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Research Article
Blaine Berrington1,2, Katelyn Alley1,4, Kristopher Bosch1,3, Kelli Thomas1,2, Katie Hailer4, Dario Prieto-Centurion1,5
1Applied Surface Science Laboratory,Montana Technological University, 2Department of Metallurgy and Materials Science,Montana Technological University, 3Department of Environmental Engineering,Montana Technological University, 4Department of Chemistry and Geochemistry,Montana Technological University, 5Department of Mechanical Engineering,Montana Technological University
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Erratum Notice
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Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
Este estudio describe un método para expandir la quitina en una espuma mediante técnicas químicas que no requieren equipo especializado.
La quitina es un biopolímero subexplotado, naturalmente abundante, mecánicamente robusto y químicamente resistente. Estas cualidades son deseables en un adsorbente, pero la quitina carece del área de superficie específica necesaria, y su modificación implica técnicas y equipos especializados. Aquí se describe un nuevo procedimiento químico para expandir las escamas de quitina, derivadas de los desechos de la cáscara del camarón, en espumas con mayor área de superficie. El proceso se basa en la evolución del gas H2 a partir de la reacción del agua con NaH atrapado en un gel de quitina. El método de preparación no requiere equipo especializado. La difracción de rayos X en polvo y la fisisorciónde N 2indican que el tamaño de la cristalita disminuye de 6,6 nm a 4,4 nm y el área de superficie específica aumenta de 12,6 ± 2,1 m2/ g a 73,9 ± 0,2 m2/ g. Sin embargo, la espectroscopia infrarroja y el análisis termogravimétrico indican que el proceso no cambia la identidad química de la quitina. La capacidad específica de adsorción de Cu de la quitina expandida aumenta en proporción a la superficie específica de 13,8 ± 2,9 mg/g a 73,1 ± 2,0 mg/g. Sin embargo, la capacidad de adsorción de Cu como densidad superficial permanece relativamente constante a un promedio de 10,1 ± 0,8 átomos/nm2,lo que nuevamente sugiere que no hay cambios en la identidad química de la quitina. Este método ofrece los medios para transformar la quitina en un material de mayor área de superficie sin sacrificar sus propiedades deseables. Aunque la espuma de quitina se describe aquí como un adsorbente, se puede imaginar como un soporte de catalizador, aislante térmico y material estructural.
La quitina es un biopolímero mecánicamente robusto y químicamente inerte, solo superado por la celulosa en abundancia natural1. Es el componente principal en el exoesqueleto de artrópodos y en las paredes celulares de hongos y levaduras2. La quitina es similar a la celulosa, pero con un grupo hidroxilo de cada monómero reemplazado por un grupo acetil amina(Figura 1A,B). Esta diferencia aumenta la resistencia del enlace de hidrógeno entre las cadenas de polímeros adyacentes y le da a la quitina su resistencia estructural característica y su inercia química2,3. Debido a sus propiedades y abundancia, la quitina ha atraído un importante interés industrial y académico. Se ha estudiado como andamio para el crecimiento tisular4,5,6,como componente en materiales compuestos7,8,9,10,11,y como soporte para adsorbentes y catalizadores11,12,13,14. Su estabilidad química, en particular, hace que la quitina sea atractiva para aplicaciones de adsorción que implican condiciones inhóspitas para los adsorbentes comunes14. Además, la abundancia de grupos amina hacen de la quitina un adsorbente eficaz para los iones metálicos15. Sin embargo, la protonación de los grupos amina en condiciones ácidas reduce la capacidad de adsorción metálica de la quitina16. Una estrategia exitosa es introducir sitios de adsorción más resistentes a la protonación17,18. En su lugar, aquí se describe un método simple para aumentar el área de superficie específica y, por lo tanto, el número de sitios de adsorción en quitina.

