Waiting
Procesando inicio de sesión ...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

En protokoll for Roux-en-Y gastrisk bypass hos rotter ved hjelp av lineære stiftere

Published: August 21, 2021 doi: 10.3791/62575

Summary

Roux-en-Y gastrisk bypass (RYGB) utføres for å behandle fedme og diabetes. Mekanismene som ligger til grunn for RYGB's effekt er imidlertid ikke fullt ut forstått, og studier er begrenset av tekniske vanskeligheter som fører til høy dødelighet i dyremodeller. Denne artikkelen gir instruksjoner om hvordan du utfører RYGB hos rotter med høy suksessrate.

Abstract

Roux-en-Y gastrisk bypass (RYGB) utføres ofte for behandling av alvorlig fedme og type 2 diabetes. Imidlertid er mekanismen for vekttap og metabolske endringer ikke godt forstått. Flere faktorer antas å spille en rolle, inkludert redusert kaloriinntak, redusert næringsabsorpsjon, økt metthetsfølelse, frigjøring av metthetsfremmende hormoner, endringer i gallesyremetabolisme og endringer i tarmmikrobiota.

Rotte RYGB-modellen presenterer et ideelt rammeverk for å studere disse mekanismene. Tidligere arbeid med musemodeller har hatt høy dødelighet, alt fra 17 til 52%, noe som begrenser adopsjonen. Rottemodeller viser mer fysiologiske reserver til kirurgisk stimulans og er teknisk enklere å vedta da de tillater bruk av kirurgiske stifter. En utfordring med kirurgiske stiftere er imidlertid at de ofte legger igjen en stor magepose som ikke er representativ for RYGB hos mennesker.

I denne protokollen presenterer vi en RYGB-protokoll hos rotter som resulterer i en liten magepose ved hjelp av kirurgiske stifter. Ved hjelp av to stiftebranner som fjerner rottens skogsomach, får vi en mindre magepose som ligner på den etter en typisk menneskelig RYGB. Kirurgisk stifting resulterer også i bedre hemostase enn skarp divisjon. I tillegg inneholder ikke rotens forestomach noen kjertler, og fjerningen bør ikke endre fysiologien til RYGB.

Vekttap og metabolske endringer i RYGB-kohorten var signifikant sammenlignet med sham-kohorten, med betydelig lavere glukosetoleranse ved 14 uker. Videre har denne protokollen en utmerket overlevelse på 88.9% etter RYGB. Ferdighetene beskrevet i denne protokollen kan tilegnes uten tidligere mikrokirurgisk erfaring. Når du er mestret, vil denne prosedyren gi et reproduserbart verktøy for å studere mekanismene og effektene av RYGB.

Introduction

Fedme og type 2 diabetes har blitt verdensomspennendeepidemier 1. Selv om medisinsk vekttap kan forbedre diabetes hos pasienter, de med alvorlig diabetes nytte mest av bariatrisk kirurgi. Bariatrisk kirurgi har vist seg å være trygt og effektivt ved vekttap og forbedre eller herde type 2 diabetes2,3, selv hos de med langvarig sykdom4. Metabolske bariatriske prosedyrer, for eksempel den nåværende gull-standard Roux-en-Y gastrisk bypass (RYGB) kirurgi, indusere raske og vedvarende forbedringer i glukose homeostase samtidig redusere behovet for diabetiker medisiner5,6,7.

Etter RYGB oppstår glukose homeostase forbedring raskt og er uavhengig av vekttap8. To hovedteorier er foreslått for å forklare metabolske endringer forbundet med diabetes remisjon som oppstår etter metabolsk kirurgi. For det første postulerer bakvollshypotesen at høyere konsentrasjoner av ufordøyde næringsstoffer etter bypass når den distale tarmen som forbedrer frigjøringen av hormoner som GLP-1. På den annen side antyder foreguthypotesen at omgåelse av proksimal tarm reduserer sekresjonen av anti-incretin hormoner. Begge disse effektene kan føre til tidlig forbedring av glukosemetabolismen9.

