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Artículo de método

Condensados de proteínas inducidas por dimerización química en telómeros

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DOI:

10.3791/62173

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12 de abril de 2021

En este artículo

Resumen

Este protocolo ilustra un sistema de dimerización de proteínas inducido químicamente para crear condensados en la cromatina.  Se demuestra la formación del cuerpo nuclear de la leucemia promielocítica (LMP) en telómeros con dimerizadores químicos. El crecimiento, la disolución, la localización y la composición de las gotas se controlan con imágenes de células vivas, inmunofluorescencia (IF) e hibridación fluorescente in situ (FISH).

Resumen

Los condensados asociados a la cromatina están implicados en muchos procesos nucleares, pero los mecanismos subyacentes siguen siendo difíciles de alcanzar. Este protocolo describe un sistema de dimerización de proteínas inducido químicamente para crear condensados en los telómeros. El dimerizador químico consiste en dos ligandos unidos que pueden unirse a una proteína: Halo ligando a Halo-enzima y trimetoprima (TMP) a E. coli dihidrofolato reductasa (eDHFR), respectivamente. La fusión de la enzima Halo a una proteína telómero ancla los dimerizantes a los telómeros a través de la unión covalente ligando-enzima de Halo. La unión de TMP a eDHFR recluta proteínas de separación de fase fusionadas con eDHFR a telómeros e induce la formación de condensado. Debido a que la interacción TMP-eDHFR no es covalente, la condensación se puede revertir mediante el uso de exceso de TMP libre para competir con el dimerizador para la unión de eDHFR. Se muestra un ejemplo de inducción de la formación de cuerpos nucleares de leucemia promielocítica (LMP) en los telómeros y determinación del crecimiento, disolución, localización y composición del condensado. Este método se puede adaptar fácilmente para inducir condensados en otras ubicaciones genómicas fusionando Halo a una proteína que se une directamente a la cromatina local o a dCas9 que está dirigida al locus genómico con un ARN guía. Al ofrecer la resolución temporal requerida para la obtención de imágenes en vivo de una sola célula mientras se mantiene la separación de fases en una población de células para ensayos bioquímicos, este método es adecuado para sondear tanto la formación como la función de los condensados asociados a la cromatina.

Introducción

Muchas proteínas y ácidos nucleicos se someten a separación de fase líquido-líquido (LLPS) y se autoensamblan en condensados biomoleculares para organizar la bioquímica en las células1,2. LLPS de proteínas de unión a cromatina conduce a la formación de condensados que están asociados con loci genómicos específicos y están implicados en varias funciones locales de cromatina3. Por ejemplo, LLPS de la proteína HP1 subyace a la formación de dominios de heterocromatina para organizar el genoma4,5,LLPS de factores de transcripción for....

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Protocolo

1. Producción de líneas celulares transitorias

  1. Cultite células aceptoras U2OS en fundas de vidrio de 22 x 22 mm (para imágenes vivas) o cubiertas circulares de 12 mm de diámetro (para IF o FISH) recubiertas con poli-D-lisina en placa de 6 pozos con medio de crecimiento (10% de suero bovino fetal y solución de penicilina-estreptomicina al 1% en DMEM) hasta que alcancen una confluencia del 60-70%.
  2. Reemplace el medio de crecimiento con 1 ml de medio de transfección (medio de crecimiento sin solución de penicilina-estreptomicina) antes de la transfección.
  3. Para cada pozo de transfección, agregue 4 μL de reactivo de transfecció....

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Resultados

En la Figura 2se muestran imágenes representativas de localización telomérica de SUMO identificadas por ADN telómero FISH y PROTEÍNA SUMO IF. Las células con reclutamiento de SIM enriquecieron SUMO1 y SUMO 2/3 en telómeros en comparación con las células con reclutamiento de mutantes SIM. Esto indica que el enriquecimiento de SUMO inducido por la dimerización de SIM en telómeros depende de las interacciones SUMO-SIM.

Una película representativa de lapso de tiempo d.......

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Discusión

Este protocolo demostró la formación y disolución de condensados en telómeros con un sistema de dimerización química. La cinética de la separación de fases y la agrupación de telómeros inducida por la fusión de gotas se monitorean con imágenes en vivo. La localización y composición del condensado se determinan con ADN FISH y proteína IF.

Hay dos pasos críticos en este protocolo. El primero es determinar la concentración de proteínas y dimerizantes. El éxito en la inducción de la separación de .......