Figura 1. Estructura química. (A) celulosa, (B) quitina, (C) quitosano. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
A pesar de sus muchos usos potenciales, la quitina está subutilizada. El procesamiento de quitina es un desafío debido a su baja solubilidad en la mayoría de los solventes. Una limitación clave para su uso en catálisis y adsorción es su baja área de superficie específica. Mientras que los soportes típicos de carbono y óxido metálico tienen áreas de superficie específicas en el orden10 2-10 3 m2/ g, las escamas comerciales de quitina tienen áreas de superficie del orden de 10 m2/ g19,20,21. Existen métodos para expandir la quitina en espumas, pero invariablemente se basan en altas temperaturas y presiones, ácidos y bases fuertes, o equipos especializados que representan una barrera de entrada significativa5,21,22,23,24,25. Además, estos métodos tienden a desacetilatar quitina para formar quitosano(Figura 1C),un biopolímero más soluble y reactivo5,25,26.
Aquí, se describe un método para expandir la quitina en espumas sólidas, aumentar su área de superficie específica y capacidad de adsorción, y mantener su integridad química. El método se basa en la rápida evolución del gas desde el interior de un gel de quitina y no requiere equipo especializado. El aumento de la capacidad de adsorción de la quitina expandida se demuestra con Cu2+acuoso -un contaminante común en el agua subterránea local26.
| Unidad | Escama ordenada | Espuma al horno | Espuma liofilizada | |
| Cristalinidad | % | 88 | 74 | 58 |
| Tamaño del cristal | Nm | 6.5 | 4.4 | 4.4 |
| Superficie | m2/g | 12,6 ± 2,1 | 43,1 ± 0,2 | 73,9 ± 0,2 |
| Captación de Cu | mg/g | 13,8 ± 2,9 | 48,6 ± 1,9 | 73,1 ± 2,0 |
| Captación de Cu | átomo/nm2 | 10,5 ± 2,8 | 10,7 ± 0,4 | 9,4 ± 0,3 |
Tabla 1. Resumen de las propiedades del material. Las espumas de quitina tienen una cristalinidad y un tamaño de cristal más bajos en relación con las escamas de quitina ordenadas. Sin embargo, el área de superficie específica y la absorción de Cu de las espumas de quitina son proporcionalmente más altas que la de las escamas de quitina ordenadas.
1. Preparación de quitina expandida

Figura 2. Preparación de espuma de quitina expandida. (A) La quitina inicial en la solución de LiCl/DMAc. B)La adición de los purines de NaH/DMAc. (C) La espuma de quitina después de la adición de agua. (D) La espuma de quitina extraída del matraz de reacción. (E) La espuma de quitina durante el lavado con agua. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
2. Desarrollo de las isotermos de adsorción
La quitina expandida muestra la misma morfología independientemente del método de secado. La Figura 3 muestra imágenes de escamas de quitina ordenadas (Figura 3A1), quitina expandida seca al horno (Figura 3B1) y quitina expandida liofilizada (Figura 3C3). Mientras que los copos limpios tienen la apariencia de arena gruesa, la espuma de quitina expandida tiene la apariencia de un grano de maíz reventado. Las micrografías electrónicas de barrido muestran un cambio similar a escalas más pequeñas. Mientras que las escamas de quitina ordenadas(Figura 3A2,3A3)tienen una estructura compacta y densa, la quitina expandida al horno(Figura 3B2,3B3)y liofilizada(Figura 3C2,3C3)se asemeja al papel arrugado o a las hojas arrugadas. Las muestras fueron recubiertas con oro antes de obtener imágenes con un detector de electrones secundario, con un voltaje de aceleración de 15 kV, y a una distancia de trabajo en el rango de 29-31 mm.

Figura 3. Fotografías y micrografías de escamas pulcras y quitina expandida. Las fotografías corresponden a quitina (A1) en su forma de escamas pulcras y en su forma de espuma expandida seca por (B1) horneando a 80 ° C y (C1) liofilizando. Las micrografías electrónicas de barrido corresponden a dos aumentos de quitina (A2, A3) en su forma de escamas ordenadas y en su forma de espuma expandida seca por (B2, B3) horneando a 80 ° C y (C2, C3) liofilizando. Tenga en cuenta la forma más compacta de las escamas limpias en relación con la espuma expandida. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Estas observaciones visuales y microscópicas concuerban con los análisis de difracción de rayos X en polvo (XRD) yN 2-fisisorción de las muestras. Los difractogramas muestran un ensanchamiento de los reflejos cristalinos y un aumento en la intensidad del pico amorfo en las espumas expandidas en relación con las escamas ordenadas(Figura 4). Esta observación se puede ilustrar comparando el índice de cristalinidad semicuantitativa y las estimaciones del tamaño de cristalita de la quitina limpia y expandida. El índice de cristalinidad es la diferencia normalizada de intensidades de difracción cristalinas a amorfas29. Está dado por la ecuación:

Para la quitina, la intensidad de difracción cristalina típicamente utilizada es la del plano cristalino (110) a 19.3° y la intensidad de difracción amorfa es la de 16.0°29. El índice de cristalinidad desciende del 88% en las escamas limpias, al 74% en la espuma expandida seca al horno, y al 58% en la espuma expandida liofilizada(Tabla 1). El tamaño de la cristalita se puede estimar mediante la ecuación de Scherrer30:

Suponemos un factor de forma de 1 y el instrumento utilizó Radiación deα Cu K (longitud de onda = 15,4 nm). Usando la difracción del plano (110) a 19.3°, el tamaño de la cristalita cae de 6.6 nm en la quitina limpia a 4.4 nm en la quitina expandida(Tabla 1).

