Artículo de método

Diferenciación dirigida de células endoteliales hemogénicas de células madre pluripotentes humanas

DOI:

10.3791/62391

31 de marzo de 2021

En este artículo

Resumen

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Aquí se presenta un protocolo simple para la diferenciación dirigida de células endoteliales hemogénicas de células madre pluripotentes humanas en aproximadamente 1 semana.

Resumen

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Los vasos sanguíneos están distribuidos ubicuamente dentro de todos los tejidos del cuerpo y realizan diversas funciones. Por lo tanto, la derivación de células endoteliales vasculares maduras, que recubren los lúmenes de los vasos sanguíneos, a partir de células madre pluripotentes humanas es crucial para una multitud de aplicaciones de ingeniería y regeneración de tejidos. In vivo, las células endoteliales primordiales se derivan del linaje mesodérmico y se especifican hacia subtipos específicos, incluidos arteriales, venosos, capilares, hemogénicos y linfáticos. Las células endoteliales hemogénicas son de particular interés porque, durante el desarrollo, dan lugar a células madre y progenitoras hematopoyéticas, que luego generan todos los linajes sanguíneos a lo largo de la vida. Por lo tanto, la creación de un sistema para generar células endoteliales hemogénicas in vitro proporcionaría una oportunidad para estudiar la transición endotelial a hematopoyética, y puede conducir a la producción ex vivo de productos sanguíneos humanos y una menor dependencia de donantes humanos. Si bien existen varios protocolos para la derivación de células endoteliales progenitoras y primordiales, no se ha descrito la generación de células endoteliales hemogénicas bien caracterizadas a partir de células madre humanas. Aquí, se presenta un método para la derivación de células endoteliales hemogénicas a partir de células madre embrionarias humanas en aproximadamente 1 semana: un protocolo de diferenciación con células de raya primitivas formadas en respuesta al inhibidor de GSK3β (CHIR99021), luego inducción de linaje de mesodermo mediada por bFGF, seguida de desarrollo de células endoteliales primordiales promovidas por BMP4 y VEGF-A, y finalmente especificación de células endoteliales hemogénicas inducida por ácido retinoico. Este protocolo produce una población bien definida de células endoteliales hemogénicas que se pueden utilizar para comprender mejor su regulación molecular y la transición endotelial a hematopoyética, que tiene el potencial de aplicarse a aplicaciones terapéuticas posteriores.

Introducción

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Las células endoteliales (CE) son una población heterogénea de células que realizan múltiples funciones en todo el cuerpo humano y en tejidos diseñados. Además de apoyar y regular otros tipos de células (es decir, cardiomiocitos1, células osteoblásticas,2), estas funciones incluyen formar una barrera selectiva entre la sangre y los tejidos y ayudar en la formación de tejidos3. La diferenciación de CE maduras durante el desarrollo normal requiere diversas vías de señalización. Las CE primordiales se derivan de progenitores del mesodermo, y luego se especifican hacia fenotipos arteriales, venosos, c....

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Protocolo

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1. Reactivos y preparación de reactivos

NOTA: Se proporciona una lista de reactivos en la Tabla de materiales.

  1. Obtener las líneas de células madre pluripotentes humanas: H1-hESC, H9-Fucci-hESC.
    NOTA: La generación de CE hemogénicas puede ser más eficiente en la línea celular H1.
  2. Preparar las reservas de proteínas de la matriz: Alícuota de la proteína de la matriz en tubos prerefrigerados de 1,5 ml (sobre hielo) de modo que cada tubo contenga 1 mg de proteína de la matriz. 1 mg de proteína de matriz es suficiente para cubrir todos los pocillos de dos placas de 6 pocillos (12 pocillos en total). Conserv....

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Resultados

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En la Figura 1 se muestra un esquema que describe la especificación de las CE primordiales y las CE hemogénicas de las hESCs, y una imagen representativa de las células 24 h después del recubrimiento. Después de la especificación, los CE primordiales y los CE hemogénicos se purifican con FACS en los días 5 y 8, respectivamente. Las CE primordiales se definen como CD31+ CD45- y las CE hemogénicas se definen como CD31+ KDR+ c-Kit+ CD34+ VE-Cadherina-.......

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Discusión

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En este documento, se describen los pasos para producir células endoteliales hemogénicas a partir de células madre embrionarias humanas en aproximadamente 1 semana utilizando un sistema de cultivo 2D sin alimentador murino y suero (Figura 1). Este protocolo amplía un método descrito por Sriram et al. (2015) para obtener CE primordiales38. La naturaleza primordial y el potencial de especificación de los CD31+ CD45- EC se demuestra cultivando estas.......