Dyremodeller har potensial til å være et kraftig verktøy for å studere disse mekanismene. En stor barriere for å bruke mus- eller rottemodeller er imidlertid den tekniske vanskeligheten med å utføre disse prosedyrene. De fleste studier har stolt på mus- eller rottemodeller10,11,12. Musemodeller har vært vanskelige da musen magen er for liten til å bruke stifteenheter11, og dødeligheten er uakseptabelt høy, alt fra 17 til 52%13. Hos rotter forblir noen protokoller teknisk vanskelig å utføre på grunn av kompleks ligasjon av magebeholdere før de deler magen12,14. Andre modeller deler magen ved hjelp av en stiftestifter, men la en stor pose ikke samsvare med innlegget RYGB menneskelig anatomi11. I denne modellen gir vi detaljerte instruksjoner om hvordan du utfører RYGB ved hjelp av lineære stiftere i en rottemodell, noe som resulterer i en magepose mer i tråd med den menneskelige anatomien. Totalt sett var denne prosedyren forbundet med gode overlevelsesrater og metabolske resultater.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Dyrebruksprotokoller ble godkjent av Health Science Animal Care and Use Committee ved University of Alberta (AUP00003000). Se figur 1 for et diagram som viser RYGB-anatomien.

1. Roux-en-Y gastrisk bypass

  1. Forberedelse av dyr og operativt oppsett
    1. En uke før operasjonen, gi rotter med oral rehydreringsterapi og flytende diett i tillegg til deres faste kosthold og vann for å akklimatisere dem til dette nye kostholdet.
    2. Raske rotter med bare tilgang til vann i 12-18 timer før operasjonen.
      1. Forsikre deg om at rotter er fastet på en hevet ledningsplattform slik at de ikke kan konsumere sengetøy.
    3. Injiser rotter med subkutan lang buprenorfin vedvarende frigjøring (SR) i en dose på 1 mg/kg umiddelbart før operasjonen.
    4. Autoklaver alle kirurgiske instrumenter, håndklær og gardiner.
    5. Rengjør driftsflaten, varmeputen og bedøvelses nesekjeglen med 70% etanol.
    6. Sett opp driftsflaten med et fungerende mikroskop, bedøvelsesmaskin og forsyninger på en måte som er ergonomisk for driftskirurgen.
    7. Bruk en temperaturregulert varmepute og sett den til 37 °C.
    8. Plasser en steril gardin eller et håndkle over varmeputen.
    9. Fyll et 50 ml sterilt konisk rør med 0,9% saltvann.
  2. Bedøvelsesinduksjon og forberedelse
    1. Induser anestesi ved hjelp av 4% isofluran i henhold til tidligere etablerte protokoller15.
    2. Påfør trykk på bakfoten på alle fire lemmer for å sikre at det ikke er smerterespons.
    3. Se etter tilstrekkelig anestesi og respirasjonsfrekvens etter hver 5.
    4. Påfør smøremiddel på begge øynene for å forhindre tørking.
    5. Barber håret fra magen.
    6. Rengjør magen med en povidon-jodoppløsning. La oppløsningen tørke og bytt til sterile hansker.
    7. Draper rotten med en åpning i gardinen for å eksponere magen.
    8. Plasser instrumenter, suturer, bomullspinne og en 10 ml sprøyte på et sted som gir enkel tilgang under prosedyren.
  3. Median laparotomi
    1. Lag et 3 cm snitt i øvre midtlinje i magen ved hjelp av en skalpell, like under fremmedfryktprosessen som et landemerke.
