Method Article

Flujo de trabajo de proteómica cuantitativa sin etiquetas para interacciones host-patógenos impulsadas por el descubrimiento

DOI:

10.3791/61881

October 20th, 2020

In This Article

Summary

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Aquí, presentamos un protocolo para perfilar la interacción entre el huésped y el patógeno durante la infección por proteómica basada en espectrometría de masas. Este protocolo utiliza la cuantificación libre de etiquetas para medir los cambios en la abundancia de proteínas tanto del huésped (por ejemplo, macrófagos) como del patógeno (por ejemplo, Cryptococcus neoformans)en un solo experimento.

Abstract

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Los logros tecnológicos de la proteómica cuantitativa basada en espectrometría de masas (EM) abren muchas vías no descubiertas para analizar el proteoma global de un organismo en condiciones variables. Esta poderosa estrategia aplicada a las interacciones de patógenos microbianos con el huésped deseado caracteriza ampliamente ambas perspectivas hacia la infección. En este documento, el flujo de trabajo describe la cuantificación libre de etiquetas (LFQ) del infectoma de Cryptococcus neoformans, un patógeno intracelular facultativo facultativo fúngico que es el agente causal de la enfermedad mortal cryptococcosis, en presencia de células de macrófago inmortalizadas. El protocolo detalla las técnicas adecuadas de preparación de proteínas para células patógenas y mamíferos dentro de un solo experimento, lo que resulta en la presentación adecuada de péptidos para el análisis de cromatografía líquida (LC)-EM/EM. La naturaleza genérica de alto rendimiento de LFQ permite un amplio rango dinámico de identificación y cuantificación de proteínas, así como transferibilidad a cualquier entorno de infección de patógeno huésped, manteniendo una sensibilidad extrema. El método está optimizado para catalogar perfiles extensos e imparciales de abundancia de proteínas de un patógeno dentro de condiciones que imitan infecciones. Específicamente, el método demostrado aquí proporciona información esencial sobre la patogénesis C. neoformans, como la producción de proteínas necesaria para la virulencia e identifica proteínas huésped críticas que responden a la invasión microbiana.

Introduction

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La prevalencia de infecciones fúngicas invasivas está aumentando enormemente y está correlacionada con tasas de mortalidad inaceptablemente altas, más comúnmente notificadas en individuos con predisposiciones inmunodeficientes1. Cryptococcus neoformans es un famoso patógeno fúngico oportunista capaz de sobrevivir intracelularmente dentro de las células de macrófago huésped. La intervención antifúngica inadecuada da como resultado la difusión fúngica y manifestaciones potencialmente mortales de meningitis criptocócica y meningoencefalitis2,3. El aumento global del estatus inmuno....

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Protocol

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Una línea inmortalizada de macrófagos derivados de ratones BALB/c fueron utilizados para el siguiente protocolo aprobado por el Protocolo de Utilización Animal 4193 de la Universidad de Guelph. En particular, otras cepas de ratones u otras fuentes de células inmortalizadas se pueden aplicar al protocolo descrito con pruebas suficientes para optimizar los parámetros detallados. El siguiente protocolo navegará por los pasos que comienzan con un vial congelado de células de macrófago. Las células se almacenan en 10% FBS (suero bovino fetal), 1% L-glutamina y 5% Pen/Estreptomicina (Penicillin-Streptomicina) mezcla a DMEM (Dulbecco's Modified Eagle Medium) y 20% DMSO (sulf....

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Results

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El protocolo descrito anteriormente permite la identificación y cuantificación de proteínas derivadas tanto del patógeno fúngico, C. neoformans,como del huésped, células de macrófago, en un solo experimento. Tras el co-cultivo, las células se recogen y procesan juntas y se separan bioinformáticamente en función de perfiles péptidos específicos de cada especie. Este es un enfoque poderoso para definir la interacción de la relación huésped-patógeno durante la infección. El número de proteínas identificadas a parti.......

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Discussion

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Los pasos críticos en el protocolo incluyen la preparación de células de macrófago y la recolección de muestras de co-cultivo para el procesamiento de proteínas con una interrupción mínima de las células. Es importante realizar pasos de lavado, inoculación y eliminación de células de macrófago adherentes de forma suave y cuidadosa para evitar la lisis innecesaria de las células antes de la recolección. Establecer el MOI correcto para el experimento también es crítico, ya que la inoculación con un MOI excesivamente alto p.......

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Disclosures

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Los autores no declaran conflictos de intereses.

