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Artículo de método

Un modelo de corte de cerebro ex vivo para estudiar y atacar el crecimiento del tumor metastásico cerebral con cáncer de mama

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DOI:

10.3791/62617

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22 de septiembre de 2021

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En este artículo

Resumen

Presentamos un protocolo para medir la respuesta a la droga y la radiación en tiempo real de las células metastásicas cerebrales del cáncer de mama en un modelo organotípico de corte cerebral. Los métodos proporcionan un ensayo cuantitativo para investigar los efectos terapéuticos de varios tratamientos en las metástasis cerebrales del cáncer de mama de manera ex vivo dentro de la interfaz del microambiente cerebral.

Resumen

La metástasis cerebral es una consecuencia grave del cáncer de mama para las mujeres, ya que estos tumores son difíciles de tratar y se asocian con malos resultados clínicos. Los modelos preclínicos de ratón de crecimiento metastásico cerebral (BCBM) del cáncer de mama son útiles pero son costosos, y es difícil rastrear las células vivas y la invasión de células tumorales dentro del parénquima cerebral. Aquí se presenta un protocolo para cultivos de cortes cerebrales ex vivo de ratones xenoinjertados que contienen sublíneas clonales de búsqueda de cerebro de cáncer de mama inyectado intraranalmente. Las células marcadas con la luciferasa MDA-MB-231BR se inyectaron intracranealmente en los cerebros de ratones hembra Nu/Nu, y después de la formación del tumor, los cerebros se aislaron, cortaron y cultivaron ex vivo. Las rebanadas tumorales fueron fotografiadas para identificar células tumorales que expresan luciferasa y monitorear su proliferación e invasión en el parénquima cerebral durante un máximo de 10 días. Además, el protocolo describe el uso de la microscopía de lapso de tiempo para obtener imágenes del crecimiento y el comportamiento invasivo de las células tumorales después del tratamiento con radiación ionizante o quimioterapia. La respuesta de las células tumorales a los tratamientos se puede visualizar mediante microscopía de imágenes en vivo, midiendo la intensidad de la bioluminiscencia y realizando histología en la rebanada cerebral que contiene células BCBM. Por lo tanto, este modelo de corte ex vivo puede ser una plataforma útil para la prueba rápida de nuevos agentes terapéuticos solos o en combinación con radiación para identificar medicamentos personalizados para atacar el crecimiento metastásico cerebral de cáncer de mama de un paciente individual dentro del microambiente cerebral.

Introducción

Las metástasis cerebrales del cáncer de mama (BCBM) se desarrollan cuando las células se diseminan del tumor primario de mama al cerebro. El cáncer de mama es la segunda causa más frecuente de metástasis cerebral después del cáncer de pulmón, con metástasis que ocurren en el 10-16% de las pacientes1. Desafortunadamente, las metástasis cerebrales siguen siendo incurables, ya que >80% de los pacientes mueren dentro de un año después de su diagnóstico de metástasis cerebral, y su calidad de vida se ve afectada debido a disfunciones neurológicas2. Existe una necesidad urgente de identificar opciones de tratamiento más efecti....

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Protocolo

Este protocolo fue aprobado y sigue las pautas de cuidado animal por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales (IACUC) de la Facultad de Medicina de la Universidad de Drexel. En este estudio se utilizaron ratones hembra atímicos Nu/Nu (6-8 semanas de edad).

1. Inyección intracraneal de células tumorales

  1. Esterilizar todo el equipo (pinzas, tijeras, tijeras de sutura, taladro manual) bajo un ciclo seco de un autoclave durante un máximo de 45 minutos en bolsas de esterilización, incluido un indicador de esterilización. Si realiza cirugías en varios animales, esterilice las herramientas entre animales con un esterilizador d....

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Resultados

Las células MDA-MB-231BR-GFP-Luciferasa se inyectaron intracranealmente en el hemisferio derecho de ratones Nu/Nu de 4-6 semanas de edad como se explicó anteriormente (Figura 1A) y se les permitió crecer durante 12-14 días, tiempo durante el cual el crecimiento del tumor fue monitoreado por imágenes de bioluminiscencia (Figura 1B). Inyectamos 100,000 células cancerosas intracranealmente según lo informado por otros grupos19, pero es posib.......