    2. Bruk saks, del fascia og peritoneum, med forsiktighet å holde seg midtlinje på linea alba for å redusere blødning fra rectus abdominus. Hvis det er blødning, kontroller det med termisk eller elektrokauteri.
  4. Mobilisere magen
    1. Bruk to våte bomullspinne, disseker magetilbehør.
    2. Når du møter tette vedheft, bruk termisk cautery for å dele magetilbehør med forsiktighet for å unngå å cauterizing magen. Del ligamentet mellom magen og leverflippen skarpt for å redusere risikoen for levertåring med magemobilisering.
    3. For større blodkar, spesielt ved de korte magearteriene, ligat ved hjelp av 6-0 polypropylen sutur.
    4. Lag et vindu på høyre distale side av spiserøret, men proksimalt til venstre magearterie. Sørg for at en bomullspinne kan nå inn i dette området bakre. Magen mobiliseres tilstrekkelig når den kan eksteriøriseres utenfor magen.
  5. Identifisere og dele jejunum
    1. Identifiser ligamentet til Treitz ved å følge jejunum proksimalt til du observerer at det er knyttet til det tverrgående mesocolonet.
    2. Mål 7 cm distalt, identifiser et sted mellom mesenteriske kar, og del tarmen med mikrosaks. Unngå Peyers flekker når du deler tarmen. Pass på å bare dele tarmen og ikke mesenteriet.
    3. Legg en ren, saltvannssuget svamp før du deler tarmen for å minimere forurensning.
    4. Se etter tilstedeværelsen av et lite kryssingsfartøy i mesenteriet ved grensen til den lille tarmen og del dette med cautery for å unngå blødning.
    5. Fortsett å dele mesenteriet 1 cm mot den mesenteriske basen.
    6. Identifiser det proksimale og distale jejunumet. Plasser det proksimale jejunumet under en våt gasbind til høyre for rotten og det distale jejunumet til venstre for rotten.
  6. Stifter magen
    1. Sett inn en 45 mm lineær klippestifter med 3,5 mm stiftehøyde over den hvite linjen i forestomach for å lage en mindre pose. Vent i 10 s før du avfyrer stiftemaskinen.
    2. Legg trykket med gasbind på stiftelinjene i 1 min for å sikre hemostase. Hvis hemostase ikke oppnås med trykk alene, blir blødning langs stiftelinjen oversewn ved hjelp av 6-0 polypropylenfigur på åtte suturer.
    3. Utfør en annen stiftbrann over magen inn i vinduet som ble opprettet tidligere. Vent i 10 s før du avfyrer stiftemaskinen. Trykket holdes langs stiftelinjen for å sikre hemostase, og oversewing kan være nødvendig.
  7. Gastrojejunostomi
    1. Lag en gastrotomi umiddelbart etter stifting av magen. Forsinkelser i dette kan forårsake gastrisk distensjon og aspirasjon da magen er diskontinuerlig etter den andre magestiften.
    2. Bruk en 11-blads skalpell, lag en gastrotomi ved den distale posen. Ekspress mageinnhold gjennom gastrotomien. Dette er viktig for å forhindre gastrisk distensjon og aspirasjon. Forlenge denne gastrotomien ved hjelp av mikrosaks til ca. 5 mm. Gastrotomien er laget stor nok til at bomullspinnespissen bare passer gjennom.
    3. Mobiliser den distale enden av jejunumet ved siden av gastrotomien og plasser slik at mesenteriet ikke er vridd.
    4. Mens du suturerer anastomose, må du sørge for at tarmen holdes fuktig ved å dekke den med saltvanns-gjennomvåt gasbind og gjenbruke saltvann regelmessig.
    5. Bruk 6-0 polydioksanon eller polypropylen sutur, plasser en opphold sutur på den dårligere marginen av anastomose og forsiktig trekke tilbake ved hjelp av et blunk. Bind med tre knop.
