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Imágenes y análisis de fluorescencia resueltos en el tiempo de la invasión de células cancerosas en el modelo esferoide 3D

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DOI:

10.3791/61902

30 de enero de 2021

En este artículo

Resumen

Aquí se presenta un protocolo para la fabricación de un dispositivo de imágenes esferoides. Este dispositivo permite imágenes dinámicas o longitudinales de fluorescencia de esferoides de células cancerosas. El protocolo también ofrece un procedimiento simple de procesamiento de imágenes para el análisis de la invasión de células cancerosas.

Resumen

La invasión de células cancerosas del tumor primario a los tejidos sanos adyacentes es un paso temprano en la metástasis. Las células cancerosas invasivas plantean un gran desafío clínico porque no existe ningún método eficiente para su eliminación una vez que su diseminación está en marcha. Una mejor comprensión de los mecanismos que regulan la invasión de células cancerosas puede conducir al desarrollo de nuevas terapias potentes. Debido a su parecido fisiológico con los tumores, esferoides incrustados en colágeno he sido ampliamente utilizado por los investigadores para estudiar los mecanismos que rigen la invasión de células cancerosas en la matriz extracelular (ECM). Sin embargo, este ensayo está limitado por 1) la falta de control sobre la incrustación de esferoides en el ECM; (2) alto costo de los platos inferiores de colágeno I y vidrio, (3) etiquetado inmunofluorescente poco fiable, debido a la penetración ineficiente de anticuerpos y colorantes fluorescentes y (4) procesamiento de imágenes que consume mucho tiempo y cuantificación de los datos. Para hacer frente a estos desafíos, optimizamos el protocolo esferoide tridimensional (3D) para crear imágenes de células cancerosas etiquetadas fluorescentemente incrustadas en el colágeno I, ya sea usando videos de lapso de tiempo o imágenes longitudinales, y analizamos la invasión de células cancerosas. En primer lugar, describimos la fabricación de un dispositivo de imágenes esferoides (SID) para incrustar esferoides de forma fiable y en un volumen mínimo de colágeno I, reduciendo el costo del ensayo. A continuación, delineamos los pasos para el etiquetado robusto de fluorescencia de esferoides vivos y fijos. Por último, ofrecemos una macro de Fiji fácil de usar para el procesamiento de imágenes y la cuantificación de datos. En conjunto, esta metodología simple proporciona una plataforma confiable y asequible para monitorear la invasión de células cancerosas en el colágeno I. Además, este protocolo se puede modificar fácilmente para adaptarse a las necesidades de los usuarios.

Introducción

Durante la progresión del cáncer, las células cancerosas pueden adquirir un fenotipo motil e invasivo, lo que les permite escapar de la masa tumoral e invadir los tejidos circundantes1. Con el tiempo, estas células cancerosas invasivas pueden alcanzar y crecer dentro de órganos secundarios, un proceso llamado metástasis del cáncer1. La metástasis causa más del 90% de las muertes relacionadas con el cáncer2. Una de las razones de esto es que, si bien los tumores localizados son clínicamente manejables, no existen métodos eficientes para la eliminación de las células cancerosas invasivas una vez que....

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Protocolo

1. Fabricación de un dispositivo de imágenes esferoides (SID) para optimizar la incrustación esferoide (duración 1 día)

  1. Cree el espaciador utilizando una impresora 3D(Figura 1A, B y Archivo Complementario 1).
  2. Pesar una relación de 10:1 (wt/wt) de polímero base: reticulador cruzado en una taza de plástico [por ejemplo, 20 g de polímero base etilbenzene y 2 g de reticulador de resina de silicona para crear polidimetillsiloxano (PDMS)].
  3. Mezcle a fondo la solución PDMS en la taza de plástico con una pipeta desechable.
  4. Coloque la taza de plástico en una cámara de vacío para eliminar las ....

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Resultados

Debido a su biocompatibilidad, PDMS es ampliamente utilizado para la microfabricación de pozos de confinamiento, sellos y moldes, que revolucionaron los dispositivos micropatternantes y microfluídicos. En el método descrito aquí, se utiliza para crear SIDs, pozos personalizables que optimizan el procedimiento de incrustación e imágenes esferoides. La Figura 1 ilustra los componentes principales utilizados en la fabricación de los SID. Para fundar el molde PDMS, un espaciador de 1 mm de espes.......