Figura 4. Difractogramas de rayos X de quitina pulcra y expandida. La figura muestra los difractogramas de quitina en su forma de escamas ordenada y en su forma de espuma expandida seca por dos métodos diferentes: hornear a 800 ° C y liofilizar. Los tres difractogramas se normalizan a la intensidad máxima de reflexión a 19,3 °, que corresponde al plano (110). Tenga en cuenta el ensanchamiento general de los picos en las espumas expandidas en relación con las escamas ordenadas. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Las mediciones de área de superficie específica, obtenidas a partir de isotermos de N 2-fisisorción a 77 K utilizando la ecuación31de Brunauer-Emmett-Teller (BET), conducen a observaciones similares. Para todos los materiales, las isotermas de adsorción N2 muestran que el volumen de captación aumenta linealmente con una presión parcial en el rango p/po = 0.05-0.25 (Figura 5A), como se espera de la condensación multicapa N2 32. Sin embargo, el volumen de absorción es mayor para las espumas expandidas. La gráfica BET (Figura 5B,5C), muestra una correlación lineal positiva con la presión parcial y la intercepción positiva, indicando que los datos están dentro del rango válido de la ecuación BET33. Como tal, el área de superficie específica de los materiales es proporcional a la inversa de la suma de la pendiente e intersección de esas líneas31. Mientras que el área de superficie específica de las escamas limpias es de 12.6 ± 2.1 m2/ g, la de la espuma seca al horno es de 43.1 ± 0.2 m2/ g, y la de la espuma liofilizada es de 73.9 ± 0.2 m2/ g. Los cambios en el índice de cristalinidad, el tamaño de la cristalita y el área de superficie específica indican que el material (1) forma una estructura más abierta y porosa, o (2) se degrada en partículas más pequeñas. Las micrografías de la Figura 3 sugieren lo primero, pero no se puede descartar lo segundo sin un análisis exhaustivo de la distribución del tamaño de los poros.

Figura 5. N2 isotermas de adsorción y gráficos BET. (A) Isotermos de adsorción N2 de quitina en su forma de escamas pulcras y en su forma de espuma expandida secado por dos métodos diferentes: horneado a 80 ° C y liofilizante, para presiones parciales en el rango BET. (B, C) Diagrama BET para los mismos materiales y el rango de presiones parciales. Las superficies específicas son proporcionales a la inversa de la suma de intersección y pendiente de las líneas en los gráficos BET. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
A pesar de los cambios morfológicos descritos anteriormente, el proceso de expansión no parece afectar la estructura química de la quitina. El espectro IR, obtenido como reflectancia total atenuada (ATR), de todas las muestras de quitina permanece prácticamente sin cambios independientemente del procesamiento (Figura 6). Nótese la similitud de los picos a 1650 cm-1 y 1550 cm-1 que corresponden al grupo funcional amida23.

Figura 6. Espectrogramas ATR IR de quitina pulcra y expandida. La figura muestra los espectros IR de la quitina en su forma de escamas ordenadas y en su forma de espuma expandida seca por dos métodos diferentes: hornear a 80 ° C y liofilizar. Las diferencias en los espectros son mínimas y no sugieren cambios químicos significativos entre las escamas limpias y la quitina de espuma expandida. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
El comportamiento de descomposición térmica también indica cambios químicos mínimos entre las tres muestras(Figura 7). La forma del perfil termogravimétrico es idéntica para la quitina expandida independientemente del método de secado, pero ambos difieren de la de las escamas limpias(Figura 7A). Esto se atribuye a las limitaciones de masa y difusión térmica asociadas con las escamas más compactas. El inicio de la descomposición térmica de las tres muestras ocurre a 260 ° C(Figura 7B),pero la tasa máxima de descomposición para las escamas de quitina ocurre a temperaturas más altas debido a su morfología más compacta.