Acknowledgements

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Los autores agradecen al Dr. Jonathan Krieger de Bioinformatics Solutions Inc. por operar el espectrómetro de masas para experimentos representativos, así como a los miembros del grupo Geddes-McAlister por su ayuda con la configuración experimental y la retroalimentación manuscrita. Los autores reconocen el apoyo a la financiación, en parte, de la Banting Research Foundation – The Jarislowsky Fellowship Discovery Award, New Frontiers Research Fund – Exploration (NFRFE-2019-00425), y la Canadian Foundation for Innovation (JELF 38798) para J.G.M., así como NSERC Canada Graduate Scholarship – Masters and Ontario Graduate Scholarship for B.B., y Queen Elizabeth II Graduat....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
100 mM Tris-HCl, pH 8.5Fisher ScientificBP152-1mantener a 4° C
60 x 15 mm Plato, Nunclon DeltaThermoFisher Scientific174888
placa de cultivo celular de 6 pocillosThermoFisher Scientific140675
Acetonitrilo, grado MSPierceTS-51101
Ácido AcéticoSigma Aldrich1099510001
AcetonaSigma Aldrich34850-1L
Amonio bicarbonato (ABC)ThermoFisher ScientificA643-500Prepare una solución ABC de 50 mM, estable a temperatura ambiente durante un máximo de un mes.
Bel-Art™ Sistema de recolección de aspirador de vacío HiFlowFisher Scientific13-717-300No es esencial, las pipetas serológicas se pueden utilizar para eliminar medios.
Resina C183M Empore3M2215
Raspadores de célulasVWR10062-906No es esencial, se pueden utilizar otros métodos para liberar células de macrófagos.
Concentrador centrífugo de vacíoEppendorf07-748-15
Unidad de filtración completaVWR10040-436
Tubos cónicos de halcón (15 mL)Fisher Scientific05-539-12
Countess II Contador de células automatizadoThermoFisher ScientificAMQAX1000No es esencial, el hemocitómetro puede utilizarse como alternativa.
CytoTox 96 Ensayo de citotoxicidad no radiactivaPromegaG1780
Ditiotritol (DTT)ThermoFisher ScientificR0861Prepare una solución madre a granel de 1 M de DTT, congelada rápidamente y almacenada a -20 °C; C hasta su uso. Deseche después de cada uso (no congele y descongele repetidamente).
DMEM, glucosa alta, Suplemento GlutaMAXThermoFisher Scientific10566016
Suero Fetal Bovino (FBS)ThermoFisher Scientific12483020Inactivar el calor incubando a 60 grados; C durante 30 minutos. Preparar 50 ml de alícuotas y congelar rápidamente. Descongelación antes de la preparación del medio
HemocitómetroVWR15170-208
HEPESSigma AldrichH3375Preparación de 40 mM HEPES/8 M de urea en solución madre a granel, ultracongelada, almacenar a -20 grados; C hasta su uso. Deseche después de cada uso (no congele y descongele repetidamente).
Sistema de cromatografía líquida de alta resoluciónThermoFisher ScientificLC140La longitud del gradiente se basa en la complejidad de la muestra, se recomienda un gradiente de 120 minutos para muestras de infeccio.
Espectrómetro de masas de alta resoluciónThermoFisher Scientific726042
Yodoacetamida (IAA)Sigma AldrichI6125Prepare una solución de stock a granel de 0,55 M, congelada rápidamente, almacene a -20 grados; C hasta su uso. Deseche después de cada uso (no congele y descongele repetidamente).
L-glutaminaThermoFisher Scientific 25030081Puede ser alícuota y congelar para su almacenamiento. Descongele antes de la preparación de los medios.
Tubos de microcentrífuga LoBindEppendorf13-698-794
MaxQuanthttps://maxquant.org/MaxQuant es una plataforma pública que ofrece tutoriales, como la Escuela de verano MaxQuant, que describe los pasos del análisis computacional de grandes conjuntos de datos MS
MicrocentrífugaEppendorf13864457
Penicilina : Estreptomicina 10k/10kVWRCA12001-692Puede ser alícuota y congelado para su almacenamiento. Descongele antes de la preparación de los medios.
Columnas de separación de péptidosThermoFisher ScientificES803
Perseus Softwarehttp://maxquant.net/perseus/
solución salina tamponada con fosfatoVWRCA12001-676No se requiere Puchase. También se puede preparar PBS, pero se debe realizar una filtración estéril antes de su uso.
Ensayo de proteínas Pierce BCAThermoFisher Scientific  23225
Pipeta, serológica desechable (10 mL)Fisher Scientific13-678-11E
pipeta, serológica desechable (25 mL) BasixFisher Scientific14955235
Sonciador de sondaThermoFisher Scientific100-132-894
Comprimido cóctel inhibidor de proteasaRoche 4693159001
Dodecil sulfato de sodioThermoFisher Scientific28364 20% (c/v)
Espectrofotómetro (Nanodrop)ThermoFisher ScientificND-2000
STAGE centrífuga de vuelcoSonationSTC-V2
Agitador térmicoVWRNO89232-908
Ácido trifluoroacéticoThermoFisher Scientific85183
Mezcla de tripsina/proteasa Lys-C, Perforación de grado MSA40007Mantener a -20 °C.
Baño ultrasónicoBransonicA89375-450Almacenado en cámara frigorífica (4C)
UreaSigma AldrichU1250-1KGPrepare 40 mM HEPES/8 M Urea en solución de stock a granel, congelada rápidamente, almacene a -20 & grados; C hasta su uso. Deseche después de cada uso (no congele y descongele repetidamente).
Extracto de levadura caldo de peptona dextrosaBD DifcoBM20

References

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Bongomin, F., Gago, S., Oladele, R., Denning, D. Global and Multi-National Prevalence of Fungal Diseases-Estimate Precision. Journal of Fungi. , (2017).
  2. Tugume, L., et al. HIV-Associated cryptococcal meningitis occurring at relatively higher CD4 cou....

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