    6. Plasser en opphold sutur på den overlegne marginen av anastomose og forsiktig trekke tilbake ved hjelp av et blunk. Bind med seks knop.
    7. Suturer den fremre siden av anastomose på en kontinuerlig måte, ta biter 1 mm brede og 1 mm fra hverandre med forsiktighet for å unngå å ta baksiden.
    8. Når suturen har nådd den dårligere oppholdssugingen, knytter du disse sammen med ytterligere seks knop.
    9. Når den fremre siden er fullført, snur du tarmen og magen og passerer den dårligere oppholdssugingen gjennom den mesenteriske defekten. Bruk snapen på nytt og trekk den tilbake dårligere.
    10. For den bakre siden av anastomose, plasser full tykkelse avbrutt 6-0 suturer, 1 mm brede og fordelt 1 mm fra hverandre, med forsiktighet for å unngå å ta baksiden. Disse er bundet med seks knop hver.
      MERK: Den fremre siden av anastomose er suturert på en kontinuerlig måte mens den bakre siden gjøres på en avbrutt måte. Dette forhindrer potensiell strenghet eller stenose forbundet med en kontinuerlig omkretslukking.
    11. Se etter lekkasjen ved å skyve lysinnholdet forsiktig over anastomose. Hvis det er områder med lekkasje, må du forsiktig forsterke dem med avbrutte suturer. Pass på at du ikke tar bakveggen når du forsterker med ekstra suturer.
  8. Jejunojejunostomi
    1. Fra gastrojejunostomi måler du 20 cm distalt.
    2. Lag en jejunomy på den antimesenteriske siden ved hjelp av 11-blads skalpell. Unngå å lage jejunotomi over Peyers flekker.
    3. Utvid denne jejunotomien ved hjelp av mikrosaks, slik at den har samme størrelse som den biliopankreatiske lemmen. Pass på at en bomullspinne bare passer inn.
    4. Plasser den biliopankreatiske lemmen slik at det ikke er vridning av mesenteriet.
    5. Utfør anastomose på samme måte som gastrojejunostomi med 6-0 opphold suturer på overlegne og dårligere sider. Den fremre siden utføres med kontinuerlige suturer mens den bakre siden utføres med avbrutte suturer.
    6. Sørg for at tarmen holdes fuktig med saltvann under denne anastomose.
    7. Se etter lekkasje ved å skyve lysinnholdet forsiktig gjennom anastomose. Hvis det er områder med lekkasje, forsterk dem med avbrutte suturer.
  9. Omplasser tarmen og magen
    1. Forsikre deg om at det ikke er vridning av posen, rest mage eller lever. Forsikre deg om at venstre lobe i leveren er fremre i magen og ikke fanget bak posen, da dette kan forårsake kompressiv lever iskemi.
    2. Plasser tarmen i magen i sin naturlige posisjon slik at det ikke er vridning.
  10. Abdominal lukking
    1. Lukk fascia med 3-0 polyglaktin på en kontinuerlig måte. 3-0 polydioksanone kan også brukes.
    2. Lukk huden med 2-0 silke på en kontinuerlig måte.
  11. Bedøvelsesoppkomst
    1. Reduser isofluran til null, men fortsett ekstra oksygen.
    2. Administrer en lokalbedøvelse som en sprutblokk til snittet.
    3. Administrer 10 ml subkutan 5% dekstrose i normal saltvann (D5NS) i det subkutane vevet bak nakken.
    4. Plasser en elizabethansk rotte krage før rotten er helt våken. Pass på å passe godt, men ikke for stramt til å forårsake ubehag.
      MERK: Kragen holdes på til dag 5 for å forhindre sårdehiscence.