Figura 7. Perfiles termogravimétricos de quitina pulcra y expandida. La figura muestra los perfiles termogravimétricos integrales (arriba) y diferenciales (abajo) de la quitina en su forma de escamas ordenadas y en su forma de espuma expandida seca por dos métodos diferentes: hornear a 80 ° C y liofilizar. El inicio de la descomposición térmica de los tres materiales es a 260 ° C, pero las escamas se descomponen en un rango de temperatura más largo en relación con las espumas. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
El aumento en el área de superficie específica se acompaña de un aumento esperado en la absorción máxima de Cu por quitina. Mientras que las escamas limpias captan 13,8 ± 2,9 mg/g, la espuma seca al horno capta 43,1 ± 1,9 mg/g y la espuma liofilizada capta 73,1 ± 2,0 mg/g (Tabla 1). El aumento en la absorción de Cu se ilustra más claramente comparando las isotermas de adsorción de Langmuir estándar(Figura 8A)y linealizada(Figura 8B). La absorción máxima está representada por el límite asintótico en la isoterma estándar y el inverso de la pendiente en la isoterma linealizada. Sin embargo, estas diferencias en la captación desaparecen cuando la captación de Cu se normaliza por el área de superficie (Tabla 1). Mientras que las escamas limpias captan 10,5 ± 2,8 átomos/nm2,la espuma seca al horno capta 10,7 ± 0,4 átomos/nm2,y la espuma liofilizada capta 9,4 ± 0,3 átomos/nm2 (Tabla 1). Esto sugiere que la superficie de la quitina expandida es químicamente similar a la de las escamas de quitina iniciales, lo que concueerda con la espectroscopia y las observaciones termogravimétricas.

Figura 8. (A) Isoterma de adsorción de Cu estándar y linealizada (B, C). La figura muestra isotermos de adsorción de Cu de quitina en su forma de escamas ordenadas y en su forma de espuma expandida secas al hornear a 80 ° C y liofilizar. Cada punto de datos es el promedio de tres mediciones y las barras de error representan dos desviaciones estándar. Las barras de error para las espumas expandidas en la isoterma linealizada son pequeñas y solo se pueden ver en (C). Las líneas sólidas muestran las isotermos de adsorción de Langmuir que mejor se ajustan. La captación máxima es el valor asintótico en la isoterma de adsorción estándar y la pendiente inversa en las linealizadas. La quitina expandida muestra una mayor absorción de Cu que la de las escamas de quitina en al menos un factor de 4. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Los autores no tienen nada que revelar.
Este estudio describe un método para expandir la quitina en una espuma mediante técnicas químicas que no requieren equipo especializado.
La investigación fue patrocinada por el Laboratorio de Investigación del Ejército del Comando de Desarrollo de Capacidades de Combate (Acuerdo de Cooperación Número W911NF-15-2-0020). Todas las opiniones, hallazgos y conclusiones, o recomendaciones expresadas en este material son las de los autores y no reflejan necesariamente los puntos de vista del Laboratorio de Investigación del Ejército.
Agradecemos al Centro de Procesamiento Avanzado de Materiales (CAMP) de la Universidad Tecnológica de Montana por el uso de algunos de los equipos especializados requeridos en este estudio. También agradecemos a Gary Wyss, Nancy Oyer, Rick LaDouceur, John Kirtley y Katherine Zodrow por la asistencia técnica y las útiles discusiones.
| Bicarbonato de amonio | Sigma-Aldrich | 9830 | NH4HCO3, ≥ 99.5 % |
| Quitina | Sigma-Aldrich | C7170 | Pandalus borealis, grado práctico |
| Colorímetro | Hanna Instruments | HI83399-01 | Fotómetro para análisis de aguas residuales |
| Verificador de alto rango de cobre | Hanna Instruments | HI702 | Valoración colorimétrica de bicinconinato |
| Nitrato de cobre hidrato | Sigma-Aldrich | 223395 | Cu(NO3)2 · 2.5 H2O, 98 % |
| Dimetilacetamida (DMAc) | Sigma-Aldrich | 271012 | anhidro, 99.8 % |
| IR Espectrofotómetro | Thermo Nicolet | Nexus 670 | Equipado con una celda ATR |
| Cloruro de litio | Sigma-Aldrich | 310468 | LiCl, ≥ 99 % |
| N2 Aparato de fisisorción | Micromeritics | Tristar II | |
| Ácido nítrico | BDH | BDH7208-1 | HNO3, 0,1 N |
| Microscopio electrónico de barrido | Zeiss LEO | 1430 VP | 15 kV, detector de electrones secundarios, distancia de trabajo de 29-31 mm |
| Hidruro de sodio | Sigma-Aldrich | 223441 | NaH, envasado en aceite mineral, 90 % |
| Termogravimétrico analizador | TA Instruments | Q500 | 100 ml/min N2, 10 ° C/min hasta 800 ° C |
| Sistema de purificación de agua | Millipore | Milli-Q | Tipo A agua (18 MΩ) |
| Difractómetro de rayos X | Rigaku | Ultima IV | Cu K-α radiación, 8,04 keV |