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Discusión

El espaciador impreso en 3D fue diseñado para crear láminas de 1 mm de grosor de PDMS que luego se pueden utilizar para crear fácilmente varias formas de PDMS, según lo requieran las aplicaciones experimentales. Debido a la simplicidad de su fabricación y la libertad de alterar el diseño, este método de fundición PDMS fue elegido para el diseño inicial del SID. Si se requiere un alto volumen de SIDs, la producción se puede hacer más eficiente mediante la creación de un molde impreso en 3D, que ya contiene discos PDMS con.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Nos gustaría dar las gracias a los miembros de La Bioingeniería del Templo por sus valiosos debates. Agradecemos a David Ambrose en el núcleo de citometría de flujo (Lewis Katz School of Medicine) por su asistencia con la clasificación celular y a Tony Boehm del CENTRO IDEAS (College of Engineering, Temple University) por su ayuda con la impresión 3D. También agradecemos nuestros recursos de financiación: American Cancer Society Research Scholar Grant 134415-RSG-20-034-01-CSM, Conquer Cancer Now / Young Investigator Award, National Institutes of Health, R00 CA172360 y R01 CA230777, todo a BG.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
1 N NaOHHoneywell Fluka60-014-44
10X Dulbecco' solución salina tamponada con fosfato (PBS)GibcoSH30028.LS
16% paraformaldehído (PFA)Alfa Aesar43368-9M
1X Dulbecco' Solución salina tamponada con fosfato (PBS)Gibco20012027
4',6-diamidino-2-fenilindol (DAPI)InvitrogenD1306
placa de 48 pocillosFalconT1048
Alexa Fluor 647 faloidinaLife TechnologiesA20006
Anti cortactinaanticuerpo Abcamab33333 1a 200 dilución
Anti Anticuerpo E-cadherinaInvitrogen13-1900Dilución de 1 a 100
Solución de atelocolágeno I bovino (Nutragen)Advanced Biomatrix501050ML
Albúmina sérica bovina (BSA)Sigma AldrichA4503-50G
CellTracker Rojo CMTPX ColoranteInvitrogenC34552
Tubos cónicosFalcon352095
CubreobjetosFisherBrand12-548-5E
Contenedor desechableGrapasVasos de plástico
Pipeta de transferencia desechableThermo Scientific202
DMEMFisher Scientific11965118
Cinta de doble caraScotch
EthanolSigma AldrichE7023-500ML
Suero fetal bovino (FBS)Bio-TechneS11550
Fluoromount-GeBioscience00-4958-02
GlutaraldehídoSigma AldrichG5882-100mL
Hoescht tinción nuclearThermo Fischer62249
IsopropanolThermo FischerS25371A
Plato MatTek (plato con fondo de vidrio)MatTek CorporationP35G-1.5-14-C
MetilcelulosaSigma AldrichM6385-100G
MilliQ agua
Solución de penicilina/estreptomicinaThermo Fischer15140122
Placa de PetriCorning353003
Puntas de pipetaFisherbrand02-707
PipetasGilsonF167300
Poly-L-LisinaSigmaP8920
Anticuerpos primarios, específicos
Rat Tail Collagen ICorning47747-218
Razor BladePersonna74-0001
Anticuerpos secundarios, específicos
del usuario Diapositivas GlobeScientific1354W-72
Sylgard 184 SiliconaDow Corning4019862
Cinta Scotch
Triton X100Sigma Aldrich10789704001
Tween 20Sigma Aldrich655204-100ML
del usuario

Referencias

  1. Hanahan, D., Weinberg, R. A. Hallmarks of cancer: The next generation. Cell. 144, 646-674 (2011).
  2. Noone, A., et al. SEER Cancer statistics review 1975-2015, based on November 2017 SEER data submission. , (2019).
  3. Yamada, K. M., Cukierman, E.

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Etiquetas

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