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Discusión

Este estudio establece un nuevo método de cultivo cerebral ex vivo para tumores cerebrales de xenoinjerto explantados. Demostramos que las células BCBM MDA-MB-231BR inyectadas intracranealmente en el cerebro de ratones pueden sobrevivir y crecer en rodajas cerebrales ex vivo . El estudio también probó células de glioblastoma U87MG (GBM) inyectadas intracranealmente y también encontró que estas células cancerosas sobreviven y crecen en cortes cerebrales (datos no mostrados). Creemos que este modelo se pu.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen conflictos financieros que declarar.

Agradecimientos

Queremos agradecer a Julia Farnan, Kayla Green y Tiziana DeAngelis por su asistencia técnica. Este trabajo fue apoyado en parte por el Pennsylvania Commonwealth Universal Research Enhancement Grant Program (MJR, JGJ), UO1CA244303 (MJR), R01CA227479 (NLS), R00CA207855 (EJH) y W.W. Smith Charitable Trusts (EjH).

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Jeringa de 1 mL, punta deslizanteBD309659
30 agujas G1/2 BD305106
placas de 6 pocillosGenessee25-105
y software LUMAVIEWEtalumaLS720
B27 (GEM21)Gemini Bio-Products400-160
Vaso de precipitados 50mL Fisher10-210-685
Pincel de marta roma, tamaño #5/0Ciencias de la Microscopía Electrónica66100-50
Cera óseaModoMedDYNJBW25
Jeringa de inyección cerebralHamilton Company80430
CaCl2Fisher ScientificBP510-250
Caspasa 3 escididaSeñalización de células14220S
DAPIInvitrogenP36935
D-Luciferin Sal de PotasioPerkin Elmer122799
Hoja de afeitar de doble filoVWR55411-060(95-0043)
Papel de filtro , círculos cuantitativos, 4,25 cmFisher09-805a (1001-042)
Pincel de marta fina #2/0Ciencias de la Microscopía Electrónica66100-20
PinzasFine Science Tools11251-20
Anticuerpo Gamma-H2AXMillipore05-636
Anticuerpo GFAPThermo Fisher13-0300
Anticuerpo GFPSanta CruzSC-9996
GlucosaSigma AldrichG8270
Glutamina (200 mM)Corning cellgrow25-005-CL
H& E y KI-67Jefferson Core Facility Juego de taladros manuales de tinción de
con brocas helicoidales Micro Mini
HEPES, ácido libreFisher ScientificBP299-1
Solo para ratones Marco estereotáxicoAparato de Harvard (Holliston, MA, EE. UU.).72-6049, 72-6044
KClFisher ScientificS271-10
Tijeras quirúrgicas grandesHerramientas de ciencia fina14001-18
Células MDA-MB-231BRAmablemente proporcionado por la Dra. Patricia SteegRef 14
MgCl2· 6H2OFisher ScientificM33-500
Dispositivo de imagen para ratonesPerkin ElmerSistema IVIS 200
Software de imagen para ratonesCaliper Life Sciences (Waltham, MA, EE. UU.).Living Image Software Lector
microplacasTecan Spark
Solución de montajeInvitrogenP36935
MTS reactivoPromega CellTiter 96 Aqueous One Solution(Cat:G3582)
N2 suplementoLife Technologies17502-048
Medio neurobasalLife Technologies21103049
Ratones atímicos Nu/NuCharles Rivers Labs (Wilmington, MA, EE. UU.)
ParaformaldehídoAffymetrix19943
Pen/StrepLife Technologies145140-122
Sutura de polipropilenoSuministro MedexETH-8556H
Palos de hisopo de yodo povidonaSuministro DME EE. UU.Cat: 689286X
Hoja de bisturí #11 (paquete de 100)Fine Science Tools10011-00
Mango de bisturí #3Fine Science Tools10003-12
Piruvato de sodioSigma AldrichS8636
Espátula/sondaFine Science Tools10090-13
SS Hojas de afeitar sin recubrimiento de doble filo (American safety razor co (95-0043))VWR55411-060
SacarosaAmresco57-50-1
Bisturí quirúrgicoExelint InternationalD29702
Tissue ChopperBrinkman(tipo McIlwain)
Insertos de cultivo de tejidosMilliporePICMORG50 o PICM03050
máquina de rayos X Precision250 kVp
Microscopio automatizado de anticuerpos patología Amazon YCQ2851920086082DJ de

Referencias

  1. Watase, C., et al. Breast cancer brain metastasis-overview of disease state, treatment options and future perspectives. Cancers. 13 (5), Basel. (2021).
  2. Niikura, N., et al.

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