2. Sham kirurgi

MERK: Sham kirurgi utføres på samme måte som RYGB, men ingen anastomoser utføres.

  1. En gastrotomi opprettes og lukkes deretter med 6-0 polydioksanone eller polypropylen suturer.
  2. En jejunotomi er opprettet 7 cm distal til ligamentet av Treitz og deretter lukket med 6-0 polydioksanone eller polypropylen suturer.

3. Postoperativ omsorg

  1. Postoperativ omsorg
    1. Husrotter individuelt og hold dem på hevede trådplattformer til fast mat gjeninnføres for å forhindre forbruk av sengetøy og lysobstruksjon.
      MERK: Postoperativt kosthold gjenopptas gradvis da ødem ved gastrojejunostomi kan forårsake obstruksjon med tidlig gjenopptakelse av fast kosthold.
    2. Inspiser føttene daglig mens rotter er på hevede trådplattformer for eventuelle hudforandringer.
    3. Hold rotter på vann og oral rehydrering terapi diett for de første 72 h.
    4. Administrer 10 ml D5NS hver 12.
    5. Administrer subkutan korttidsvirkende buprenorfin ved 0,01 mg/kg dersom rotter ser ut til å ha smerter. Rat Grimace-skalaen brukes til å vurdere for smerte16.
    6. På postoperativ dag 3, legg til gnager flytende diett. Fortsett å gi vann- og oral rehydreringsterapi.
    7. På postoperativ dag 5, start fettfattig diett på nytt. Fortsett å gi vann og flytende diett. Fjern den elisabethanske kragen.
    8. På postoperativ dag 7, avslutt flytende diett.
    9. Fjern hud suturer på postoperativ dag 10-14.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Dyr og boliger
36 mannlige Wistar-rotter ble plassert i par og ble matet 60% steril gnager fettfattig diett fra seks ukers alder (Figur 2). Ved 16 ukers alder gjennomgikk de RYGB eller sham kirurgi. Etter den første postoperative uken ble rotter gjenopptatt på et høyt fett diett. Halvparten av rottene ble euthanized på 2 uker postoperativ og den andre halvparten ble euthanized på 14 uker postoperative.

Dødelighet
Totalt overlevde 33 (91,7%) rotter til det planlagte studieendepunktet. Alle rotter som gjennomgår tidlig eutanasi gjennomgikk nekropsi av en veterinær. To rotter ble avlivet innen 24 timer. En RYGB hadde aspirasjon pneumonitt og en sham rotte hadde fascial dehiscence med unsalvageable tarm. En annen RYGB rotte ble euthanized på to uker på grunn av anastomotisk lekkasje fra gastrojejunostomi. Totalt overlevde 88,9% av RYGB rotter å studere endepunkt.

Kroppsvekt
Rotter som gjennomgår RYGB hadde en lavere postoperativ vekt enn sham rotter. Figur 3 viser absolutte vekter for rotter postoperativt, mens figur 4 viser postoperativ prosentvis vektendring som var statistisk signifikant ved alle tidspunkter postoperativt. Ved 14 uker hadde rotter som hadde RYGB en gjennomsnittlig prosentvis vektendring på 6,4% mens rotter med sham kirurgi hadde 23,7% (p = 0,0001).

Intraperitoneal glukosetoleranse testing
Fastende blodsukker var ikke signifikant forskjellig mellom noen av kohortene. Området under kurven var imidlertid betydelig lavere i RYGB sammenlignet med sham ved 13 uker (18,1 vs 23,8 mmol-h/L, p = 0,046, figur 5), men var det samme for RYGB vs sham ved 1 uke (20,8 vs 23,3 mmol-h /L, p = 0,68).

Figure 1
Figur 1: Roux-en-Y gastrisk bypass-anatomi Klikk her for å se en større versjon av denne figuren.

Figure 2
Figur 2: Preoperativ absolutt vekt på høyt fettinnhold; RYGB, Roux-en-Y gastrisk bypass Klikk her for å se en større versjon av denne figuren.

Figure 3
Figur 3: Postoperativ absolutt vekt på fettfattig kosthold; RYGB, Roux-en-Y gastrisk bypass Klikk her for å se en større versjon av denne figuren.

Figure 4
Figur 4: Postoperativ prosentvis vektendring på fettfattig kosthold; RYGB, Roux-en-Y gastrisk bypass Klikk her for å se en større versjon av denne figuren.