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Divulgaciones

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El autor no tiene nada que revelar.

Agradecimientos

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Este trabajo fue parcialmente apoyado por las subvenciones de los NIH HL128064 y U2EB017103. El apoyo adicional fue proporcionado por CT Innovations 15-RMB-YALE-04 subvención.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Placas de 15 cmCorning430599tratamiento con cultivo de tejidos
Placas de 35 mmCorning430165tratamiento con cultivo
de 6 pocillosCorning3516tratamiento con cultivo
de tejidos Reactivo antimicrobiano
Marca: Normocin
Invitrogenant-nr-1
bFGFR& Sistemas D233-FB-025uso a 50 ng/mL
BMP4BioLegend595202uso a 25 ng/mL
Albúmina sérica bovina (BSA)Fisher ScientificBP1600-1
Cell Detatchment Solution
Marca: Accutase
Stemcell Technologies7920
Dimethyl Sulfoxide (DMSO)Sigma AldrichD2650-100mL
DispasaStemcell Technologies7913
DLL4R& D sistemas1506-D4/CFhumano recombinante; uso a 10 μ g/mL
DMEM:F12Gibco11320-033
Solución salina tamponada con fosfato (PBS) de Dulbecco< 14190144
Medio de crecimiento de células endotelialesbr/> Marca: EGM-2 Endotelial Cell Growth Medium-2 BulletKit (EGM-2)Tubos LonzaCC-3162
FACSredondo de poliestireno 352235 Corning con tapa
de filtroSuero Fetal Bovino (FBS)Gemini Bio100-106
FibronectinaThermoFisher Scientific33016015uso a 4 μ g/cm2
GSK3i/CHIR99021Stemgent04-0004-0210 mM de culata; uso a 5 μ M
Hanks Solución salina equilibrada (HBSS)Gibco14175-095
Ácido clorhídrico (HCl)Fisher ScientificA144S-500
Proteína de matriz 
Marca: Matrigel
Corning356230Factor de crecimiento reducido. Consulte el Certificado de análisis del lote para determinar la concentración de proteína (Matrigel). Esta concentración es necesaria para calcular el volumen de Matrigel que contiene 1 mg de proteína.
Medio a base de metilcelulosa
Marca: MethoCult H4435 Tecnologías
células madre4435
Medio de diferenciación de células madre pluripotentes
Nombre de la marca: STEMdiff APEL 2
Tecnologías de células madre5270
Células madre pluripotentes: H1, H9, H9-FUCCIWiCellWA09 (H9), WA01 (H1)humano; H9-FUCCI se obtuvieron del laboratorio del Dr. Ludovic Vallier en el Instituto de Células Madre de Cambridge
Medio de hibridomas sin proteínas (PFMH)Gibco12040077
Ácido retinoicoSigma AldrichR2625-50 mguso a 0,5 μ M
Transcripción inversa master mix
Marca: iScript Transcripción inversa Supermix
BioRad1708840
kit de extracción de ARN
Marca: RNeasy Mini Kit
Qiagen74104
Hidróxido de sodio (NaOH)Fisher ScientificSS255-1
Medio de crecimiento de células madre
Marca: mTeSR1
Stemcell Technologies85850
SYBR Mezcla maestra verde
Marca: iTaq Universal SYBR Green Master Mix
BioRad1725121
Trypsin-EDTAGibco252999560.25%
VEGF165 (VEGF-A)PeproTech100-20uso a 50 ng/mL
α-CD31-FITCBioLegend3031042 μ g/mL*
α-CD34-Pacific BlueBioLegend3435122 μ g/mL*
α-CD45-APC/Cy7BioLegend3040142 μ g/mL*
α-c-Kit-APCBioLegend3132062 μ g/mL*
α-Flk-1-PE/Cy7BioLegend3599112 μ g/mL*
α-VE-Cadherin-PEBioLegend3485062 μ g/mL*
* Los conjugados fluorescentes de anticuerpos deben optimizarse en función del clasificador de células utilizado. A continuación se presentan las concentraciones finales utilizadas en este estudio.
de tejidos Placas Fondo de enriquecidas

Referencias

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  1. Giacomelli, E., et al. Three-dimensional cardiac microtissues composed of cardiomyocytes and endothelial cells co-differentiated from human pluripotent stem cells. Development. 144 (6), 1008-1017 (2017).
  2. Wu, J., Wu, Z., Xue, Z., Li, H., Liu, J.

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