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Este trabajo fue apoyado por los Institutos Nacionales de Salud de los Estados Unidos (1K22CA23763201 a H.Z., GM118510 a D.M.C.) y la fundación Charles E. Kaufman a H.Z. Los autores desean agradecer a Jason Tones por revisar el manuscrito.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
0,25 % de tripsina, 0,1 % de EDTA en HBSS sin bicarbonato de calcio, magnesio y sodioCorningMT25053CI
16 % de formaldehído (p/v), sin metanolThermo Scientific28906Prepare el 1 % en 1x PBS
Placa de cultivo de 6 pocillosVWR10861-554
Papel de aluminioFisher Scientific01-213-101
Anticuerpo anti-mCherryAbcamAb183628
Anticuerpo anti-PMLSanta Cruzsc966
Anticuerpo anti-SUMO1AbcamAb32058
Anticuerpo anti-SUMO2/3CitoesqueletoAsm23
Reactivo bloqueanteRoche11096176001
Albúmina sérica bovina (BSA)Fisher ScientificBP9706100
Tubo BTX micro 1.5ML VWR89511-258
Cubreobjetos circularesThermo Scientific3350
 NikonMQS31000
DAPIFisher ScientificD1306
Dimethyl Sulphoxide Sigma-Aldrich472301
DMEM con L-Glutamina, 4,5 g/L de glucosa y piruvato de sodioCorningMT10017CV
EMCCD CameraiXon Life 897
Etanol Fisher Scientific4355221
Suero Fetal Bovino, Calificado, Regiones Aprobadas por el USDAGibco
Formamida, MilliporeSigma Desionizado46-101-00ML
Cabra anti-Ratón IgG (H + L), Anticuerpo secundario recombinante, Alexa Fluor 647InvitrogenA28181
IgG anti-conejo para cabras (H + L), anticuerpo secundario recombinante, Alexa Fluor 647InvitrogenA32733
Pinzas/pinzas de punta ultrafina cónicas rectas de alta precisiónFisher Scientific12-000-122
Módulo de fusión láser NikonNIIMHF47180
Leibovitz's L-15 MediumGibco21083027
Lipofectamine 2000 Reactivo de transfecciónInvitrogen11668027
Software de trazado de figuras, MATLABThe MathWorks
Microscope Slide BoxFisher Scientific34487
Esmalte de uñasFisher Scientific50-949-071
Software de imagen, NIS-Elements Nikon
Opti-MEM Medios de suero reducidosGibco 51985091
ParafilmBemis13-374-12
PBS 10X, pH 7.4Fisher Scientific70-011-044
Solución de penicilina-estreptomicina,100XGibco15140122
piezo Z-Drive Physik Instrumente (PI)91985
Puntas de pipetaVWR10017
Portaobjetos de microscopio de esquina recortada lisos y esmeriladosFisher Scientific22-037-246
Solución de poli-D-lisinaSigma-AldrichA-003-E
Azida sódicaFisher ScientificBP922I-500
Disco giratorioYokogawaCSU-X1
Cubreobjetos cuadradosThermo Scientific3305
TBS 10x soluciónFisher ScientificBP2471500
TelC-Alexa488PNA BioF1004
TMPSintetizado por el laboratorioDisponible bajo pedido
TNHSintetizado por el laboratorio Chenoweth Disponiblebajo pedido
Tris SoluciónFisher Scientific92-901-00ML
Triton X-100 10% SoluciónMilliporeSigma64-846-350MLPrepare 0.5% en 1x línea celular PBS
U2OsDel laboratorio E.V. Makayev (Universidad Tecnológica de Nanyang, Singapur)HTB-96
VECTASHIELD Antifade Mounting MediumVector LaboratoriesNC9524612
Microscopio confocal A4766801 Chenoweth

Referencias

  1. Shin, Y., Brangwynne, C. P. Liquid phase condensation in cell physiology and disease. Science. 357 (6357), (2017).
  2. Banani, S. F., Lee, H. O., Hyman, A. A., Rosen, M. K. Biomolecular condensates: organizers of cellular biochemistry. Nature Reviews Molecular Cell Biology<....

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Etiquetas

Agrupamiento de telómerosseparación de fasescondensados de cromatinaimagen de células vivasFISH por inmunofluorescenciainteracción SUMO-SIMetiquetado de proximidadcuerpos nucleares PML