Figure 5
Figur 5: Intraperitoneal glukosetoleransetesting i gastrisk bypass vs sham ved 13 uker. RYGB, Roux-en-Y gastrisk bypass Klikk her for å se en større versjon av denne figuren.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

RYGB innebærer opprettelse av en liten magepose (mindre enn 30 ml), og opprettelsen av en biliopankreatisk lem og en Roux-lem (figur 1). Hos mennesker er den biliopankreatiske lemmen vanligvis 30 til 50 cm og transporterer sekreter fra magerester, lever og bukspyttkjertel. Roux-lemmen er vanligvis 75 til 150 cm lang og er den primære kanalen for inntatt mat. Den vanlige kanalen er den gjenværende lille tarmen distal til hvor de to lemmer blir med og er der flertallet av fordøyelsen og absorpsjonen oppstår, da bukspyttkjertelenzymer og galle blandes med inntatt mat17.

Mekanismen for vekttap i RYGB er multimodal. Den lille mageposen reduserer matinntaket gjennom mekanisk begrensning. Bypass resulterer i en malabsorptive komponent som en betydelig del av tynntarmen absorberer ikke kalorier og næringsstoffer. Mer nylig har studier vist at tarmhormoner spiller en betydelig rolle i vekttap etter RYGB også. Disse er hovedsakelig gjennom ghrelin, peptid-YY, cholecystokinin (CCK) og GLP-1 hormonveier18.

Rottemodeller gir en kraftig metode for å studere mekanismene bak både vekt og metabolske effekter av RYGB. I dette dokumentet presenterer vi en RYGB-protokoll som har lav dødelighet med betydelig vekttap og metabolske effekter. Når operatøren ble kjent med teknikken, tok prosedyren omtrent 90 minutter å utføre. Protokollen kan også endres med lengre biliopankreatisk og Roux lem lengder for å potensielt øke vekttap og metabolsk effekt. Videre er det teknisk mer gjennomførbart enn andre modeller, da det tillater bruk av kirurgiske stifter for å oppnå hemostase og minimere operativ tid. Modeller som er avhengige av skarp deling av magen uten stifting, resulterer ofte i høyere dødelighet på grunn av betydelig blodtap. De tekniske ferdighetene som kreves for å utføre prosedyren var relativt enkle å skaffe seg, og elevene var i stand til komfortabelt å utføre prosedyren etter omtrent fem til ti ikke-gjenopprettingsprosedyrer.

Et av de kritiske trinnene i denne protokollen er å begrense blodtap under mobilisering av magen. Forsiktig bruk av termisk cautery kombinert med sutur ligation av fartøy er viktig. Det er også viktig å utføre minst halvparten av omkretsen av anastomosene på en avbrutt måte. Dette forhindrer overdreven strenging ved anastomosene. Videre er det viktig å se etter lekkasjer, da disse kan føre til sepsis og død. Før du lukker magen, er det viktig at venstre lobe i leveren er plassert i sin naturlige, fremre stilling og at det ikke er rotasjon i tarmen eller magen, da dette kan føre til visceral iskemi.

Postoperativ omsorg er avgjørende for denne protokollen. Hevede ledningsplattformer kreves i både faste og postoperative perioder, da forbruket av fast materiale fører til anastomotiske hindringer. Det er viktig å gi subkutan væske, da rottene kanskje ikke tolererer orale væsker i den umiddelbare postoperative perioden. Rottene bør akklimatiseres til oral rehydreringsterapi og flytende diett, da rotter kan unngå nye dietter på grunn av assosiasjoner til postoperativ smerte. Denne kostholdsprotokollen bidrar til betydelig vekttap i den umiddelbare postoperative perioden i både RYGB og sham kohorter, og vekt utvinning i sham gruppen tok omtrent fem uker. Imidlertid er streng overholdelse av denne postoperative protokollen viktig for å redusere sykelighet og dødelighet etter RYGB. I tillegg er hyppig undersøkelse av rotter ved hjelp av Rat Grimace Scale viktig å oppdage for sykelighet. I vår studie utviklet en rotte en sen anastomotisk lekkasje som raskt ble oppdaget ved hjelp av denne skalaen og tillot tidlig eutanasi å redusere lidelse.

