and Cognitive Function via Y-Maze in Diabetic Rats. The author list was updated.

The author list was updated from:

Kaavya Gudapati*1,2, Anayesha Singh*1,3, Danielle Clarkson-Townsend1,4, Andrew J. Feola1,2, Rachael S. Allen1,2
1Center for Visual and Neurocognitive Rehabilitation, Atlanta VA Medical Center,
2Department of Biomedical Engineering, Georgia Institute of Technology,
3Department of Neuroscience, Emory University,
4Gangarosa Department of Environmental Health, Emory University
* These authors contributed equally

to:

Kaavya Gudapati*1,2, Anayesha Singh*1,3, Danielle Clarkson-Townsend1,4, Stephen Q. Phillips1, Amber Douglass1, Andrew J. Feola1,2, Rachael S. Allen1,2
1Center for Visual and Neurocognitive Rehabilitation, Atlanta VA Medical Center,
2Department of Biomedical Engineering, Georgia Institute of Technology,
3Department of Neuroscience, Emory University,
4Gangarosa Department of Environmental Health, Emory University
* These authors contributed equally

당뇨병 쥐의 Y-미로를 통한 광운동 반응 및 인지 기능을 통한 시각 기능의 행동 평가
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Gudapati, K., Singh, A.,… More

Gudapati, K., Singh, A., Clarkson-Townsend, D., Phillips, S. Q., Douglass, A., Feola, A. J., Allen, R. S. Behavioral Assessment of Visual Function via Optomotor Response and Cognitive Function via Y-Maze in Diabetic Rats. J. Vis. Exp. (164), e61806, doi:10.3791/61806 (2020).

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