En av fordelene med denne metoden er at den resulterer i en mindre pose ved bruk av kirurgiske stifter for å redusere mageblødning. Når vi forsøkte å dele magen kraftig uten stiftestiftere, fører det til overdreven blødning og en mye høyere dødelighet. Dette fører imidlertid også til fjerning av forestomach, og dette kan føre til fysiologiske endringer som er forskjellige fra den menneskelige RYGB. Imidlertid er forestomach unik for gnagere og inneholder ingen kjertler, og bør ikke forårsake endringer i tarmhormoner.

Den viktigste begrensningen ved denne metoden er at den krever to kirurgiske stiftelaster per rotte, noe som kan være kostbart. Imidlertid reduserer gode overlevelsesresultater potensielt kostnadene ved å kreve mindre rotter for en studie, noe som resulterer i bedre utnyttelse av husdyrholdsfasiliteter, kirurgisk utstyr og forskningspersonell.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Ethicon leverte to 45 mm lineære skjærestiftere, flere 3,5 mm stiftestifterlaster og 6-0 polypropylen suturer. Forfattere har ingen andre interessekonflikter å erklære.

Acknowledgments

Denne studien ble finansiert av American Society for Metabolic and Bariatric Surgery Research Award. Ethicon leverte nådig suturer, stiftere og klips. Hovedforfatterens doktorgradsforskning ble finansiert av University of Alberta Clinician Investigator Program og Alberta Innovates Clinician Fellowship. Vi vil også takke Michelle Tran for hennes medisinske illustrasjon av RYGB-anatomien.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
2-0 Silk Sutures Ethicon K533
3-0 Vicryl Sutures Ethicon J219H
4% Isoflurane N/A N/A
5% Dextrose and 0.9% Sodium Chloride Solution - 1000 mL Baxter 2B1064
50 mL Conical Centrifuge Tubes Fisher Scientific 14-432-22
6-0 Prolene Sutures Ethicon 8805H
Anesthetic Machine N/A N/A
Animal Hair Shaver N/A N/A
Betadine Solution N/A N/A
Castrojievo Needle Holder with lock 14 cm (smooth curved) World Precision Instruments 503258
ECHELON FLEX Articulating Endoscopic Linear Cutter Ethicon EC45A
Economy Tweezers #4 World Precision Instruments 501978
ENDOPATH ETS Articulating Linear Cutter 45mm Reloads Ethicon 6R45B
Far Infrared Warming Pad Controller with warming pad (15.2 cm W x 20.3 cm L), pad temperature probe, and 10 disposable, non-sterile sleeve protectors Kent Scientific RT-0515
Large Rat Elizabethan Collar Kent Scientific EC404VL-10
Liquid Diet Feeding Tube (150 mL) Bio-Serv 9007
Liquid Diet Feeding Tube Holder (short adjustable) Bio-Serv 9015
Micro Mosquito Forceps World Precision Instruments 500452
Micro Scissors World Precision Instruments 503365
Mouse Diet, High Fat Fat Calories (60%), Soft Pellets Bio-Serv S3282
No. 11 Blade and Scalpel Handle N/A N/A
OPMI Vario Surgical Microscope ZEISS S88
Raised Floor Grid Tecniplast GM500150 Raised Floor Grid
Rodent Liquid Diet, Lieber-DeCarli '82, Control, 4 Liters/Bag Bio-Serv F1259
Sodium Chloride Irrigation 0.9% Solution - 500 mL Baxter JF7633
Sterile Cotton Swabs N/A N/A
Sterile Drape N/A N/A
Sterile Towel N/A N/A
Thermal Cautery Unit World Precision Instruments 501293

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. World Health Organization. Obesity and Overweight. , Available from: http://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/obesity-and-overweight (2018).
  2. Courcoulas, A. P., et al. Three-year outcomes of bariatric surgery vs lifestyle intervention for type 2 diabetes mellitus treatment. JAMA Surgery. 15213 (10), 1-9 (2015).
  3. Ardestani, A., Rhoads, D., Tavakkoli, A. Insulin cessation and diabetes remission after bariatric surgery in adults with insulin-treated type 2 diabetes. Diabetes Care. 38 (4), 659-664 (2015).
  4. Casella, G., et al. Ten-year duration of type 2 diabetes as prognostic factor for remission after sleeve gastrectomy. Surgery for Obesity and Related Diseases. 7 (6), 697-702 (2011).
  5. Panunzi, S., De Gaetano, A., Carnicelli, A., Mingrone, G. Predictors of remission of diabetes mellitus in severely obese individuals undergoing bariatric surgery. Annals of Surgery. 261 (3), 459-467 (2015).
  6. Edelman, S., et al. Control of type 2 diabetes after 1 year of laparoscopic adjustable gastric banding in the helping evaluate reduction in obesity (HERO) study. Diabetes, Obesity and Metabolism. 16 (10), 1009-1015 (2014).
  7. Mingrone, G., et al. Metabolic surgery versus conventional medical therapy in patients with type 2 diabetes: 10-year follow-up of an open-label, single-centre, randomised controlled trial. The Lancet. 397 (10271), 293-304 (2021).
  8. Thaler, J. P., Cummings, D. E. Minireview: Hormonal and metabolic mechanisms of diabetes remission after gastrointestinal surgery. Endocrinology. 150 (6), 2518-2525 (2009).
  9. Mingrone, G., Castagneto-Gissey, L. Mechanisms of early improvement / resolution of type 2 diabetes after bariatric surgery. Diabetes and Metabolism. 35 (6), 518-523 (2009).
  10. Arapis, K., et al. Remodeling of the residual gastric mucosa after Roux-en-Y gastric bypass or vertical sleeve gastrectomy in diet-induced obese rats. PloS One. 10 (3), 012414 (2015).
  11. Bruinsma, B. G., Uygun, K., Yarmush, M. L., Saeidi, N. Surgical models of Roux-en-Y gastric bypass surgery and sleeve gastrectomy in rats and mice. Nature Protocols. 10 (3), 495-507 (2015).
  12. Bueter, M., et al. Roux-en-Y gastric bypass operation in rats protocol. Journal of visualized experiments : JoVE. (64), (2012).
  13. Stevenson, M., Lee, J., Lau, R. G., Brathwaite, C. E. M., Ragolia, L. Surgical mouse models of vertical sleeve gastrectomy and Roux-en Y gastric bypass: a Review. Obesity Surgery. , (2019).
  14. Hao, Z., et al. Reprogramming of defended body weight after Roux-En-Y gastric bypass surgery in diet-induced obese mice. Obesity. 24 (3), 654-660 (2016).
  15. McErlane, S. Adult rodent anesthesia SOP. UBC Animal Care Guidelines. , Available from: https://animalcare.ubc.ca/sites/default/files/documents/ACC-01-2017_Anesthesia.pdf (2017).
  16. Sotocinal, S. G., et al. The Rat Grimace Scale: a partially automated method for quantifying pain in the laboratory rat via facial expressions. Molecular pain. , 1-10 (2011).
  17. Elder, K. A., Wolfe, B. M. Bariatric surgery: A review of procedures and outcomes. Gastroenterology. 132 (6), 2253-2271 (2007).
  18. Lim, R. B. Bariatric procedures for the management of severe obesity: Descriptions. UpToDate. , Available from: https://www.uptodate.com/ (2017).

Tags

Medisin Utgave 174 Roux-en-Y gastrisk bypass gastrisk bypass metabolsk kirurgi bariatrisk kirurgi rotte
En protokoll for Roux-en-Y gastrisk bypass hos rotter ved hjelp av lineære stiftere
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Dang, J. T., Mocanu, V., Fang, B.,More

Dang, J. T., Mocanu, V., Fang, B., Laffin, M., Karmali, S., Madsen, K., Birch, D. W. A Protocol for Roux-en-Y Gastric Bypass in Rats using Linear Staplers. J. Vis. Exp. (174), e62575, doi:10.3791/62575 (2021).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter